التغيرات في مستويات جليكوسيدات الفينيثانويد ، ونشاط مضادات الأكسدة ، وخصائص الجودة الأخرى في شرائح Cistanche Deserticola عن طريق المعالجة بالبخار
Mar 03, 2022
فانغ بينغ ، جون تشين ، شيا وانغ ، تشانغتشينغ شو ، تونغوينغ ليو ، ورونغ شو
معهد تطوير النباتات الطبية ، الأكاديمية الصينية للعلوم الطبية ، كلية الطب في اتحاد بكين ؛ 151 طريق ماليانوا ، بكين 100193 ، الصين
نينغشيا يونغ نينغ بلانتيشن أوف سيستانش ؛ طريق يونغهوانغ ، ينتشوان 750100 ، الصين.
اتصال:joanna.jia@wecistanche.com
الملخص
لقد حققنا في تأثير وقت التبخيرسيستانششرائح Deserticola YC MA من خلال تحليل مستويات المركبات النشطة بيولوجيًا والنشاط المضاد للأكسدة وفقدان الوزن مقارنةً بالعينات الطازجة والمجففة بالفرن مباشرةً والمبيضة. كانت العينات الطازجة تحتوي على مستويات منخفضة للغاية من جليكوسيدات الفينيثانويد ونشاط مضادات الأكسدة. تم العثور على مستويات منخفضة من فقدان الوزن وكميات أعلى من السكريات القابلة للذوبان والسكريات المتعددة ومستخلصات الإيثانول المخففة القابلة للذوبان عند تبخير الشرائح بدلاً من سلقها. احتوت الشرائح على البخار لمدة 5 و 7 دقائق بشكل ملحوظ (ص<0.05) higher="" amounts="" of="" acteoside,="" isoacteoside,="" and="" 2′-acetylacteoside="" than="" directly="" oven-dried="" samples.="" however,="" soluble="" sugars="" and="" dilute="" ethanol-soluble="" extracts="" decreased="" gradually="" throughout="" the="" steaming="" process.="" the="" concentration="" of="" polysaccharides="" fluctuated="" during="" the="" steaming="" process.="" the="" steaming="" time="" had="" a="" consistent="" effect="" on="" antioxidant="" properties="" evaluated="" by="" oxygen="" radical="" absorbance="" capacity="" (orac),="" 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl="" free="" radical="" scavenging="" activity="" (dpph),="" and="" ferric="" reducing="" antioxidant="" property="" (frap),="" showing="" a="" significant="" increase="" and="" reaching="" 108.62,="" 23.08,="" and="" 11.68="" micromoles="" trolox="" per="" mass="" of="" fresh="" slice="" (μmol="" te/g="" fw),="" respectively.="" the="" present="" results="" suggest="" that="" fresh-cut="" c.="" deserticola="" can="" be="" subjected="" to="" approximately="" 5–7="" min="" of="" steaming="" to="" improve="" phenylethanoid="" glycoside="" levels="" and="" antioxidant="" activity,="" while="" still="" preserving="" the="" amounts="" of="" soluble="" sugars,="" polysaccharides,="" and="" dilute="" ethanol-soluble="" extracts.="" these="" results="" would="" help="" to="" improve="" the="" production="" process="" for="" fresh-cut="" chinese="" medicines="" and="" increase="" the="" understanding="" of="" their="" associated="" health="">
cistancheتأثير التبييض على الجلد لمضادات الأكسدة
الكلمات الرئيسية: تبخير؛سيستانشالصحراء. جليكوسيد الفينيثانويد. النشاط المضاد للأكسدة؛ قطع جديد
سيستانشالصحراءيستخدم YC MA (Orobanchaceae) ، المعروف باسم "الجينسنغ الصحراوي" ، منذ فترة طويلة كمنشط في الصين واليابان. يتم تقطيع السيقان اللحمية إلى شرائح لعلاج الأمراض المختلفة بما في ذلك العجز الجنسي ، وعقم النساء ، والإحساس بالبرودة في الخاصرة والركبتين ، والإمساك عند كبار السن. في السنوات الأخيرة ، كشفت العديد من الدراسات عن فعاليتها في النماذج التجريبية المتعلقة بالاضطرابات العصبية ، وخاصة مرض الزهايمر ومرض باركنسون 1) أصبح سوق الغذاء الصحي مهتمًا بشكل متزايد بهذا المكمل الغذائي الطبيعي المفيد. يعد النبيذ والشاي المصنوعان من السيقان النضرة من الأطعمة الصحية الشائعة التي تخفف من التعب وتعزز التعلم والذاكرة. يعتبر C. -الشيخوخة 11) ، من بينها النشاط المضاد للأكسدة الذي يعتبر أساس الإجراءات الدوائية الأخرى. Echinacoside و acteoside هي علامات تمثيلية لمراقبة جودةسيستانشهيربافي دستور الأدوية الصيني (طبعة 2015) ، بسبب وفرتها السائدة وخصوصية جنسها وأنشطتها الحيوية البارزة. يتم أيضًا تضمين تحديد المستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول في مراقبة جودةسيستانشهيربا. سيستانوسيد أ، isoacteoside ، و 2′-acetylacteoside تم الإبلاغ عنها أيضًا لتكون وفيرة في C. 12)
أدى الطلب المتزايد على بكتيريا C. ينتمي C. تحتوي السيقان الطازجة عادة على 75-85 في المائة من الماء ، ويجب خفض مستوى الماء إلى أقل من 10 في المائة للحفاظ عليها. في غالبيةسيستانش- مناطق الإنتاج ، يتم وضع السيقان الطازجة الكاملة في حقول مفتوحة لمدة شهرين تقريبًا لعملية التجفيف الأولية. ثم تُنقل المادة المجففة إلى المصانع ، وتنقع في الماء ، وتُقطع إلى شرائح ، وتجفف مرة أخرى. قد يكون التأخير في تجهيز الشرائح ناتجًا عن ضعف التعليم أو سوء التجهيز للمزارعين. ومع ذلك ، فإن المشكلة الرئيسية هي نقص المعرفة والتكنولوجيا لتمكين عملية إنتاج فعالة.
تم استخدام المعالجة بالحرارة العالية على نطاق واسع في الخضار والفاكهة ويمكن أن تمنع نمو الميكروبات وتطيل العمر الافتراضي. أظهرت بعض المكونات النشطة بيولوجيًا ، 17) والأنشطة الدوائية مثل نشاط مضادات الأكسدة ، 18) زيادة في الأعشاب الطبية بعد التبخير. وبالتالي ، قد يؤدي تبخير C. تم الإبلاغ أيضًا عن استخدام التبخير أو التبييض على قطع C. قطع C. لذلك كان الهدف من هذه الدراسة هو فحص تأثير وقت التبخير (1 ، 3 ، 5 ، 7 دقائق) على عدد جليكوسيدات الفينيثانويد ، السكريات ، السكريات القابلة للذوبان ، مستخلصات الإيثانول المخففة القابلة للذوبان ، فقدان الوزن ، وخصائص مضادات الأكسدة في C شرائح الجرجير مقارنة مع ثلاث مجموعات أخرى (طازجة ، مجففة بالفرن مباشرة ، مبيضة).
cistancheلها آثار تبييض البشرة ومضاد للأكسدة
تجريبي
مواد كيميائية
المواد الكيميائية من الدرجة التحليلية: تم الحصول على الميثانول ، والإيثانول ، والجلوكوز D ، وحمض الكبريتيك ، وفوسفات هيدروجين البوتاسيوم ، وفوسفات هيدروجين البوتاسيوم أحادي الهيدرات من Beijing Chemical Works (بكين ، الصين). تم شراء حمض الفورميك والفينول من شركة Sinopharm Chemical Reagent Co. (شنغهاي ، الصين). تم شراء الميثانول بدرجة HPLC من Fisher Scientific (تورنتو ، كندا). تم الحصول على الماء منزوع الأيونات باستخدام نظام Milli-Q (Millipore Corp. ، Bedford ، MA ، USA). 2 ، 2- ثنائي فينيل -1- بيكريل هيدرازيل (DPPH) تم توفيره بواسطة Alfa Aesar (Ward Hill ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكية) و 2،2′-azobis (2- amino-propane) ثنائي هيدروكلوريد (AAPH) ) بواسطة Adamas-beta (شنغهاي ، الصين). 6- Methoxy -2، 5،7، 8- te-tramethylchromane -2- carboxylic acid (Trolox)، 2، 6- di-tertbutyl-p-cresol ( تم الحصول على BHT) ، وفلورسين (ملح الصوديوم) (FL) من TCI (طوكيو ، اليابان) ، ومجموعة فحص سعة مضادات الأكسدة الإجمالية (T-AOC) من معهد Nanjing Jiancheng Bioengineering (Nanjing ، الصين). تم شراء معايير acteoside (111530-200706) و echinacoside (111670-200503) من المعهد الوطني لمراقبة الغذاء والدواء (بكين ، الصين). تم تقديم معايير 2′-acetylacteoside و cistanoside A و isoacteoside كهدية من قبل الدكتور Zhiguo Ma. تم تحديد نقاء كل مركب مرجعي بأكثر من 98 في المائة عن طريق تطبيع منطقة الذروة التي اكتشفها كاشف صفيف الصمام الثنائي HPLC (DAD).
معالجة المواد وتحديد فقدان الوزن
تم جمع العينات في ربيع 2014 في Ningxia Plantation ofسيستانشHerba (1 0 6. 0 8 درجات شمالاً ، 38.24 درجة شرقًا ، 1124.2 م) في الصين ، وحددها أحدنا (البروفيسور جون تشين). تم إيداع عينة قسيمة في معهد تطوير النباتات الطبية ، الأكاديمية الصينية للعلوم الطبية ، كلية الطب في اتحاد بكين. تم جمع حوالي 3 كجم من سيقان C. تمت إزالة أجزاء الإزهار بواسطة سكين خزفي ، ثم تم تقطيع السيقان إلى شرائح 3 مم. تم قياس وزن كل شريحة 0 {{3 0} جرام بالوزن (W 0) كنسخة مكررة. تم تقييم سبع معالجات تجريبية مع ثلاثة مكررات لكل معاملة. للتبخير ، تم وضع أربع دفعات من الشرائح في بخار ماء 93 درجة لمدة 1 أو 3 أو 5 أو 7 دقائق. للتبييض ، تم وضع معاملة واحدة في 96 درجة من الماء لمدة 5 دقائق. كانت الشرائح الطازجة والمجففة بالفرن مباشرة هما المعاملتان الأخريان اللتان تم الإبلاغ عنهما في هذه التجربة. تم وزن الشرائح المعالجة (W1) وتجفيفها عند 60 درجة في الفرن. تم بعد ذلك إعادة وزن الشرائح المجففة (W2) وطحنها وسحقها (65 شبكة). تم تخزين مساحيق العينة في أكياس مفرغة من الهواء بدرجة حرارة -20 درجة حتى يوم التحليل. تم حساب فقدان الوزن على النحو التالي: فقدان الوزن بعد المعالجة بالحرارة العالية (النسبة المئوية)=[(W0 − W1) / W0] × 100 ، فقدان الوزن بعد تجفيف الفرن (النسبة المئوية)=[(W0 −W2) / W0] × 100 ، حيث W0 هو الوزن الأولي ، و W1 و W2 هي الأوزان التي تم قياسها بعد المعالجة بالحرارة العالية والتجفيف في الفرن ، على التوالي.
جليكوسيدات فينيلثانويد وخواص مضادات الأكسدة
استخراج العينات
{0}. 5- تم استخلاص عينة من المسحوق باستخدام 25 مل 60٪ من محلول ميثانول مائي بواسطة KQ -250 DE ultrasound (Kunshan Ultrasonic Instrument Co.، Jiangsu، الصين) عند 40 كيلو هرتز و 200 واط و 40 درجة لمدة 30 دقيقة. بعد الاستخراج ، تم طرد العينات المعالجة لمدة 10 دقائق عند 4600 × جم (TD5 ؛ شركة Hunan Herexi Instrument & Equipment Co. ، هونان ، الصين). تم ترشيح المادة الطافية من خلال مرشح حجم مسام 0. 45- ميكرومتر للتحليلات اللاحقة.
تحديد فينيلثانويد جليكوسيدات
تم إجراء تحديد إشنكوسايد ، سيستانوسيد A ، أكتيوسيد ، أيزوكتيوسيد ، و 2′-أسيتيلاكتيوسيد من عينات C. تم إجراء التحليل باستخدام أداة 2695-2996 HPLC (ووترز كورب ، ميلفورد ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكية) مع مراقبة امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 33 0 نانومتر. تم إجراء الفصل على عمود Merck Purospher® Star RP-C18 (25 0 مم × 4.6 مم ، 5 ميكرومتر) يعمل عند 3 0 درجة. تتكون الطور المتحرك بمعدل تدفق 1 مل / دقيقة من المذيب أ (ميثانول) والمذيب ب ({{3 0}. 1٪ حمض فورميك مائي ، حجم / حجم). تم تشغيل شطف التدرج على النحو التالي: 28 بالمائة أ (0 - 1 0 دقيقة) ، 28-38 بالمائة أ (10-30 دقيقة) ، 38 بالمائة أ (30-45 دقيقة) ، و كان حجم الحقن 10 ميكرولتر. تم تحضير محلول مختلط يحتوي على خمسة معايير مرجعية عن طريق إذابة المعايير المرجعية في 60 بالمائة من الميثانول إلى تركيز نهائي قدره 0.20 مجم / مل من أجل إشنكوسايد ، 0.21 مجم / مل من أجل أكتيوسيد ، 0.20 مجم / مل لـ 2′-acetylacteoside ، 0.05 مجم / مل. مل للسيستانوزيد A ، و 0.05 مجم / مل للإيزوكتيوسيد. ثم تم تخفيف المحلول إلى سبعة تراكيز مختلفة لإنشاء منحنيات المعايرة. تم التعبير عن تركيز جليكوسيدات الفينيثانويد للعينات بالجرام / كجم من الوزن الطازج (FW).
تحديد قدرة امتصاص الأكسجين الجذري (ORAC)
تم إجراء اختبار ORAC كما وصفه Huang et al. 22) مع بعض التعديلات. تم استخدام مضادات الأكسدة الاصطناعية BHT كعنصر تحكم إيجابي. باختصار ، تم خلط 25 ميكرولتر من مستخلصات العينة المخففة و 16 0 ميكرولتر FL في 96- صفيحة ميكروية جيدة. تم تحضين الخليط عند 37 درجة لمدة 15 دقيقة ، قبل إضافة 20 ميكرولتر AAPH. تمت مراقبة الإسفار باستخدام 485 نانومتر (إثارة) و 520 نانومتر (انبعاث) على فواصل زمنية 3- دقيقة لمدة 72 دقيقة باستخدام Fluoroskan Ascent FL (Thermo Scientific ، Waltham ، MA ، USA). تم استخدام ترولوكس (2.5-50.0 ميكرو مول / لتر) كمعيار مرجعي ، وتم التعبير عن النتائج بالميكرومولات من ترولوكس لكل كتلة شريحة طازجة ، µmol TE / g FW.
تحديد 2 ، 2- ثنائي فينيل -1- بيكريلهيدرازيل نشاط إزالة الجذور الحرة (DPPH)
تم إجراء اختبار DPPH كما وصفه Goupy وآخرون 23) مع بعض التعديلات. تم استخدام مضادات الأكسدة الاصطناعية BHT كعنصر تحكم إيجابي. باختصار ، تم خلط 1 مل من مستخلص العينة المخفف مع 1 مل من 0. 2 مليمول / لتر من محلول ميثانول DPPH. تم حفظ المحاليل في الظلام عند 25 درجة لمدة 9 0 دقائق ، ثم تم قياس الامتصاصية عند 517 نانومتر. تم استخدام Tro lox (4.0-119.5 ميكرو مول / لتر) كمعيار مرجعي ، وتم التعبير عن النتائج كميكرومولات من Trolox لكل كتلة شريحة طازجة ، µmol TE / g FW.
تحديد خصائص مضادات الأكسدة الحديديك (FRAP)
تم إجراء اختبار FRAP باستخدام مجموعة مقايسة T-AOC وفقًا لتعليمات الشركة الصانعة.
cistancheلها وظيفة تبييض البشرة ومضاد للأكسدة
السكريات القابلة للذوبان والسكريات
تحضير عينة من السكريات الذائبة
0. 5- تم استخلاص عينة من المسحوق باستخدام 25 مل من 80 بالمائة من محلول الإيثانول المائي بواسطة الموجات فوق الصوتية KQ -250 DE عند 40 كيلو هرتز و 150 واط و 80 درجة لمدة 30 دقيقة. تم ترشيح محلول الاستخلاص الأول ونقله إلى دورق حجمي 50- مل. تمت إعادة استخلاص الرواسب ، وتم دمج المرشح مع محلول الاستخلاص الأول في الدورق الحجمي 50- مل وتم تعبئته حتى العلامة باستخدام محلول إيثانول مائي بنسبة 80 بالمائة. بعد ذلك ، تم ضخ 1 مل من هذا المحلول في أنبوب زجاجي 10- مل لتبخير الإيثانول في حمام مائي مغلي. تمت إضافة الماء المقطر (5 مل) لإذابة المادة المتبقية ، ثم تم نقل هذا إلى دورق حجمي 100- مل وتم ملؤه حتى العلامة بالماء المقطر. أخيرًا ، تم استخدام 2 مل من هذا المحلول المخفف لتقدير السكريات القابلة للذوبان.
تحضير عينة من السكريات
تم تجفيف الرواسب الناتجة عن استخلاص السكريات القابلة للذوبان بالهواء واستخلاصها باستخدام 25 مل من الماء المقطر بواسطة الموجات فوق الصوتية KQ - 250 DE عند 40 كيلو هرتز و 150 واط و 80 درجة لمدة 30 دقيقة. تم ترشيح محلول الاستخلاص الأول ونقله إلى دورق حجمي 50- مل. تمت إعادة استخلاص الرواسب ، وتم دمج المرشح مع محلول الاستخلاص الأول في الدورق الحجمي 50- مل وتم تعبئته حتى العلامة بالماء المقطر. بعد ذلك ، تم ضخ 5- مل من محلول هذا في دورق حجمي 50- مل وتم تعبئته حتى العلامة بالماء المقطر. أخيرًا ، تم استخدام 2 مل من هذا المحلول المخفف لتحديد السكريات.
تقدير السكريات الذائبة والسكريات المتعددة
تم إجراء تحديد السكريات القابلة للذوبان والسكريات المتعددة باستخدام طريقة حمض الفينول-الكبريتيك ، كما هو موصوف بواسطة Wang et al. 24) تمت إضافة مليلتر واحد من محلول الفينول بنسبة 6 بالمائة إلى 2 مل من محلول العينة وخلطه جيدًا. بعد ذلك ، تمت إضافة 5 مل من حمض الكبريتيك المركز بسرعة ورجها لمدة 5 دقائق. تم نقل الخليط إلى حمام مائي مغلي لمدة 15 دقيقة وتم تبريده بسرعة إلى درجة حرارة الغرفة للكشف عن الأشعة فوق البنفسجية. تمت مراقبة امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 49 0 نانومتر في مقياس الطيف الضوئي UV2550 (شركة شيمادزو ، كيوتو ، اليابان). تم استخدام الماء المقطر كفراغ. تم وزن المعيار المرجعي D- الجلوكوز اللامائي بدقة وتم إذابته في الماء المقطر إلى تركيز نهائي قدره 0.10 مجم / مل. ثم تم تنقيط 1 ، 2 ، 3 ، 4 ، 5 ، 6 ، 7 مل من محلول المخزون في سبع قوارير حجمية 10- مل وتملأ حتى العلامة بالماء المقطر. ثم تم استخدام التراكيز السبعة المختلفة للحلول المعيارية لإنشاء منحنيات المعايرة.
تمييع مستخلصات الإيثانول القابلة للذوبان
تم وزن العينات (4. 0 جم) بدقة لتحديد مستخلصات الإيثانول المخففة القابلة للذوبان ، وفقًا للطريقة الموضحة في دستور الأدوية الصيني (إصدار 2015) .25) تم وزن عينة المسحوق (W3) واستخلاصها باستخدام 100 مل من محلول إيثانول مائي بنسبة 50 في المائة في دورق مخروطي 250- مل مع اهتزاز عرضي لمدة 6 ساعات ، ويترك لمدة 18 ساعة. يرشح محلول الاستخلاص وتبخر 20 مل من ناتج الترشيح حتى يجف ، ويجفف عند 105 درجة لمدة 3 ساعات ، ويبرد في مجفف (هلام السيليكا) لمدة 30 دقيقة. أخيرًا ، تم وزن الكمية بدقة (W4). تم التعبير عن محتوى مستخلص الإيثانول المخفف القابل للذوبان في صورة جم / كجم من FW للعينة. تم حساب المستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول على النحو التالي: تخفيف مستخلصات الإيثانول القابلة للذوبان (جم / كجم من FW)=[(W4 × 5) / W3] × (100 − W5) × 10 ، حيث W3 هو الوزن الأولي ، W4 هو الوزن المقاس بعد الاستخراج ، و W5 هو الوزن المفقود بعد التجفيف بالفرن (النسبة المئوية).
تحليل احصائي
لتوضيح أي اختلافات بين مجموعات العلاج ، تم تطبيق ANOVA أحادي الاتجاه باستخدام SPSS 13. 0 (SPSS Inc.، Chicago، IL، USA). تم تقييم الفروق باستخدام اختبار Duncan مع حد دلالة 0. 05. تم التعبير عن البيانات على أنها المتوسط ± الانحراف المعياري (SD) (ن =3).
النتائج والمناقشة
فقدان الوزن
يحدد وزن شرائح C. كما هو مبين في الجدول 1 ، تم تحليل فقدان الوزن في C. الصحراء بعد المعالجة بالحرارة العالية والتجفيف بالفرن. تم العثور على مستويات أقل من فقدان الوزن عندما تم تجفيف الشرائح مباشرة في الفرن بدلاً من البخار أو التبييض. سجلت العينات المبيضة أعلى مستويات فقدان الوزن. كانت العينات المطبوخة على البخار ذات مستويات أعلى من فقدان الوزن مع وقت أطول للبخار. سبع دقائق من التبخير ، وهو أطول وقت للشرائح المقطعة حديثًا للاحتفاظ بالشكل بشكل ملحوظ (ص<0.05) higher="" levels="" of="" weight="" loss="" after="" oven-drying="" than="" 5="" min="" of="" steaming.="" since="" phenylethanoid="" glycosides="" had="" been="" detected="" in="" the="" hot="" water="" (data="" not="" shown),="" it="" suggested="" that="" blanching/steaming="" promoted="" more="" water-soluble="" compounds="" to="" be="" dissolved="" in="" the="" hot="" water.="" concerning="" weight="" loss="" after="" high-heat="" exposure,="" samples="" steamed="" for="" 1="" min="" exhibited="" extremely="" low="" weight="" loss.="" therefore,="" 1="" min="" of="" steaming="" was="" too="" short="" to="" make="" the="">سيستانشهشاشة الأنسجة ، لذلك كانت أقل قدرة على إطلاق المركبات النشطة بيولوجيًا (مثل جليكوسيدات الفينيثانويد) أثناء إجراء الاستخراج اللاحق ، مقارنةً بالعينات التي تم تبخيرها لفترة أطول.
جليكوسيدات فينيلثانويد
يظهر في الشكل 1. إشيناكوسايد ، وسيستانوسيد أ ، وأكتيوسيد ، وإيزوكتيوسيد ، ومستويات 2′-أسيتيل لاكتوزيد في شرائح من C. } .29 جم / كجم من FW من cistanoside A ، بزيادة قدرها 140 و 6 أضعاف ، على التوالي ، مقارنةً بالشرائح الطازجة. ارتفع محتوى جليكوسيدات فينيل إيثانويد بشكل حاد عندما عولجت العينات الطازجة بالحرارة العالية والتجفيف ، خاصة أكتيوسيد ، إيزوكتيوسيد ، 2′-أسيتيل أكتيوسيد ، بينما لم يتم الكشف عنها في العينات الطازجة. قد يكون أحد الأسباب المحتملة لذلك هو تحلل جليكوسيدات فينيل إيثانويد بواسطة بيروكسيداز و -جلوكوزيداز .26) سيتم تعطيل هذه الإنزيمات في العينات المجففة بدرجات حرارة عالية وانخفاض محتوى الماء ، مما يؤدي إلى الاحتفاظ بمستويات عالية من جليكوسيدات فينيل إيثانويد في المستخلصات. علاوة على ذلك ، فإن جليكوسيدات الفينيثانويد عبارة عن مركبات فينولية ، يتم تصنيعها في النباتات الطازجة استجابةً للإجهاد الناتج عن ارتفاع درجة الحرارة وفقدان الرطوبة.
تم الإبلاغ عن كل من تبخير وتبييض قطع C.<0.05) lower="" concentration="" of="" acteoside="" and="" cistanoside="" a="" than="" drying="" directly.="" regarding="" the="" total="" concentration="" of="" the="" five="" phenylethanoid="" glycosides,="" the="" blanched="" samples="" were="" still="" lower="" than="" the="" directly="" oven-dried="" ones="" (1.73,="" 2.35="" g/kg="" fw,="" respectively).="" slices="" steamed="" for="" 5="" and="" 7="" min="" contained="" significantly=""><0.05) higher="" amounts="" of="" acteoside,="" isoacteoside,="" and="" 2′-acetylacteoside="" than="" directly="" oven-dried="" samples.="" in="" general,="" the="" highest="" levels="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" were="" found="" in="" the="" steamed="" samples,="" suggesting="" that="" the="" above-mentioned="" pharmacological="" activities="" produced="" by="" phenylethanoid="" glycosides="" in="" c.="" deserticola="" slices="" may="" be="" enhanced="" by="" steaming="">
علاوة على ذلك ، وجدنا أن وقت التبخير كان حاسمًا في تحديد محتوى جليكوسيدات الفينيثانويد. أظهر Echinacoside و cistanoside A و acteoside و isoacteoside اتجاهًا متزايدًا مماثلًا أثناء عملية التبخير ، والتي زادت بشكل حاد (عند 1 ، 3 دقائق) ووصلت إلى أقصى مستوياتها عند 7 دقائق. لم يلاحظ أي تغييرات كبيرة في جليكوسيدات الفينيثانويد المذكورة أعلاه خلال عملية التبخير من 3 إلى 7 دقائق. على العكس من ذلك ، 2′-acetyl-
زاد Acteoside بشكل ملحوظ (ص<0.05) with="" processing="" time.="" notably,="" the="" levels="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" in="" slices="" steamed="" for="" 1="" min="" were="" significantly=""><0.05) lower="" than="" directly="" oven-dried="" slices,="" except="" isoacteoside.="" therefore,="" 1="" min="" steaming="" of="" 3-mm="" fresh-cut="" c.="" deserticola="" was="" not="" long="" enough="" to="" inactivate="" the="" above-mentioned="" enzymes.="" higher="" total="" levels="" of="" the="" five="" phenylethanoid="" glycosides="" were="" observed="" when="" the="" slices="" were="" steamed="" for="" 5="" and="" 7="" min="" (3.20,="" 3.52="" g/kg="" fw,="" respectively)="" rather="" than="" directly="" oven="" drying.="" steaming="" from="" 5="" to="" 7="" min="" more="" effectively="" promoted="" the="" extraction="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" from="" c.="" deserticola,="" leading="" to="" a="" higher="" level="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" in="" the="">
النشاط المضاد للأكسدة
يتم عرض الخصائص المضادة للأكسدة للشرائح ، كما تم فحصها بواسطة ORAC و DPPH و FRAP ، في الشكل 2. كما هو متوقع ، أظهرت قيم ORAC تباينًا كبيرًا بين العينات ، يتراوح من 13.34 ميكرو مول TE / جم FW في العينات الطازجة ، إلى 108.62 ميكرولتر TE / g FW عند 7 دقائق من التبخير. أثناء عملية التبخير ، زادت قيمة ORAC 4- أضعاف بين 1 و 7 دقائق من البخار. لوحظت اتجاهات مماثلة في كل من مقايسات DPPH و FRAP ، مما يدل على زيادات سريعة أثناء العلاج بالبخار. على الرغم من أن العينات المعالجة بالبخار كانت تحتوي في البداية على قيم منخفضة من مضادات الأكسدة (عند دقيقة واحدة) ، إلا أنها أظهرت احتفاظًا أفضل بكثير بقدرة مضادات الأكسدة أثناء العملية. في حالة السلق ، لم يلاحظ وجود فروق معنوية في الخواص المضادة للأكسدة مقارنة بالتجفيف المباشر بالفرن.
لم يتم الإبلاغ سابقًا عن نشاط مضادات الأكسدة ORAC في السيقان الخام أو شرائح C. ومع ذلك ، فقد تم قياس مستخلصات الإيثانول من السيقان الخام لـ C. أعلى من BHT. علاوة على ذلك ، أظهرت جليكوسيدات الفينيثانويد المعزولة من C. من C. كما هو مبين في الجدول 2 ، عرضت BHT بشكل ملحوظ (ص<0.05) higher="" antioxidant="" properties="" than="" c.="" deserticola="" slices="" steamed="" for="" 7="" min.="" therefore,="" there="" is="" still="" a="" big="" gap="" between="" c.="" deserticola="" slices="" and="" synthetic="" antioxidants="" of="" equal="">
يستخدم اختبار DPPH كلاً من آليات نقل ذرة الهيدروجين (HAT) ونقل الإلكترون الفردي (SET) ، بينما تتبع فحوصات ORAC و FRAP مبادئ تفاعلات HAT و SET ، على التوالي .30) في هذه الدراسة ، الاتجاهات العامة لقدرة مضادات الأكسدة التي تم تقييمها من خلال المقايسات الثلاثة كانت متشابهة جدًا. وبالتالي ، تأكدنا من أن شرائح C.<0.05) higher="" levels="" of="" antioxidant="" activity="" than="" fresh="" ones.="" furthermore,="" steaming="" for="" 5="" and="" 7="" min="" significantly=""><0.05) enhanced="" levels="" of="" antioxidant="" activity="" compared="" with="" directly="" oven="" drying="" and="" blanching.="" overall,="" our="" results="" showed="" that="" steaming="" of="" fresh-cut="" c.="" deserticola="" slices="" was="" effective="" in="" preserving="" phenylethanoid="" glycoside="" levels="" and="" antioxidant="">
السكريات الذائبة ، السكريات المتعددة ، ومستخلصات الإيثانول المخففة القابلة للذوبان
As shown in Fig. 3, levels of soluble sugars and polysaccharides exhibited the following descending order: fresh>directly oven-dried>steamed>ابيض. تحتوي الشرائح المبيضة على مستويات منخفضة جدًا من السكريات القابلة للذوبان والسكريات المتعددة ومستخلص الإيثانول القابل للذوبان ، وهو ما يتوافق جيدًا مع فقدان الوزن المرتفع. العينات الطازجة كان لها بشكل ملحوظ (ص<0.05) higher="" content="" of="" soluble="" sugars="" (62.89="" g/kg="" fw)="" and="" polysaccharides="" (17.36="" g/kg="" fw)="" than="" the="" other="" samples,="" suggesting="" that="" heat="" treatment="" (oven="" drying,="" steaming,="" blanching)="" on="" fresh-cut="" samples="" would="" reduce="" the="" extraction="" of="" soluble="" sugars="" and="" polysaccharides.="" heat="" treatment="" inhibited="" the="" hydrolysis="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" to="" release="" glucose,="" rhamnose,="" and="" so="" on.="" moreover,="" heat="" treatment,="" used="" as="" abiotic="" stress="" factors="" on="" fresh="" slices,="" gave="" rise="" to="" the="" synthesis="" of="" several="" phenylpropanoid="" compounds="" including="" phenylethanoid="" glycosides.27)="" particularly,="" sugars="" contained="" in="" the="" slices="" were="" dissolved="" in="" the="" hot="" water="" to="" different="" extents="" by="" steaming="" or="" blanching.="" thus,="" it="" is="" not="" surprising="" to="" see="" that="" the="" content="" of="" soluble="" sugars="" decreased="" by="" 23.88%="" in="" steaming="" and="" by="" 60.82%="" in="" blanching,="" while="" the="" content="" of="" polysaccharides="" decreased="" by="" 41.33%="" in="" steaming="" and="" by="" 53.83%="" in="" blanching,="" compared="" with="" fresh="" slices.="" it="" has="" been="" reported="" that="" the="" steaming="" process="" can="" increase="" reducing="" sugars="" and="" acidic="" polysaccharides="" in="" ginseng="" radix="" et="" rhizoma,18)="" and="" mono="" sugars,="" including="" galactose="" and="" glucose,="" in="" rehmanniae="" radix.17)="" however,="" the="" whole="" dried="" crude="" drugs="" studied="" in="" the="" above-mentioned="" literature="" were="" quite="" different="" from="" the="" fresh-cut="" slices="" used="" in="" the="" present="">
تحتوي الشرائح المجففة بالفرن مباشرة على أعلى محتوى من مستخلصات الإيثانول المخفف القابلة للذوبان (89.26 جم / كجم من FW) ، بينما كانت الشرائح المبيضة أقل نسبة (47.60 جم / كجم وزن خفيف). على الرغم من أن جميع شرائح C. مقتطفات. فيما يتعلق بعملية التبخير ، كان اتجاه السكريات القابلة للذوبان مشابهًا جدًا للاتجاه الذي لوحظ بالنسبة لمستخلصات الإيثانول المخففة القابلة للذوبان ، حيث تناقصت تدريجيًا مع عدم وجود تغييرات ملحوظة من 3 إلى 7 دقائق. تذبذب تركيز السكريات مع زيادة طفيفة خلال فترة التبخير بأكملها. من الملاحظ أن 7 دقائق من التبخير أظهرت حفظًا جيدًا للسكريات ولكن فقدًا كبيرًا للسكريات القابلة للذوبان ، بينما أظهرت 5 دقائق من التبخير عكسيا ، مقارنة بالتجفيف المباشر للفرن.
استنتاج
لقد أبلغنا لأول مرة عن تأثير التبخير على المركبات النشطة بيولوجيًا والنشاط المضاد للأكسدة في C. أظهرت الشرائح الطازجة أسوأ كفاءة في استخلاص جليكوسيدات الفينيثانويد والمركبات المضادة للأكسدة ، وكشفت أن هذه المواد معرضة للتحلل الأنزيمي. في المقابل ، كانت العينات المبخرة تحتوي على أعلى مستويات جليكوسيدات الفينيثانويد وأنشطة مضادات الأكسدة. على الرغم من أن السلق عزز بشكل طفيف محتوى أكتيوسيد ، أيزوكتيوسيد ، و 2-أسيتيل لاكتوزيد مقارنة بالتجفيف المباشر للفرن ، فإن قيم الوزن ، والسكريات القابلة للذوبان ، والسكريات ، ومستخلصات الإيثانول المخففة للذوبان انخفضت بشكل كبير. بالنسبة لعملية التبخير ، زادت مستويات جليكوسيدات الفينيثانويد والسكريات زيادة طفيفة بمرور الوقت. تبخير لمدة 5 و 7 دقائق بشكل ملحوظ (ص<0.05) enhanced="" total="" levels="" of="" the="" five="" phenylethanoid="" glycosides="" than="" directly="" oven="" drying.="" however,="" the="" longer="" the="" steaming="" process,="" the="" greater="" the="" decrease="" in="" weight,="" soluble="" sugars,="" and="" dilute="" ethanol-soluble="" extracts.="" no="" significant="" decrease="" in="" soluble="" sugars="" was="" observed="" when="" slices="" were="" steamed="" from="" 1="" to="" 5="" min="" compared="" with="" directly="" oven-dried="" samples.="" the="" steaming="" time="" had="" a="" consistent="" effect="" on="" the="" antioxidant="" properties,="" with="" a="" significant="" increase="" evaluated="" by="" the="" dpph,="" orac,="" and="" frap="" assays.="" it="" was="" concluded="" that="" c.="" deserticola="" slices="" can="" be="" successfully="" treated="" with="" 5="" to="" 7="" min="" of="" steaming="" to="" improve="" the="" phenylethanoid="" glycoside="" levels="" and="" antioxidant="" activity,="" while="" preserving="" the="" amounts="" of="" soluble="" sugars,="" polysaccharides,="" and="" dilute="" ethanol-soluble="">
cistancheهو أحد مثبطات التيروزيناز القادر على ذلكمضاد للأكسدة
شكر وتقدير
تم دعم هذا العمل من خلال مشروع المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين بموجب المنحة رقم U14032224 و 81102748 ، كما تم دعمه أيضًا من خلال برنامج Key Technologies R & D لـ Ningxia بموجب المنحة رقم YKX -12. نتقدم بالشكر الجزيل للدكتور Zhiguo Ma لتقديم المعايير ، و Yucheng Chang و Yuan Liu لحصاد وجمع المواد النباتية في Ningxia Plantation of Cistanches Herba.
تضارب المصالح
الكتاب تعلن أي تضارب في المصالح.
المواد التكميلية
تحتوي النسخة الإلكترونية من هذه المقالة على مواد تكميلية.
مراجع
1) وانغ T. ، تشانغ XY ، Xie WY ، صباحا. J. تشين. متوسط ، 40 ، 1123-1141 (2012).
2) شيونغ كيو ، كادوتا س ، تاني ت ، نامبا ت ، بيول. فارم. الثور ، 19 ، 1580-1585 (1996).
3) Sui ZF ، Gu TM ، Liu B. ، Peng SW ، Zhao ZL ، Li L. ، Shi DF ، Yang RY ، Carbohydr. بوليم ، 85 ، 75-79 (2011).
4) Luo L.، Wu XC، Gao HJ، Lv SZ، Wang JH، Wang XW، Chin. فارم ، 24 ، 2122-2125 (2013).
5) لوه L.، Tuerxun A.، وانغ XW، تشين. كلين الأدوية الجديدة. ريم. ، 29 ، 115-118 (2010).
6) Xiong Q.، Hase K.، Tezuka Y.، Tani T.، Namba T.، Kadota S.، Planta Med.، 64، 120–125 (1998).
7) وانغ XY ، تشي Y. ، Cai RL ، Li XH ، Yang MH ، Shi Y. ، Acta Lab. الرسوم المتحركة. علوم. الخطيئة ، 17 ، 424-427 (2009).
8) Dong Q. ، Yao J. ، Fang JN ، Ding K. ، Carbohydr. الدقة ، 342 ، 1343-1349 (2007).
9) وانغ XY ، تشي Y. ، Cai RL ، Li XH ، Yang MH ، Shi Y. ، Chin. فارماكول. الثور ، 25 ، 787-790 (2009).
10) Gao JY، Jiang Y.، Dai F.، Han ZL، Liu HY، Bao Z.، Zhang TM، Tu PF، Mod. ذقن. متوسط ، 17 ، 307-310 ، 314 (2015).
11) Xue DJ، Zhang M.، Wu XH، Chen XD، Zhan YC، Chin. J. تشين. ماتر. متوسط ، 20 ، 687-689 ، 704 (1995).
12) Lu D.، Zhang JY، Yang ZY، Liu HM، Li S.، Wu BJ، Ma ZG، J. Sep. Sci.، 36، 1945–1952 (2013).
13) Xu R.، Chen J.، Chen SL، Liu TN، Zhu WC، Xu J.، Genet. إعادة تعكر. تطور المحاصيل ، 56 ، 137–142 (2009).
14) Ornelas-Paz Jde J.، Yahia EM، J. Sci. الزراعة الغذائية ، 94 ، 1078-1083 (2014).
15) Yun Z.، Gao HJ، Liu P.، Liu SZ، Luo T.، Jin S.، Xu Q.، Xu J.، Cheng YJ، Deng XX، BMC Plant Biol.، 13، 44 (2013).
16) Gorinstein S.، Leontowicz H.، Leontowicz M.، Namiesnik J.، Najman K.، Drzewiecki J.، Cvikrová M.، Martincová O.، Katrich E.، Trakhtenberg S.، J. Agric. Food Chem. ، 56 ، 4418-4426 (2008).
17) Chang WT، Choi YH، Van Der Heijden R.، Lee MS، Lin MK، Kong HW، Kim HK، Verpoorte R.، Hankemeier T.، Van Der Greef J.، Wang M.، Chem. فارم. الثور ، 59 ، 546-552 (2011).
18) Jin Y. ، Kim YJ ، Jeon JN ، Wang C. ، Min JW ، Noh HY ، Yang DC ، Plant Foods Hum. نوتر ، 70 ، 141-145 (2015).
19) Lei L.، Wang XY، CN Patent 200810059282.7 (2009).
20) Tu PF، Qi XB، Jiang Y.، Feng J.، CN Patent 200410048303.7 (2005).
21) Ma ZG، Yang ZL، Li P.، Li CH، J. Liquid Chromatogr. ريلات. Technol. ، 31 ، 2838-2850 (2008).
22) Huang D.، Ou BX، Hampsch-Woodill M.، Flanagan JA، Prior RL، J. Agric. Food Chem. ، 50 ، 4437-4444 (2002).
23) Goupy P.، Hugues M.، Boivin P.، Amiot MJ، J. Sci. الزراعة الغذائية ، 79 ، 1625–1634 (1999).
24) وانغ إل إن ، تشن جيه ، يانغ إم إتش ، تشين إس إل ، شي واي ، كي واي ، ليو تين ، تشين. فارم ، 18 ، 1620-1623 (2007).
25) "لجنة دستور الأدوية الصيني ، دستور الأدوية لجمهورية الصين الشعبية 2015 ،" المجلد الرابع ، مطبعة العلوم الطبية الصينية ، بكين ، 2015 ، ص. 202.
26) Tamura Y.، Nishibe S.، J. Agric. Food Chem. ، 50 ، 2514-2518 (2002).
27) حسين إم بي ، باري ريان سي ، مارتن ديانا إيه بي ، برونتون إن بي ، فود تشيم ، 123 ، 85-91 (2010).
28) Chen BQ، Liu YX، Kang WY، Fine Chem.، 27، 342–345 (2010).
29) يانغ جي إتش ، هو جي بي ، رينا كيه ، دو إن إس ، جي تشين. ميد. ماتر ، 32 ، 1067-1069 (2009).
30) السابق RL، Wu X.، Schaich K.، J. Agric. كيمياء الغذاء ، 53 ، 4290 - 4302 (2005).
