التأثيرات المضادة للإرهاق للنيوكليوتيدات الغذائية في الفئران

Meihong Xua و b و Rui Lianga و c و Yong Lia و b و Junbo Wanga و b

ميهونغ شوa,b,روي ليانغa,c، يونغ ليa,b وجونبو وانغa,b

للمزيد من المعلومات:ali.ma@wecistanche.com

نبذة مختصرة

تعتبر النيوكليوتيدات ، باعتبارها اللبنات الأساسية للأحماض النووية ، من العناصر الغذائية الأساسية المشروطة التي تظهر أنشطة متعددة الأوجه. تهدف الدراسة الحالية إلى تقييممكافحة التعبآثار النيوكليوتيدات الغذائية (NTs) على الفئران واستكشاف الآلية الكامنة الكامنة وراء ذلك. تم تقسيم الفئران بشكل عشوائي إلى أربع مجموعات تجريبية للكشف عن مؤشرات مختلفة. تم بعد ذلك تقسيم كل مجموعة من الفئران إلى أربع مجموعات: (1) مجموعة تحكم واحدة و (2) ثلاث مجموعات NTs ، والتي تم تغذيتها بنظام غذائي مكمل بـ NTs بتركيزات {{0} في المائة ، {{3} }. 0 4 بالمائة و 0.16 بالمائة و 0.64 بالمائة (وزن / وزن). يمكن أن يزيد NTS بشكل كبير من وقت السباحة القسري ، ويعزز نشاط نازعة هيدروجين اللاكتات ومستويات الجليكوجين الكبدي ، بالإضافة إلى تأخير تراكم نيتروجين اليوريا في الدم وحمض اللبنيك في الدم في الفئران بعد 30 يومًا من العلاج. NTS أيضا بشكل ملحوظالتعب المحسن- التغيرات الناتجة في المؤشرات الحيوية للإجهاد التأكسدي والإنزيمات المضادة للأكسدة. والجدير بالذكر أن NTs زادت من أنشطة إنزيم التمثيل الغذائي لطاقة الميتوكوندريا في العضلات الهيكلية للفئران. تشير هذه النتائج إلى أن NTs تمارسآثار مكافحة التعب، والذي قد يعزى إلى تثبيط الإجهاد التأكسدي وتحسين وظيفة الميتوكوندريا في عضلات الهيكل العظمي. يمكن استخدام NTS كعامل طبيعي جديد لتخفيف التمرينإعياء.

مقدمة

إعياءهو شعور بالإرهاق الشديد ، والذي يمكن أن يؤدي إلى مجموعة واسعة من عدم اللياقة البدنية والعقلية ، مثل عدم الانتباه ، والإلهاء ، والنعاس [1،2]. تنتج هذه الحالة بشكل أساسي عن استنفاد مصادر الطاقة ، بما في ذلك تراكم المنتجات النهائية لـإعياء، اضطراب في البيئة الداخلية للجسم ، وانخفاض في مستويات السكر في الدم واستهلاك الجليكوجين في الكبد [3]. التعب هو حالة صحية دون المستوى الأمثل وقد يترافق مع أمراض مختلفة. مع تسارع وتيرة الحياة والمنافسة الاجتماعية الشرسة ،إعياءأصبحت حالة شائعة الحدوث. وبالتالي ، فإن الجهود مثل التدخلات التغذوية ضرورية لتحديد طريقة آمنة وفعالة لمنع التعب. تم تحديد الإجهاد التأكسدي باعتباره أحد العوامل التي تؤدي إلى التعب [4]. تؤدي المستويات العالية من الإجهاد التأكسدي إلى التوليد المفرط لأنواع الأكسجين التفاعلية (ROS). هذه الأنواع عبارة عن جزيئات شديدة التفاعل تسبب بيروكسيد الدهون في بنية الغشاء وتضر بالبنية الخلوية. يمكن أن يؤدي إطلاق ROS إلى أكسدة الدهون في غشاء الميتوكوندريا. تم العثور على الميتوكوندريا التالفة لتقليل التنفس الخلوي وتوليد الأدينوزين ثلاثي الفوسفات (ATP) ؛ كما أنها من بين الأسباب الرئيسية للإرهاق [5]. يمكن للتدخلات التي تقلل الضرر التأكسدي أن تخفف التعب بشكل فعال ، كما أوضحت نتائج الدراسة أن مضادات الأكسدة لها تأثيرات مفيدة على التعب [6،7].

تشير النتائج السابقة إلى أن التعافي من ممارسة الرياضةإعياءيتطلب إصلاح الضرر الذي حدث في الجسم و / أو يحث على التخلص من المنتجات الأيضية التي تراكمت أثناء التمرين [8]. يمكن امتصاص النيوكليوتيدات الغذائية (NTs) واستخدامها من قبل جميع الأعضاء ، مما قد يستفيد من الإمداد الخارجي لتوفير الطاقة وتحسين وظائف الأعضاء. يحتوي NTS على العديد من الوظائف المفيدة ، بما في ذلك النشاط المضاد للأورام ، والتعديل المناعي ، والقدرة على حماية الكبد ، وتطبيع التمثيل الغذائي [9-12]. بالإضافة إلى ذلك ، تُظهر NTs خصائص فائقة من مضادات الأكسدة ومضادة للشيخوخة ، كما أكدت دراستنا السابقة [13]. ومع ذلك ، نادرًا ما تم الإبلاغ عن دراسات حول التأثيرات المضادة للإرهاق للشفافية NTs. وبالتالي ، تم تصميم الدراسة الحالية لتقييممكافحة التعبنشاط NTs واستكشاف الآلية الكامنة الكامنة المحتملة في الفئران.

المواد والأساليب المواد والكواشف

تم إنتاج النظام الغذائي الأساسي (نظام AIN {0} النظام الغذائي للقوارض) والنظام الغذائي المكمّل لـ NTs (نظام غذائي أساسي مكمل بـ 0.4 جم و 1.6 جم و 6.4 جم NTs * كجم -1 على التوالي) بواسطة HFK Bioscience Co. Ltd. (بكين ، الصين). تم اشتقاق NTS من شركة Zhen-Ao Biotechnology Ltd. (داليان ، الصين) من خميرة المشروب RNA. كان محتوى NTs أكثر من 99 بالمائة. يحتوي هذا المنتج على 22.8 بالمائة 5ʹ-أدينوزين أحادي الفوسفات (5ʹ-AMP) ، 26.6 بالمائة 5ʹ-cytidine أحادي الفوسفات (5ʹ-CMP) ، 20.4 بالمائة 5ʹ- غوانوزين أحادي الفوسفات (5ʹ-GMP) Na2 ، و 30.2 بالمائة 5ʹ- يوريدين أحادي الفوسفات (5ʹ-CMP) -UMP) Na2. تم خلط المكونات الغذائية جيدًا في خليط ، وتحويلها إلى كريات ، وتجفيفها بالهواء في درجة حرارة الغرفة. تم شراء مجموعات الفحص المستخدمة لتحديد نيتروجين اليوريا في الدم (BUN) ونزعة هيدروجين اللاكتات (LDH) من شركة Yingkexinchuang Science and Technology Ltd. (ماكاو ، الصين). مجموعات الكشف عن حمض اللاكتيك في الدم (BLA) ، الجليكوجين الكبدي ، ديسموتاز الفائق (SOD) ، الجلوتاثيون بيروكسيديز (GSH Px) ، نازعة هيدروجين السكسينات (SDH) ، Na plus -K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase ، نشاط ، و malondialdehyde (MDA) تم شراؤها من معهد Nanjing Jiancheng Biotechnology Institute (Nanjing ، الصين). جميع الكواشف الأخرى المستخدمة في هذه الدراسة كانت من الدرجة التحليلية. الحيوانات والعلاج استخدمت الدراسة الحالية ، بعد الموافقة من لجنة رعاية الحيوان المؤسسية واستخدامها بجامعة بكين (رمز الموافقة الأخلاقية: LA2015081 ، فبراير 2015) ، ما مجموعه 160 فأرًا من الذكور من الفئران (6-8 أسابيع ، 18-22 جم ) ، والتي تم شراؤها من خدمة الحيوان في مركز علوم الصحة ، جامعة بكين.

تم إيواؤها عند 25 ± 1 درجة مئوية ، ورطوبة 5 0 - 6 0 في المائة ، وتم الحفاظ عليها في دورة مظلمة من 12 ساعة: 12 ساعة ، مع إمكانية الوصول المجاني إلى الطعام والماء القياسي. عولجت جميع الحيوانات وفقًا لمبادئ رعاية حيوانات المختبر (منشور المعاهد الوطنية للصحة رقم 85-23 ، المنقح عام 1985) والمبادئ التوجيهية للجنة أبحاث الحيوان بجامعة بكين. بعد التأقلم لمدة أسبوع واحد ، تم تقسيم الفئران بشكل عشوائي إلى أربع مجموعات تجريبية (ن=40). تم بعد ذلك تقسيم كل مجموعة من الفئران إلى أربع مجموعات (ن=10): مجموعة التحكم ، وثلاث مجموعات تدخل NTs والتي تم تصنيفها كمجموعة جرعة منخفضة (NTs-L) ، مجموعة جرعة متوسطة (NTs-M ) ، ومجموعة الجرعات العالية (NTs-H). تم إطعام فئران التجارب بنظام غذائي للقوارض (شركة Vital River Ltd. ، بكين). تمت تغذية الفئران في المجموعات التجريبية الثلاث بـ 0. 01٪ ، 0.16٪ ، أو 0.64٪ (وزن / وزن) NTs في النظام الغذائي ، على التوالي. تشير الجرعات إلى الدراسة السابقة في مختبرنا [11-13]. تم إعطاء الفئران التجريبية بالتزقيم لمدة 30 يومًا ثم تم استخدامها لمزيد من التجارب. تم استخدام فئران اختبار السباحة القسري من المجموعة التجريبية 1 لاختبار السباحة القسري. تم إجراء اختبار السباحة القسري كما هو موضح سابقًا [3]. باختصار ، بعد 30 دقيقة من العلاجات النهائية ، تم وضع الفئران بشكل فردي في حوض سباحة مملوء بالماء (25 ± 1 درجة مئوية) على عمق 30 سم مع غلاف من الرصاص (5 في المائة من وزن جسم الفأر) مرتبطًا بـ جذر ذيل كل فأر.

تم تسجيل وقت السباحة على الفور عندما استنفدت القوة البدنية للماوس ولم يتمكن من الصعود إلى السطح لأكثر من 10 ثوانٍ. تم استخدام مقايسة الكيمياء الحيوية من المجموعة التجريبية 2 للمقايسة البيوكيميائية. بعد ثلاثين دقيقة من تناوله عن طريق الفم ، أجبرت الفئران على السباحة في الماء عند 30 درجة مئوية لمدة 90 دقيقة دون أي أحمال. بعد الراحة لمدة ساعة ، تم الحصول على عينة دم من مقل العيون وعضلات الهيكل العظمي (عضلات الفخذ الرباعية في كلا الساقين الخلفيتين) من الفئران. تم تحضير المصل بالطرد المركزي عند 2000 دورة في الدقيقة عند 4 درجات مئوية لمدة 15 دقيقة. تم قياس محتوى BUN ونشاط LDH في مصل الدم بواسطة محلل كيميائي حيوي تلقائي (شركة أوليمبوس ، طوكيو ، اليابان). تم تحديد نشاط SOD و GSH Px و SDH و Na plus K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase ومستويات MDA في العضلات الهيكلية من خلال مجموعات الكشف وفقًا للتعليمات.

تحديد حمض اللاكتيك في الدم

تم تحديد تركيزات BLA في الفئران من المجموعة التجريبية 3. بعد ثلاثين دقيقة من تناول الفم النهائي ، أُجبرت الفئران على السباحة في الماء عند 3 0 درجة مئوية لمدة 1 0 دقيقة دون أي أحمال. تم الحصول على الدم في ثلاث نقاط زمنية: في الأساس ، و 0 دقيقة بعد السباحة ، و 20 دقيقة بعد السباحة. تم جمع كمية 20 ميكرولتر من الدم بدقة من الوريد الزاوي للفئران بواسطة أنبوب شعري زجاجي في كل مرة ثم انتقل على الفور إلى قاع أنبوب طرد مركزي سعة 5 مل ، والذي تم ربطه مسبقًا بمحلول فلوريد الصوديوم 0.48 مل 1٪. تم شطف الأنبوب الشعري الزجاجي بمادة طافية عدة مرات. تم تحديد تركيزات BLA وفقًا للإجراءات المقدمة من المجموعات.

فحص الجليكوجين الكبدي

تم استخدام الفئران من المجموعة التجريبية 4 لفحص الجليكوجين الكبدي. بعد ثلاثين دقيقة من الاستخدام الأخير لـ NTs ، قُتلت الفئران وعُزلت أكبادها على الفور وتم تجانسها إلى محلول 10 بالمائة بمحلول ملحي عادي عند 4 درجات مئوية. تم تحديد مستويات الجليكوجين الكبدية باستخدام المجموعات المتاحة.

تحليل احصائي

تم التعبير عن البيانات على أنها تعني ± الانحراف المعياري (SD). تم تحليل الاختلافات بين المجموعات عن طريق اختبار ANOVA أحادي الاتجاه متبوعًا باختبار Tukey بعد الفروق الأقل أهمية إذا كانت الفروق متساوية أو اختبار T3 الخاص بـ Tamhane إذا لم تكن الفروق متساوية. تم اعتبار p <0. 05="">

النتائج آثار NTs على وزن جسم الفئران

يظهر تأثير NTs على وزن جسم الفئران أثناء التجربة في الجدول 1. وأظهرت النتائج أنه لا توجد فروق ذات دلالة إحصائية في وزن الجسم بين مجموعة التحكم ومجموعات NTs في المجموعة التجريبية 1 و 2 و 3 و 4 على التوالي.

آثار NTs في اختبار السباحة القسري

يظهر تأثير NTs على وقت السباحة القسري للفئران في الشكل 1. كما هو متوقع ، بالمقارنة مع مجموعة التحكم ، كان وقت السباحة الإجباري في جميع مجموعات NTs الثلاثة أطول وكان الاختلاف ذا دلالة إحصائية في NTs-M و NTs-H (ع <0. 05).="" بشكل="" عام="" ،="" عند="" مقارنتها="" بالمجموعة="" الضابطة="" ،="" زاد="" وقت="" السباحة="" القسري="" في="" nts-l="" و="" nts-m="" و="" nts-h="" بنسبة="" 51.23="" بالمائة="" 86="" 57="" بالمائة="" و="" 71.23="" بالمائة="" على="">

تأثير NTs على اللاكتات ديهيدروجينيز (LDH) ، نيتروجين اليوريا في الدم (BUN) ، ومحتوى الجليكوجين الكبدي في الفئران

كما هو مبين في الشكل 1 ، مقارنة بالمجموعة الضابطة ، زاد نشاط LDH بشكل ملحوظ في NTs-M (p <0. 0="" 5)="" وانخفضت="" مستويات="" bun="" بشكل="" ملحوظ="" في="" جميع="" nts-="" المجموعات="" المعالجة="" (ف=""><0. 05).="" ومع="" ذلك="" ،="" تم="" تحسين="" مستويات="" الجليكوجين="" الكبدية="" في="" الفئران="" في="" مجموعات="" nts="" دون="" اختلافات="" ملحوظة="" في="" المقارنة="" مع="" المجموعة="" الضابطة="" (p=""> 0.05) ، مما يشير إلى أن NTs ليس لها أي تأثير على مستويات الجليكوجين.

تأثير NTs على مستويات حمض اللاكتيك في الدم في الفئران

النتائج حول تأثيرات NTs على BLA في الفئران في نقاط زمنية مختلفة موضحة في الشكل 2. لم تكن هناك فروق ذات دلالة إحصائية بين المجموعات في الأساس. زادت مستويات BLA لمدة 0 دقيقة بعد السباحة بشكل ملحوظ مقارنة بخط الأساس في جميع المجموعات (p <0. 0="" 5).="" وبالمثل="" ،="" مقارنة="" بخط="" الأساس="" ،="" كانت="" هناك="" اختلافات="" كبيرة="" بين="" خط="" الأساس="" و="" 2="" {{1="" 0}="" دقيقة="" بعد="" السباحة="" ،="" في="" مجموعة="" التحكم="" ومجموعة="" nts-l="" (p=""><0. {{17}="" }="" 5).="" بالمقارنة="" مع="" مجموعة="" التحكم="" ،="" انخفضت="" تركيزات="" bla="" في="" nts-m="" و="" nts-h="" بشكل="" ملحوظ="" عند="" 0="" دقيقة="" بعد="" السباحة="" (p=""><0.05). في="" 20="" دقيقة="" بعد="" السباحة="" ،="" انخفضت="" بشكل="" ملحوظ="" تركيزات="" bla="" في="" مجموعة="" nts-h="" (p=""><0.05). بعد="" علاج="" nts="" ،="" تم="" أيضًا="" تقليل="" المنطقة="" الواقعة="" تحت="" منحنى="" bla="" (auc)="" مقارنةً="" بمجموعة="" التحكم="" (p=""><0.05 لـ="" nts-m="" و="">

تأثير NTs على معايير الإجهاد التأكسدي في العضلات الهيكلية للفئران

يتم عرض مستويات SOD و GSH-Px ومستويات MDA في الجدول 2 لتقييم مستوى الإجهاد التأكسدي في عضلات الهيكل العظمي للفئران. بعد العلاج ، تم تحسين أنشطة SOD و GSH-Px ، في مجموعات NTs-M و NTs-H ، بشكل ملحوظ بالمقارنة مع المجموعة الضابطة (p <0. 0="" 5)="" .="" بالإضافة="" إلى="" ذلك="" ،="" تم="" تخفيف="" مستويات="" mda="" في="" العضلات="" الهيكلية="" بشكل="" كبير="" في="" مجموعات="" nts="" (p=""><0.05) مقارنة="" مع="" مجموعة="">

تأثير NTs على أنشطة إنزيم التمثيل الغذائي لطاقة الميتوكوندريا في العضلات الهيكلية للفئران

يظهر نشاط SDH و Na plus -K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase في الجدول 3 لتقييم مستوى إنزيم التمثيل الغذائي لطاقة الميتوكوندريا في العضلات الهيكلية للفئران. بعد العلاج ، تم تحسين نشاط SDH و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase بشكل ملحوظ في NTs-M (p <0. 0="" 5).="" وبالمثل="" ،="" فإن="" نشاط="" na="" plus="" -k="" plus="" -atpase="" في="" العضلات="" الهيكلية="" زاد="" بشكل="" ملحوظ="" في="" مجموعات="" nts-m="" و="" nts-h="" (p=""><0. 05)="" مقارنة="" بالمجموعة="" الضابطة.="" المناقشة="" بفضل="" أنشطتها="" المتعددة="" الأوجه="" ،="" اكتسبت="" nts="" شعبية="" متزايدة="" كمكملات="" غذائية.="" أظهر="" عدد="" من="" التقارير="" أن="" إضافة="" nts="" إلى="" الصيغ="" الغذائية="" يزيد="" من="" إنتاج="" الغلوبولين="" المناعي="" ،="" ويحسن="" الاستجابة="" للقاحات="" ،="" ويقلل="" من="" المراضة="" ،="" ويزيد="" من="" تحمل="" المستضدات="" الغذائية="" [12="" ،="" 14].="" وجدت="" دراساتنا="" السابقة="" أن="" nts="" ليست="" سامة="" أو="" مسرطنة="" في="" الجرذان="" بتركيز="" يصل="" إلى="" 0.64٪="" (من="" وزن="" الجسم)="" طوال="" حياتها="" ،="" ويمكن="" أن="" تطيل="" عمر="" الفئران="" sd="" بطريقة="" تعتمد="" على="" الجرعة="" [13].="" على="" حد="" علمنا="" ،="" فإن="" الدراسة="" الحالية="" هي="" الأولى="" التي="" تشير="" إلى="" أن="" مكملات="" nts="" الغذائية="" تحسن="" التعب.="" وجدنا="" أيضًا="" أن="" nts="" يمكن="" أن="" تزيد="" من="" وقت="" السباحة="" القسري="" ،="" ونشاط="" ldh="" ،="" ومستويات="" الجليكوجين="" الكبدي="" ،="" وفي="" نفس="" الوقت="" ،="" يمكن="" أن="" تقلل="" nts="" من="" محتويات="" bun="" و="" bla="" في="" الفئران.="" قد="" يترافق="" التأثير="" المضاد="" للإرهاق="" مع="" تثبيط="" الإجهاد="" التأكسدي="" وتحسين="" نشاط="" الميتوكوندريا.="" ينتج="" عن="" العمل="" البدني="" المتكرر="" والمستمر="" التعب="" ،="" مما="" يؤدي="" إلى="" حدوث="" تغيرات="" في="" الجهاز="" ،="" بما="" في="" ذلك="" الغدد="" الصماء="" ،="" والخلل="" المناعي="" والتمثيل="" الغذائي="">

يوفر استخدام اختبارات السباحة القسرية نموذجًا تجريبيًا مرضيًا لتقييم الأنشطة المضادة للإرهاق لدى الفئران [16]. في هذه الدراسة ، أدى علاج NTs إلى إطالة الوقت لإرهاق الفئران ، خاصة عند 0. 16 بالمائة و 0. 64 بالمائة من المجموعات المعالجة بـ NT ، مما يشير إلى تأثيرات NTs المضادة للإجهاد على الفئران . لمزيد من دراسة الخاصية المضادة للإجهاد في NTs ، تم قياس العديد من العلامات البيوكيميائية للتعب ، بما في ذلك BUN و LDH و BLA والجليكوجين الكبدي. يتكون BUN في الكبد كمنتج استقلابي للبروتين والأحماض الأمينية ؛ إنه أحد المؤشرات الكيميائية الحيوية للدم المتعلقة بالإرهاق. مع زيادة التمرين ، تصبح الطاقة من تقويض السكر والدهون غير كافية للجسم ؛ تُظهر البروتينات والأحماض الأمينية تقويضًا أقوى للتعويض عن استهلاك الطاقة ، مما يؤدي إلى زيادة في BUN [17]. لوحظ ارتباط إيجابي ملحوظ بين مستوى BUN ودرجة التعب [18]. أثناء التدريبات الطويلة ، يتولد حمض اللاكتيك الزائد ويتراكم في عضلات الهيكل العظمي ، مما يؤدي إلى إجهاد العضلات [19]. لذلك ، يمكن استخدام BLA كمؤشر للتعب. بالإضافة إلى ذلك ، يعد الجليكوجين مادة طاقة مهمة تمكن من الحركة وتوفر طاقة كافية لتقلص العضلات. يقلل استخدام الطاقة من الجليكوجين ؛ في غضون ذلك ، يمكن أن تؤدي زيادة الجليكوجين الكبدي إلى تحسين القدرة على التحمل [20].

في هذه الدراسة ، يمكن لل NTs زيادة نشاط LDH ومستويات الجليكوجين الكبدية ، وكذلك تقليل محتويات BUN و BLA في الفئران. قد يتسبب استهلاك الطاقة المرتفع أثناء التمرينات الرياضية المكثفة في حدوث خلل بين أنظمة الأكسدة ومضادات الأكسدة ، مما يؤدي إلى زيادة نسبة الأكسجين التفاعلية وتقليل الأنشطة المضادة للأكسدة. تؤدي هذه السلوكيات إلى تعزيز إنتاج أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS). يشترك الإجهاد التأكسدي في كل من التعب المزمن والاضطرابات الأخرى المرتبطة بالتعب [21]. يمكن أن يؤدي الإجهاد البدني الشديد إلى التوليد المفرط لـ ROS في العضلات الهيكلية والتي بدورها تؤدي إلى التعب المحيطي [22 ، 23]. تم قياس نشاط SOD و GSH-Px ومستويات MDA ، والتي تشير عمومًا إلى قدرة نظام الدفاع المضاد للأكسدة ، لتقييم نشاط مضادات الأكسدة في NTs. SOD و GSH-Px هما نظامان إنزيميان مهمان لمضادات الأكسدة لكسح الجذور الحرة ومستقلباتها [24]. MDA هو أحد منتجات تحلل بيروكسيد الدهون ، وهو مؤشر مهم لتقييم الإجهاد التأكسدي الخلوي [25]. أشارت الدراسات إلى أن NTs تعرض أنشطة رائعة مضادة للأكسدة [11 ، 13]. تشير نتائجنا إلى أن التأثيرات المضادة للإجهاد للـ NTs ترتبط ارتباطًا وثيقًا بحماية الغشاء الجسدي من خلال تحسين أنشطة العديد من الإنزيمات ومنع أكسدة الدهون. في هذه الدراسة ، تم تحسين وظيفة الميتوكوندريا في العضلات الهيكلية للفئران بعد علاج NT.

مطلوب توليد ATP المستمر في الخلايا العضلية للحفاظ على النشاط البدني لفترات طويلة. الميتوكوندريا هي عضية مهمة داخل الخلايا في الخلايا حقيقية النواة ، وهي المكان الرئيسي للفسفرة المؤكسدة وإنتاج ATP في خلايا الثدييات. علاوة على ذلك ، تلعب الميتوكوندريا دورًا وسيطًا مهمًا في الإجهاد التأكسدي [26]. وبالتالي ، فإن وظيفة الميتوكوندريا في عضلات الهيكل العظمي تساهم في التعب الناجم عن ممارسة الرياضة. في هذه الدراسة ، تم قياس أنشطة SDH و Na plus -K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase لتقييم وظيفة الميتوكوندريا. يشمل التمثيل الغذائي للطاقة التمثيل الغذائي والتقويض ، الذي يتضمن العديد من الإنزيمات البيولوجية [27]. Na plus -K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase هما إنزيمات تحلل ATP الرئيسية ، والتي يمكن أن تحلل ATP لتزويد طاقة حرة مباشرة [28]. يلعب دورًا مهمًا في الحفاظ على الوظائف الفسيولوجية لنقل المواد وتحويل الطاقة ونقل المعلومات [29]. Na plus -K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase من بين العوامل الرئيسية المسؤولة عن التعب [30-32]. بالإضافة إلى ذلك ، SDH هو إنزيم يحد من المعدل مرتبط بتنظيم مسار التحلل في دورة كريبس ، وتحفيز تخليق ATP [27]. قد تكون أنشطة هذه الإنزيمات مهمة في استقلاب الطاقة في

العضلات الهيكلية تحت التعب. في ظل الظروف العادية ، يتم تنظيم الأنشطة الأنزيمية للحفاظ على التوازن بين الابتنائية والتقويض. تحت ظروف التعب ، لوحظت مستويات منخفضة من SDH ، Na plus -K plus -ATPase ، و Ca2 plus Mg2 plus -ATPase في العضلات الهيكلية. أشارت هذه النتيجة إلى حدوث التحلل المائي لـ ATP ، مما يدل على تلف الميتوكوندريا ، وفقد هذا التوازن ، بسبب انخفاض مستويات Na plus -K plus - ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase. ومع ذلك ، في هذه الدراسة ، وجدنا أن NTs يمكنها تحسين وظيفة الميتوكوندريا في العضلات الهيكلية للفئران من خلال تعزيز أنشطة إنزيمات استقلاب الطاقة ، مثل SDH و Na plus -K plus -ATPase و Ca2 plus -Mg2 plus -ATPase ، وبالتالي قمع الإجهاد التأكسدي وتوليد المزيد من ATP لمكملات الطاقة [33 ، 34].

الاستنتاجات

أظهرت نتائجنا المجمعة لأول مرة أن NTs لها تأثيرات مضادة للإجهاد. يمكن أن تزيد NTs من وقت السباحة القسري للفئران عن طريق تعزيز نشاط LDH ومستويات الجليكوجين الكبدي وتأخير تراكم BUN و BLA. يمكن أن تحسن NTs أيضًا وظيفة الميتوكوندريا وتمنع الإجهاد التأكسدي في عضلات الهيكل العظمي للفئران ، والذي قد يكون مسارًا لتأثيراته المضادة للإرهاق. يمكن استخدام NTs كعامل طبيعي جديد للتخفيف من إجهاد التمرين. هناك حاجة إلى مزيد من البحث في المختبر لاستكشاف الآلية الجزيئية الدقيقة التي تلعب بها NTs دورها في التأثيرات المضادة للإرهاق.

انقر فوق الصورة لمعرفة فوائد tubulosa والآثار الجانبية للتعب

مراجع

[1] Moriura T، Matsuda H، Kubo M. دراسة دوائية على Agkistrodon blomhofi OIE. V. تأثير مضاد للإرهاق لمستخلص الإيثانول بنسبة 50 في المائة في الفئران المعالجة بالسباحة المحملة بالوزن الحاد. بيول فارم بول.1996;19(1):62–66. 

[2] Kim KM و Yu KW و Kang DH وآخرون. تأثيرات مضادة للإجهاد والتعب لنخالة الأرز المخمرة. Biosci Biotechnol Biochem.2001;65(10):2294–2296. 

[3] Tan W1 و Yu KQ و Liu YY وآخرون. النشاط المضاد للتعب للسكريات المستخرجة من Radix Rehmanniae Preparata. إنت J بيول ماكرومول.2012;50(1):59–62. 

[4] عزيزبيجي ك ، ستانارد إس آر ، أتاشاك إس ، وآخرون. إنزيمات مضادات الأكسدة والتكيف مع الإجهاد التأكسدي لممارسة التمارين: مقارنة التحمل والمقاومة والتدريب المتزامن في الذكور غير المدربين. اللياقة البدنية J Exerc Sci.2014;12(1):1–6. 

[5] Ecstasy KS و Roussel D و St-Pierre J وآخرون. ينشط الأكسيد الفائق بروتينات فصل الميتوكوندريا. طبيعة سجية.2002;415(6867):96–99. 

[6] وانج إكس ، شينغ آر ، تشين زد ، وآخرون. تأثير وآلية ببتيدات الماكريل (Pneumatophorus japonicus) لمكافحة التعب. وظيفة الغذاء.2014;5(9):2113–2119. 

[7] Lee JS و Kim HG و Han JM وآخرون. التأثير المضاد للتعب لـ Myelophil في نموذج فأر للتمرين القسري المزمن. فارماكول Eur J.2015;764:100–108. 

[8] تشي أ ، لي إتش ، كانغ سي ، وآخرون. النشاط المضاد للإرهاق لمقترن عديد السكاريد الجديد من شاي Ziyang الأخضر. إنت J بيول ماكرومول.2015;80:566–572.

[9] Martinez-Puig D و Manzanilla EG و Morales J et al. تقلل مكملات النوكليوتيدات الغذائية من حدوث الإسهال في الخنازير المبكرة المفطومة. Livest Sci.2007;108:276–279. 

[10] كاي إكس ، باو إل ، وانج إن ، وآخرون. مكملات النيوكليوتيدات الغذائية وإصابة الكبد في الفئران المعالجة بالكحول: دراسة استقلابية. جزيئات.2016;21(4):435.

[11] كاي إكس ، باو إل ، وانج إن ، وآخرون. تحمي النيوكليوتيدات الغذائية من إصابة الكبد الكحولي عن طريق تخفيف الالتهاب وتنظيم ميكروبات الأمعاء في الفئران. وظيفة الغذاء.2016;7(6):2898–2908. 

[12] Xu M و Zhao M و Yang R وآخرون. تأثير النيوكليوتيدات الغذائية على وظيفة المناعة في فئران Balb / C. إنت إمونوفارماكول.2013;17(1):50–56. 

[13] Xu M و Liang R و Guo Q وآخرون. تعمل النيوكليوتيدات الغذائية على إطالة العمر الافتراضي لجرذان Sprague-Dawley. الشيخوخة الصحية نوتر.2013;17(3):223–229. 

[14] Che L، Hu L، Liu Y، et al. تعمل مكملات النيوكليوتيدات الغذائية على تحسين نمو الأمعاء والوظيفة المناعية لحديثي الولادة مع تقييد النمو داخل الرحم في نموذج الخنازير. بلوس واحد.2016؛ 11 (6): e0157314. [15] Chaudhuri A، Behan PO. التعب في الاضطرابات العصبية. لانسيت.2004;363(9413):978–988. 

[16] You L، Ren J، Yang B، et al. الأنشطة المضادة للإجهاد من تحلل بروتين لوش مع أنشطة مضادات الأكسدة المختلفة. جي أغريك فود تشيم.2012;60(50):12324– 12331. 

[17] Li X ، Zhang H ، Xu H. تحليل المكونات الكيميائية لعديد السكريات shiitake وتأثيره المضاد للإرهاق تحت الاهتزاز. إنت J بيول ماكرومول.2009;45 (4):377–380. 

[18] Huang WC، Chiu WC، Chuang HL، et al. تأثير مكملات الكركمين على التعب الفسيولوجي والأداء البدني في الفئران. العناصر الغذائية.2015;7(2):905–921. 

[19] جيبسون إتش ، إدواردز ر. التمارين العضلية والتعب. ميد الرياضة.1985;2(2):120–132.

[20] Anand T، Phani Kumar G، Pandareesh MD، et al. تأثير مستخلص الباكوسيد من باكوبا مونيرا على التعب الجسدي الناجم عن السباحة القسرية. Phytother Res.2012;26(4):587–593.

[21] باركلي كيه ، هانسيل إم ، قد تساهم الجذور الحرة في إجهاد عضلات الهيكل العظمي التأكسدي. يمكن فارماكول فيزيول ي.1991;69(2):279–284. 

[22] Allen DG، Lamb GD، Westerblad H. إجهاد العضلات الهيكلية: الآليات الخلوية. القس فيزيول.2008;88(1):287–332. 

[23] Westerblad H ، Allen DG ، Lännergren J. التعب العضلي: حمض اللاكتيك أو الفوسفات غير العضوي هو السبب الرئيسي؟ أخبار Physiol Sci.2002;17:17–21. 

[24] إلياس آر جيه ، كيلربي إس إس ، ديكر إي إيه. نشاط مضادات الأكسدة للبروتينات والببتيدات. Crit Rev Food Sci Nutr.2008;48 (5):430–441. 

[25] باجيس إس ، تامر إل ، شاهين جي وآخرون. الجذور الحرة ومضادات الأكسدة في المرحلة الأوليةفيبروميالغيا: اضطراب الإجهاد التأكسدي؟ روماتول إنت.2005;25(3):188–190. 

[26] Sivitz WI، Yorek MA. خلل الميتوكوندريا في مرض السكري: من الآليات الجزيئية إلى الأهمية الوظيفية والفرص العلاجية. إشارة الأكسدة والاختزال المضادة للأكسدة.2010;12(4):537–577. 

[27] Kolling J و Scherer EB و Siebert C وآخرون. الهموسيستين يحث على اختلال توازن الطاقة في العضلات الهيكلية للفئران: هل الكرياتين هو حامي؟ وظيفة الخلية الحيوية.2013;31 (7):575–584. 

[28] هوانغ إكس بي ، تان إتش ، تشين بي ، وآخرون. يخفف مستخلص استراغالوس من إصابة الأعصاب بعد نقص تروية الدماغ عن طريق تحسين التمثيل الغذائي للطاقة وتثبيط موت الخلايا المبرمج. بيول فارم بول.2012;35(4):449–454. 

[29] Scheiner-Bobis G. مضخة الصوديوم. خصائصه الجزيئية وميكانيكا نقل الأيونات. Eur J Biochem.2002;269(10):2424–2433. 

[30] Leppik JA و Aughey RJ و Medved I et al. يؤدي التمرين المطول للتعب عند البشر إلى إضعاف نشاط العضلات الهيكلية Na plus -K plus -ATPase ، وشبكة الهيولى العضلية Ca2 بالإضافة إلى إطلاق Ca2 بالإضافة إلى امتصاص الكالسيوم. J أبل فيسيول (1985).2004;97(4):1414–1423. 

[31] Chauhan VP، Tsiouris JA، Chauhan A، et al. زيادة الإجهاد التأكسدي وانخفاض نشاط Ca (2 plus) / Mg (2 plus) -ATPase و Na (plus) / K (plus) -ATPase في خلايا الدم الحمراء للدب الأسود في فترة السبات. علوم الحياة.2002;71(2):153–161. 

[32] Fraser SF، Li JL، Carey MF، et al. يخفض التعب الحد الأقصى في نشاط العضلات الهيكلية المختبرية Na (زائد) -K (زائد) -ATPase في الأفراد غير المدربين والمدربين. J أبل فيسيول (1985).2002;93(5):1650–1659. 

[33] Juel C. الإجهاد التأكسدي (الجلوتاثيون) ونشاط Na و K-ATPase في العضلات الهيكلية للفئران. بلوس واحد.2014;9(10):e110514. 

[34] Srikanthan K ، Shapiro JI ، Sodhi K ، دور إشارات Na / K-ATPase في الإجهاد التأكسدي المرتبط بالسمنة وأمراض القلب والأوعية الدموية. جزيئات.2016؛ 21 (9): 1172. بيي: E1172.