التحليل الطيفي الكهربائي عريض النطاق لتمييز التغيرات في الخلية الواحدة Ca 2+ بسبب علاج الأيونوميسين في خط خلايا العضلات الهيكلية الجزء 2

4. مناقشة

في الشكل 3 ب، توزيع التألق المتعلق بالكالسيوم يبلغ ذروته بنسبة أعلى وينتشر على نطاق أوسع بعد علاج الأيونوميسين، بما يتوافق مع زيادة الكالسيوم بسبب العلاج. استنادًا إلى الفعل المعروف للأيونوميسين باعتباره حامل أيون محايد إلكترونيًا، من المتوقع أن تقوم الخلايا بنقل الكالسيوم خارج الخلية بسرعة إلى الداخل ثم استعادة تركيزات عصاري خلوي طبيعية بعد إزالة الأيونوميسين [27،28]. هناك طريقة شائعة أخرى لمراقبة معالجة Ca2+ داخل الخلايا وهي المجالات الكهربائية النبضية بالنانو ثانية (nsPES)، والتي توفر منبهًا كهربائيًا صغيرًا لتوليد المسام في غشاء بلازما الخلية، اعتمادًا على حجم الإشارة والقطبية [29]. أظهر العمل الحديث في هذا المجال للنظر في زيادة Ca2+ داخل الخلايا أن وجود جزيئات السكروز يمكن أن يؤخر استجابة التورم المرتبطة عادةً بزيادة Ca2+ داخل الخلايا؛ ومع ذلك، يمكن أن يعتمد هذا على التركيز الخارجي المقدم والقنوات ذات الجهد الكهربي الموجودة في نوع الخلية قيد الدراسة [30،31]. كما هو الحال مع دراستنا، تظهر هذه أنه على الرغم من إنشاء تدرج لزيادة الكالسيوم الخلوي 2+، إلا أن هناك تأثيرات أقل فهمًا على الأغشية والأجزاء الأعمق داخل الخلية بعد العلاج [32]. في حين أن تغير الكالسيوم هو العامل الرئيسي المرتبط بمعالجة الأيونوميسين، يمكن ملاحظة العديد من التغييرات طويلة المدى، بما في ذلك التعبير عن IL-6 [33,34] أو CAI [35]؛ ومع ذلك، فمن غير المرجح أن يكون لها تأثير على المدى القصير. نظرًا للطبيعة الإيقاعية لوظيفة Ca2+ في الخلايا، يتم التحكم بعناية في تنظيم المستويات في العصارة الخلوية بواسطة العديد من البروتينات من خلال التخزين والإطلاق في الشبكة الساركوبلازمية. بناءً على هذا النظام الحاسم، من المتوقع أنه بينما زاد التوزيع الإجمالي، عادت بعض الخلايا إلى التألق بما يتوافق مع قيمها الأولية. تتوافق الذروة السريعة للتألق والهضبة المصاحبة لها مع العمل السابق الذي يراقب التدفق السريع للكالسيوم الخلوي قبل التعافي الأبطأ بعد العلاج بالأيونوميسين [36].

يمكن أن يعمل Cistanche كمضاد للتعب ومعزز للقدرة على التحمل، وقد أظهرت الدراسات التجريبية أن مغلي Cistanche tubulosa يمكن أن يحمي بشكل فعال خلايا الكبد والخلايا البطانية التالفة في الفئران الحاملة للوزن، وينظم التعبير عن NOS3، ويعزز الجليكوجين الكبدي. التوليف، وبالتالي ممارسة فعالية مضادة للتعب. يمكن لمستخلص Cistanche tubulosa الغني بالفينيليثانويد أن يقلل بشكل كبير من مستويات الكرياتين كيناز في الدم، ونازعة هيدروجين اللاكتات، ومستويات اللاكتات، ويزيد من مستويات الهيموجلوبين (HB) والجلوكوز في الفئران ICR، وهذا يمكن أن يلعب دورًا مضادًا للإرهاق عن طريق تقليل تلف العضلات. وتأخير تخصيب حامض اللبنيك لتخزين الطاقة في الفئران. تعمل أقراص Cistanche Tubulosa على إطالة وقت السباحة مع تحمل الوزن بشكل ملحوظ، وزيادة احتياطي الجليكوجين الكبدي، وانخفاض مستوى اليوريا في الدم بعد التمرين في الفئران، مما يظهر تأثيره المضاد للتعب. يمكن لمغلي Cistanchis تحسين القدرة على التحمل وتسريع القضاء على التعب في ممارسة الفئران، ويمكن أيضًا أن يقلل من ارتفاع كيناز الكرياتين في الدم بعد تمرين التحميل والحفاظ على البنية التحتية للعضلات الهيكلية للفئران طبيعية بعد التمرين، مما يشير إلى أن له تأثيرات. لتعزيز القوة البدنية ومكافحة التعب. كما أدى Cistanchis أيضًا إلى إطالة فترة بقاء الفئران المسمومة بالنتريت بشكل ملحوظ وعزز القدرة على التحمل ضد نقص الأكسجة والتعب.

انقر على التعب المزمن

【لمزيد من المعلومات:george.deng@wecistanche.com / واتساب:8613632399501】

وبالمثل، عند النظر إلى القياسات الكهربائية، فإن الزيادة تتوافق مع زيادة Ca {{0}} الخلوية وتتوافق القيم المستخرجة مع القياسات السابقة للتغيرات الخلوية المماثلة. القيم من خلايا UNT قابلة للمقارنة من حيث الحجم مع قيمة التركيب المنشورة مسبقًا البالغة 0.22 S / m و 9.49 ε0 [21]. تُظهر المقارنة الإحصائية بين هذه القيم لخلايا UNT (n=51) وخلايا TRT (n=20) ​​وجود زيادة كبيرة في التوصيلية وانخفاض كبير في السماحية. يتوافق الحجم الصغير للتغيير مع نمط الانتعاش المتوقع بعد إزالة مجمعات نقل الأيونوميسين. للحفاظ على بقاء الخلية، فإن التغير في الكالسيوم أثناء تكوينه سيكون ضئيلًا في السكان الأصحاء. يتوافق التغير الملحوظ في الموصلية والسماحية مع زيادة الأيونات، مما يؤدي إلى توزيع أكثر توازنًا للشحنة في جميع أنحاء السيتوبلازم في الخلية. لقد لوحظ سابقًا أنه استنادًا إلى بيانات التصوير الأولية Ca2+، لا تحافظ كل خلية معالجة بالأيونوميسين على زيادة تركيز Ca2+ داخل الخلايا، مما يؤدي إلى تداخل كبير بين مجموعتي UNT وTRT. من المهم أيضًا ملاحظة أنه بينما يركز هذا العمل على التغيرات العصارية الخلوية، فإن توازن إدارة الكالسيوم يحدث أيضًا في الشبكة الساركوبلازمية. ومع ذلك، ونظرًا لطبيعة النطاق العريض للقياسات المبلغ عنها، يتم التقاط التغييرات في الأجزاء الأخرى في نطاق واسع من الترددات.

يفترض العمل السابق حدوث ضرر تأكسدي للميتوكوندريا وفيضان أنواع الأكسجين التفاعلي داخل الخلايا (ROS) والكالسيوم 2+ قبل بدء موت الخلايا المبرمج عند التعرض للإجهاد التأكسدي المزمن [37]. من الناحية الفسيولوجية، هناك علاقة راسخة بين مستويات الكالسيوم 2+ في العضلات الهيكلية والقدرة على الحفاظ على توازن أنواع الأكسجين التفاعلية وتخفيف آثار الإجهاد التأكسدي. ليس من المستغرب أن يكون التغير في الأطياف الذي لوحظ هنا من ارتفاع Ca2+ داخل الخلايا، وهو زيادة في ∆S11 في نطاق ميجا هرتز متبوعًا بانخفاض في نطاق جيجا هرتز وقيمة أقل سالبة لـ ∆S21 في نطاق كيلو هرتز، قابلًا للمقارنة لتلك الموجودة في الخلايا L6 المعرضة للإجهاد التأكسدي طويل الأمد [21]. حدد العمل السابق Ca2+ كعامل رئيسي في تمييز الخلايا التي تعرضت للإجهاد التأكسدي، بينما في هذا العمل، تُظهر القدرة على تمييز الكالسيوم من خلال النمذجة المساهمات الأكثر اعتدالًا ولكن الملحوظة التي يقدمها Ca2+ إلى خصائص العزل الكهربائي الداخلي. وبدلاً من ذلك، أظهر العمل باستخدام نسبة الممانعة عند 1 ميجا هرتز إلى 300 كيلو هرتز لتوصيف عتامة الخلية الفردية أيضًا القدرة على قياس التغيرات في العدلات بسبب التعرض للأيونوفور الكالسيوم [38]. هذا العمل لديه إنتاجية أعلى، وبالتالي حجم العينة؛ ومع ذلك، فهو يقتصر على خلايا الدم ويقتصر على تحليل الحجم والعتامة لتوصيف السكان الذين تمت دراستهم. من خلال قياس نطاق كامل من قيم الترددات بدلاً من الاعتماد على عدد أقل من الترددات، يُظهر هذا العمل التقاط خصائص العزل الكهربائي التي تمثل تغييرات معقدة ومتعددة الأوجه بسبب ارتفاع مستويات الكالسيوم 2+ الناجمة عن الأيونوميسين.

إن القدرة على تحديد تغيرات Ca2+ السيتوبلازمية لديها القدرة على المساعدة في تحسين فهمنا للعديد من أمراض العضلات الهيكلية المرتبطة مثل DMD، والدنف، وعملية تطور الساركوبينيا [2]. مع الأخذ في الاعتبار أن العمل المنشور سابقًا أظهر أيضًا أن تدفق الكالسيوم هو عامل مهم في الطريقة التي يغير بها الإجهاد التأكسدي طويل المدى الخواص الكهربائية لخلايا العضلات، فإن نتائج هذه الدراسة لا تهدف إلى التمييز بين سوء إدارة الكالسيوم والإجهاد التأكسدي بل تشرح السبب وراء ذلك. قد يساهم سوء إدارة الكالسيوم في استجابات الإجهاد التأكسدي التي تمت ملاحظتها سابقًا. يقتصر هذا العمل أيضًا على انتقائية الطريقة الطيفية الكهربائية لتحديد المساهمين الجزيئيين أو الأيونيين بشكل مؤكد. نظرًا لتعقيد إدارة الأيونات داخل نماذج الخلايا، بينما يهدف العلاج إلى تغيير تركيز Ca2+ داخل الخلايا، فإن تأثيرات الأيونات أو الجزيئات الأخرى قد تساهم أيضًا في التغييرات الملحوظة في الإشارة الكهربائية. تم الإبلاغ عن هذا القيد في انتقائية استشعار الأيونات في محلول مائي بترددات عالية [39،40]. نظرًا لأن القياسات الكهربائية غير محددة على نطاق واسع، ولأن الأمراض المؤكسدة لها تأثيرات معقدة ومتعددة الأوجه على خلايا العضلات، فإن الهدف هو توسيع فهم كيفية ظهور هذه التأثيرات كهربائيًا. بما أن علاج الأيونوميسين معروف بأنه يغير تركيز الأيونات داخل الخلايا دون التسبب في الإجهاد التأكسدي، فإن هذه الدراسة تسمح لنا بالتركيز على مظاهر اختلال توازن الكالسيوم في المعاوقة الخلوية. بالإضافة إلى ذلك، بينما يركز هذا العمل على العضلات الهيكلية، فإن إمكانية مراقبة استراحة الخلايا العصبية وتركيز Ca2+ المتغير لها آثار على العديد من الأمراض [41،42]. عادةً، يعتمد قياس Ca2+ في الجسم الحي على تضمين عوامل الفلورسنت مثل Fura-2 في هذا العمل للنظر إلى عصاري خلوي Ca2+ أو Mag-Fluo-4 لإلقاء نظرة على Ca2+ في الشبكة الإندوبلازمية [20,43]. ومع ذلك، تتطلب هذه الخيارات وضع العلامات على الخلايا وعمليات معالجة معقدة، وكلاهما يتم تجنبهما عن طريق القياس الكهربائي. يمكن للنظام الكهربائي المقدم أن يقدم رؤية أوسع لخصائص العزل الكهربائي للخلية الفردية بترددات متعددة، وقياس أكثر سرعة، وموارد أقل مطلوبة. هناك حاجة لإثبات حساسية واقعية للمستويات البيولوجية للسيتوبلازم Ca2+ لتشخيص الأمراض أو تطبيقات المراقبة، والتي ستشكل نهجنا في المستقبل. للمضي قدمًا، سيتم استخدام التغييرات الطيفية التي شوهدت في هذا العمل في دراسة أخرى للعينات السريرية ME/CFS التي تبحث في كيفية ربط الخواص الكهربائية للعضلات الهيكلية في مجموعة متنوعة من الترددات بالتغيرات البيولوجية لتعزيز فهمنا لهذا المرض النادر.

5. الاستنتاجات

استنادًا إلى القياسات الكهربائية والمعلمات المستخرجة المقابلة، هناك تغيير طفيف في الأنماط الطيفية ميغاهيرتز وجيجاهرتز التي يمكن ربطها بمستويات Ca2+ السيتوبلازمية المستندة إلى الصور الفلورية. يمكن وصف الاختلافات المقاسة كهربائيًا بشكل أكبر من خلال التغييرات في المعلمات العازلة للسماحية السيتوبلازمية (εc) والموصلية (σc). في هذا العمل، وجد أن زيادة تركيز Ca2+ السيتوبلازمي يمكن أن يرتبط بزيادة كبيرة في الموصلية السيتوبلازمية وانخفاض في السماحية السيتوبلازمية. يعمل نظام المراقبة هذا على تحسين عمق المعلومات المتوفرة حول الظروف داخل الخلايا ودراسة الأيونات في السيتوبلازم. العمل المقدم هنا محدود بسبب عدم وجود مقارنة مع ارتباط التركيز الحقيقي والاستشعار الانتقائي لنظام القياس لأيونات معينة؛ ولذلك، مزيد من الاستكشاف ضروري لتطوير نظام حقيقي لرصد الأمراض. ومع ذلك، فإن فهم مستويات Ca2+ هذه يمكن أن يساعد في فهم وتقييم تطور مرض العضلات الهيكلية وفعالية العلاج. بالإضافة إلى ذلك، من خلال نمذجة هذه التغييرات في سياق التغييرات المؤكسدة التي تم تقييمها مسبقًا، يمكن إجراء استنتاجات مهمة حول كيفية مساهمة الخصائص المختلفة المرتبطة بـ ME/CFS في المظهر الكهربائي العام للتحرك نحو أداة تشخيصية فريدة وسريعة.

الكاتب الاشتراكات:التصور، CAF، TP وXC؛ المنهجية، CAF، MF، TP، وXC؛ البرمجيات، كاف؛ التحقق من الصحة، CAF، MF، TP، وXC؛ التحليل الرسمي، CAF؛ التحقيق، CAF، CS، LM، TP، وXC؛ الموارد، TP وXC؛ تنظيم البيانات، CAF، CS، LM، وTP؛ الكتابة - إعداد المسودة الأصلية، CAF؛ الكتابة - المراجعة والتحرير، MF، TP وXC؛ التصور، CAF؛ الإشراف، MF، TP، وXC؛ إدارة المشروع، TP، وXC؛ الحصول على التمويل، TP، وXC لقد قرأ جميع المؤلفين النسخة المنشورة من المخطوطة ووافقوا عليها.

التمويل:CAF وXC يقدران الدعم من خلال التمويل المقدم من المؤسسة الوطنية للعلوم، قسم الكهرباء والاتصالات والأنظمة الإلكترونية منحة 1809623. ويتم دعم CS وLM وTP من خلال المنح الجامعية "G. d'Annunzio".

بيان مجلس المراجعة المؤسسية:غير قابل للتطبيق.

بيان الموافقة المستنيرة:غير قابل للتطبيق.

بيان توفر البيانات:البيانات متاحة عند الطلب.

تضارب المصالح:الكتاب تعلن أي تضارب في المصالح.

مراجع

1. بيكافيكو، س.؛ بوجلييلي، C .؛ بيترانجيلو، T.؛ بيلومو، ر. فانو، ج.؛ فولر، س. التأثيرات المعتمدة على العمر على الجوانب الوظيفية في الخلايا الساتلية البشرية. آن. نيويورك أكاد. الخيال العلمي. 2007، 1100، 345-352. [المرجع المتقاطع]

2. برافو ساغوا، ر.؛ بارا، V.؛ مونيوز كوردوفا، ف.؛ سانشيز أغيليرا، P .؛ غاريدو، V.؛ كونتريراس فيرات، أ؛ تشيونغ، م. Lavandero، S. الفصل الخامس - الشبكة الساركوبلازمية وإشارات الكالسيوم في خلايا العضلات: التوازن والمرض. في المراجعة الدولية للبيولوجيا الخلوية والجزيئية؛ Kepp، O.، Galluzzi، L.، Eds.؛ بيولوجيا الشبكة الإندوبلازمية. الصحافة الأكاديمية: كامبريدج، ماساتشوستس، الولايات المتحدة الأمريكية، 2020؛ المجلد 350، ص 197-264.

3. بروتاسي، ف.؛ بيترانجيلو، إل. Boncompagni، S. وحدات إدخال الكالسيوم (CEUs): وجهات نظر في وظيفة العضلات الهيكلية والأمراض. J. العضلات الدقة. موتيل الخلية. 2021، 42، 233-249. [CrossRef] [مجلات]

4. إسبينوزا، أ.؛ هنريكيز-أولغوين، سي؛ Jaimovich، E. أنواع الأكسجين التفاعلية وإشارات الكالسيوم في العضلات الهيكلية: الحديث المتبادل المتضمن في كل من الإشارات الطبيعية والمرض. خلية الكالسيوم 2016، 60، 172-179. [المرجع المتقاطع]

5. أغراوال، أ.؛ سورياكومار، ج؛ Rathor، R. دور إشارات الكالسيوم المعيبة 2+ في ضعف العضلات الهيكلية: الآثار الدوائية. J. الخلية المشتركة. الإشارة. 2018، 12، 645-659. [CrossRef] [مجلات]

6. جيروين، م.؛ مايس، م. آليات شرح التعب العضلي وآلام العضلات لدى المرضى الذين يعانون من التهاب الدماغ والنخاع العضلي / متلازمة التعب المزمن (ME / CFS): مراجعة للنتائج الأخيرة. العملة. الروماتول. النائب 2017، 19، 1. [المرجع المتقاطع]

7. دارجيلوس، إي. برولي، C .؛ كومباريت، ل.؛ حاج ساسي، ع؛ دولونج، س. بوسارد، S .؛ كوتين، P. تورط نظام التحلل البروتيني المعتمد على الكالسيوم في شيخوخة العضلات الهيكلية. إكسب. جيرونتول. 2007، 42، 1088-1098. [CrossRef] [مجلات]

8. ليجنديكر، دبليو جي؛ باساكين، إيه سي؛ ميتزينجر، L.؛ رويج، تنظيم UT للكالسيوم الخلوي في خلايا العضلات الهيكلية لفأرة Mdx في ظل ظروف الإجهاد. ر. جي فارماكول. 1996، 118، 611-616. [المرجع المتقاطع]

9. بيرشتولد، ميغاواط. برينكمير، ه.؛ Müntener، M. أيون الكالسيوم في العضلات الهيكلية: دوره الحاسم في وظيفة العضلات واللدونة والمرض. فيزيول. القس 2000، 80، 1215-1265. [المرجع المتقاطع]

10. تانغ، دبليو؛ تانغ، د.؛ ني، Z .؛ شيانغ، ن.؛ Yi، H. نظام تحليل محمول أحادي الخلية يدمج الاصطياد الهيدروديناميكي مع التحليل الطيفي للمقاومة واسع النطاق. الخيال العلمي. الصين تكنول. الخيال العلمي. 2017، 60، 1707-1715. [المرجع المتقاطع]

11. باو، العاشر. أوكيت، أنا. باو، J.؛ دويجن، J.؛ تشنغ، J.؛ كيل، د.؛ ليو، Z .؛ بويرس، ب. شرورز، D.؛ Nauwelaers، B. التحليل الطيفي العازل واسع النطاق لثقافات الخلايا. IEEE ترانس. ميكرو. تكنولوجيا النظرية. 2018، 66، 5750-5759. [المرجع المتقاطع]

12. نينغ، ي.؛ مولتاري، سي؛ لو، اكس؛ باليغو، سي. تشنغ، X.؛ هوانج، جي سي إم؛ دينزي، أ.؛ ميرلا، سي. أبولونيو، ف. Liberti, M. الكشف الكهربائي واسع النطاق للخلايا البيولوجية الفردية. IEEE ترانس. ميكرو. تكنولوجيا النظرية. 2014، 62، 1905-1911. [المرجع المتقاطع]

13. جرينير، ك.؛ طمرة، أ.؛ زيديك، أ.؛ بوارو، G.؛ أرتيس، ف؛ تشن، T.؛ تشن، دبليو؛ بوبوت، م.؛ فورني، J.-J؛ Dubuc, D. توصيف الجزيئات ذات الحجم المنخفض والخالية من الملصقات ومراقبة الخلايا باستخدام التحليل الطيفي العازل بالموجات الدقيقة. وفي وقائع مؤتمر IEEE الدولي للطب الحيوي بالموجات الدقيقة (IMBioC) لعام 2018، فيلادلفيا، بنسلفانيا، الولايات المتحدة الأمريكية، 14-15 يونيو 2018؛ IEEE: بيسكاتواي، نيوجيرسي، الولايات المتحدة الأمريكية، 2018؛ ص 82-84.

14. فوستر، KR. شوان، خصائص HP العازلة للأنسجة والمواد البيولوجية: مراجعة نقدية. الحرجة. القس بيوميد. م. 1989، 17، 25-104.

15. ماركس، غ. ديفي، CL الخصائص العازلة للخلايا البيولوجية في الترددات الراديوية: تطبيقات في التكنولوجيا الحيوية. انزيم. ميكروب. تكنول. 1999، 25، 161-171. [المرجع المتقاطع]

16. ناصر، ن.؛ الأحمد، م. توصيف الخلايا الكهربائية: خواص العزل الكهربائي، الخليط، ونظريات النمذجة. جي م. 2020، 2020، 9475490.

17. جرينير، ك.؛ دوبوك، D.؛ تشن، T.؛ أرتيس، ف؛ كريتيانوت، T.؛ بوبوت، م.؛ فورني، ج.-ج. التطورات الحديثة في التحليل الطيفي العازل المعتمد على الموجات الدقيقة على المستوى الخلوي لتحقيقات السرطان. IEEE ترانس. ميكرو. تكنولوجيا النظرية. 2013، 61، 2023-2030. [المرجع المتقاطع]

18. أي تي سي سي. L6-CRL -1458. متاح عبر الإنترنت: https://www.atcc.org/products/crl-1458 (تم الوصول إليه في 24 أكتوبر 2022).

19. فيوريتي، ب. بيترانجيلو، T.؛ كاتاكوزينو، إل. Franciolini، F. Intermediate-Conductance Ca2+-يتم التعبير عن قناة K+ المنشَّطة في الخلايا العضلية C2C12 ويتم تنظيمها أثناء تكوين العضل. أكون. جي فيسيول. فيزيول الخلية. 2005، 289، C89 – C96. [CrossRef] [مجلات]

20. بيترانجيلو، ت.؛ ماريجيو، MA؛ لورينزون، ب. فولر، س.؛ بروتاسي، ف؛ راثبون، م. فيرستوك، إي. Fanò، G. توصيف مواقع ربط GTP المحددة في خلايا العضلات الهيكلية للفأر C2C12. J. العضلات الدقة. موتيل الخلية. 2002، 23، 107-118. [CrossRef] [مجلات]

21. فيرغسون، سي. دبوس في.؛ دو، X.؛ فارينا، م.؛ هوانج، JMC. بيترانجيلو، T.؛ تشنغ، إكس. المعاوقة الكهربائية ذات النطاق العريض كتوصيف جديد للإجهاد التأكسدي في خلايا العضلات الهيكلية المفردة L6. شرجي. شيم. قانون 2021، 1173، 338678. [CrossRef] [PubMed]

22. دو، إكس؛ فيرغسون، C .؛ الأعلى.؛ تشنغ، X.؛ هوانج، جي سي إم، التحليل الطيفي للمقاومة فائقة العرض للنواة في الخلية الحية. IEEE J. الكهرومغناطيسية. الترددات اللاسلكية مايكرو. ميد. بيول. 2021، 6، 267-272. [المرجع المتقاطع]

23. دو، إكس؛ لادجارد، سي. الأعلى.؛ تشنغ، X.؛ هوانج، JCM الاستشعار الكهربائي واسع النطاق لحجم النواة في خلية حية من 900 هرتز إلى 40 جيجا هرتز. وفي وقائع مؤتمر IEEE MTT-S الدولي للطب الحيوي بالموجات الدقيقة لعام 2020 (IMBioC)، تولوز، فرنسا، 14-17 ديسمبر 2020؛ ص 1-4.

24. كاسبرز، ف. المفاهيم الأساسية لهندسة الترددات اللاسلكية: معلمات S. أرخايف 2012، أرخايف:1201.2346v1.

25. كيدوكورو، ي. التغيرات التنموية للخصائص الكهربائية للغشاء في خط خلايا العضلات الهيكلية للفئران. جي فيسيول. 1975، 244، 129-143. [CrossRef] [مجلات]

26. ما، العاشر. دو، X.؛ مولتاري، سي آر؛ نينغ، Y.؛ لو، اكس؛ غوليزاده، ف؛ باليغو، سي. تشنغ، X.؛ هوانج، JCM قياس النطاق العريض القابل للتكرار لسعة السيتوبلازم في الخلية البيولوجية. وفي وقائع الندوة الدولية لمعهد مهندسي الكهرباء والإلكترونيات MTT-S لعام 2016 (IMS)، سان فرانسيسكو، كاليفورنيا، الولايات المتحدة الأمريكية، 22-27 مايو 2016؛ IEEE: بيسكاتواي، نيوجيرسي، الولايات المتحدة الأمريكية، 2016؛ ص 1-4.

27. اردال، WL. تشابمان، سي جيه؛ تايلور، آر دبليو؛ فايفر، DR Ca2+ خصائص نقل الأيونوفورز A23187، والأيونوميسين، و4-BrA23187 في نظام نموذجي محدد جيدًا. بيوفيس. ج. 1994، 66، 1678-1693. [المرجع المتقاطع]

28. كاريدا، د.؛ يوريك، د.؛ كابيزاس، م. وولف، ل.؛ هدسون، ث؛ داو، جي إس، الاضطراب الناجم عن الميفلوكين في توازن الكالسيوم في خلايا الثدييات يشبه ذلك الذي يحدثه الأيونوميسين. مضاد للميكروبات. وكلاء كيموثر. 2008، 52، 684-693. [CrossRef] [مجلات]

29. سوزر، إب. فيرنييه، تعديل PT للاستجابات البيولوجية للمحفزات الكهربائية 2 نانو ثانية عن طريق عكس المجال. الكيمياء الحيوية. بيوفيس. اكتا (BBA) —الأغشية الحيوية. 2019، 1861، 1228-1239. [المرجع المتقاطع]

30. باخوموفا، أونتاريو؛ غريغوري، ب. سيمينوف، أنا. باخوموف، AG توسيع المسام بوساطة الكالسيوم وموت الخلايا بعد كهربية النانو. الكيمياء الحيوية. بيوفيس. اكتا 2014، 1838، 2547-2554. [CrossRef] [مجلات]

31. بيرك، RC. بارديت، سم؛ كار، L.؛ رومانينكو، S .؛ أرنو كورموس، د.؛ ليفيك، P.؛ تعمل الحقول الكهربائية النبضية بالنانو ثانية أوكونور على إزالة استقطاب إمكانات الغشاء عبر قنوات K+ وCa2+ وقنوات TRPM8 ذات البوابات الجهدية في خلايا الورم الأرومي الدبقي U87. الكيمياء الحيوية. بيوفيس. اكتا بيوممبر. 2017، 1859، 2040-2050. [المرجع المتقاطع]

32. تشانغ، J.؛ بلاكمور، PF. هارجريف، بي. شياو، س. بيبي، إس جيه؛ شوينباخ، KH المجال الكهربائي لنبض النانو ثانية (نبض النانو): ناهض جديد غير ليجند لتنشيط الصفائح الدموية. قوس. الكيمياء الحيوية. بيوفيس. 2008، 471، 240-248. [المرجع المتقاطع]

33. كيلر، سي. هيلستن، Y.؛ شتاينبرغ، أ.؛ كلارلوند بيدرسن، ب. التنظيم التفاضلي لـ IL-6 وTNF- عبر الكالسينورين في خلايا العضلات الهيكلية البشرية. سيتوكين 2006، 36، 141-147. [CrossRef] [مجلات]

34. هولمز، ايه جي. وات، مج. كاري، AL. فبرايرييو، MA الأيونوميسين، ولكن ليس الجرعات الفسيولوجية من الإبينفرين، يحفز العضلات الهيكلية إنترلوكين -6 تعبير mRNA وإطلاق البروتين. الأيض 2004، 53، 1492-1495. [المرجع المتقاطع]

35. هوانغ، هـ؛ تشاو، Y.؛ شانغ، X.؛ رن، ه.؛ تشاو، Y.؛ ليو، X. يتم تنظيم تعبير CAIII في العضلات الهيكلية بواسطة إشارات Ca2+ –CaMKII – MEF2C. إكسب. الدقة الخلية. 2019، 385، 111672. [المرجع المتقاطع]

36. روفا، د.؛ وو، خ. مارتونوسي، AN تأثير Ca2+ الأيونات على تخليق البروتينات في العضلات الهيكلية المزروعة. الكيمياء الحيوية. بيوفيس. اكتا (BBA) —الجنرال. سوبج. 1981، 674، 225-237. [المرجع المتقاطع]

37. بيترانجيلو، ت.؛ دي فيليبو، ES؛ مانسينيلي، ر. دوريا، C .؛ روتيني، أ. فانو-إيليك، ج.؛ فولر، إس. التدريب على التمارين الرياضية منخفضة الكثافة يحسن إمكانية تجديد العضلات الهيكلية. أمام. فيزيول. 2015، 6، 399. [CrossRef] [PubMed]

38. بيتشاكوب، سي؛ تاي، جلالة؛ لي، خه. Hou, HW القياس الخلوي المتكامل للمقاومة بالقصور الذاتي لعزل كريات الدم البيضاء السريعة الخالية من الملصقات وتحديد ملامح مصائد العدلات خارج الخلية (NETs). لاب تشيب 2019، 19، 1736-1746. [المرجع المتقاطع]

39. فونكنر، إس. نييهوس، ج.؛ شميت، دا؛ هايدن، م.؛ شواب، ج.؛ كالاهان، كم. توبياس، دي جي؛ Havenith، M. مشاهدة الحركات منخفضة التردد في محاليل الملح المائية: بصمات تيراهيرتز الاهتزازية للأيونات المائية. ج. صباحا. الكيمياء. شركة نفط الجنوب. 2012، 134، 1030-1035. [CrossRef] [مجلات]

40. بالوس، ف. كاليانان، NK؛ الجبرتي، هـ؛ وولف، م. كوهني، تد؛ سجادي، م. يكشف تحليل تيراهيرتز-رامان الطيفي الذي تم حله بالزمن أن الكاتيونات والأنيونات تعدل بشكل واضح التفاعلات بين جزيئات الماء. نات. الكيمياء. 2022، 14، 1031-1037. [المرجع المتقاطع]

41. جليشمان، م.؛ ماتسون، النائب توازن الكالسيوم العصبي وخلل التنظيم. مضاد للأكسدة. إشارة الأكسدة والاختزال. 2011، 14، 1261-1273. [CrossRef] [مجلات]

42. بريني، م. كالي، T.؛ أوتوليني، د.؛ كارافولي، إي. إشارات الكالسيوم العصبية: الوظيفة والخلل الوظيفي. خلية. مول. علوم الحياة. 2014، 71، 2787-2814. [المرجع المتقاطع]

43. ميلان، AF. رينكون، الزراعة العضوية؛ أرانجو، إل بي؛ ريوتوفيتش، AA؛ سميث، جي إل؛ جيرالدو، MA؛ بو عبد الله، ف.؛ كالديرون، معايرة JC للعضلات الهيكلية للثدييات Ca2+ العابرين المسجلين باستخدام Fast Ca2+ Dye Mag-Fluo-4. الكيمياء الحيوية. بيوفيس. اكتا (BBA) —الجنرال. سوبج. 2021، 1865، 129939. [المرجع المتقاطع]

إخلاء المسؤولية/ملاحظة الناشر:البيانات والآراء والبيانات الواردة في جميع المنشورات هي فقط تلك الخاصة بالمؤلف (المؤلفين) والمساهم (المساهمين) وليست MDPI و/أو المحرر (المحررين). يتنصل MDPI و/أو المحرر (المحررون) من المسؤولية عن أي إصابة للأشخاص أو الممتلكات ناتجة عن أي أفكار أو طرق أو تعليمات أو منتجات مشار إليها في المحتوى.

【لمزيد من المعلومات:george.deng@wecistanche.com / واتساب:8613632399501】