التغيرات في مستويات جليكوسيدات فينيلثانويد ونشاط مضادات الأكسدة وسمات الجودة الأخرى في شرائح Cistanche Deserticola عن طريق المعالجة بالبخار

سيستانش ديزيرتيكولا Y. C. MA(Orobanchaceae)، المعروف باسم "الجينسنغ الصحراوي"، يستخدم منذ فترة طويلة كمنشط في الصين واليابان. يتم تقطيع السيقان اللحمية إلى شرائح لعلاج أمراض مختلفة بما في ذلك العجز الجنسي، والعقم عند النساء، والإحساس بالبرد في الخاصرة والركبتين، والإمساك لدى كبار السن. وفي السنوات الأخيرة، كشفت العديد من الدراسات عن فعاليته في النماذج التجريبية التي تتعلق بالاضطرابات العصبية، وخاصة مرض الزهايمر ومرض باركنسون.أصبح سوق الأغذية الصحية مهتمًا بشكل متزايد بهذا المكمل الغذائي الطبيعي المفيد. يعتبر النبيذ والشاي المصنوعان من السيقان النضرة من الأطعمة الصحية الشائعة التي تخفف من التعب وتعزز التعلم والذاكرة.ج. ديزيرتيكولاهو مصدر غني لجليكوسيدات الفينيليثانويد، والسكريات، والسكريات القابلة للذوبان، والتي تظهر بشكل رئيسي مضادات الأكسدة،محمي للأعصاب,كبد,تعزيز المناعة،ملين،ومكافحة الشيخوخة التأثيرات، ومن بينها يعتبر النشاط المضاد للأكسدة أساسًا للتأثيرات الدوائية الأخرى. يعد Echinacoside وacteoside من العلامات التمثيلية لمراقبة جودة Cistanches Herba في دستور الأدوية الصيني (طبعة 2015)، نظرًا لوفرةهما السائدة، وخصوصية الجنس، والأنشطة الحيوية الملحوظة. يتم أيضًا تحديد المستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول في مراقبة الجودة في Cistanches Herba. كما تم الإبلاغ عن وفرة السيستانوسيد A، والإيزواكتيوسايد، و2'-أسيتيللاكتيوسيد.ج. ديزيرتيكولا. 

مستخلص السيستانش الطبيعي مكمل غذائي مضاد للإرهاق PHGS75% ECH 30% ACT 12%

الزيادةلقد أدى الطلب على C. deserticola إلى تحفيز زراعته بشكل كبير. C. deserticola ينتمي إلى عشبة طفيلية معمرة، تنمو بشكل رئيسي في المناطق القاحلة أو شبه القاحلة في شمال غرب الصين. مباشرة بعد الحصاد، يجب تجفيف هذه السيقان الخام الثقيلة ذات نسبة عالية من السكر لمنع فقدان المحتوى الغذائي والتلف. تحتوي السيقان الطازجة عادة على 75-85% من الماء، ويجب خفض مستوى الماء إلى أقل من 10% للحفاظ عليها. في غالبية المناطق المنتجة للسيستانش، يتم وضع السيقان الطازجة الكاملة في الحقول المفتوحة لمدة شهرين تقريبًا لعملية التجفيف الأولية. يتم بعد ذلك نقل المواد المجففة إلى المصانع، ونقعها في الماء، وتقطيعها إلى شرائح، وتجفيفها مرة أخرى. قد يكون التأخير في تجهيز الشرائح نتيجة لضعف التعليم أو سوء التجهيز للمزارعين. ومع ذلك، فإن المشكلة الرئيسية تكمن في نقص المعرفة والتكنولوجيا لتمكين عملية إنتاج فعالة.

تم استخدام المعالجة بالحرارة العالية على نطاق واسع للخضروات والفواكه، ويمكن أن تمنع نمو الميكروبات وتطيل مدة الصلاحية. ومع ذلك، يمكن أن يؤدي أيضًا إلى تغييرات في المظهر وتكوين العناصر الغذائية. ثبت أن بعض المكونات النشطة بيولوجيًا والأنشطة الدوائية مثل نشاط مضادات الأكسدة تزيد في الأعشاب الطبية بعد التبخير. وبالتالي، فإن تبخير C. deserticola قد يحسن العديد من الفوائد الصحية. كما تم الإبلاغ عن استخدام التبخير أو السلق على قطع C. deserticola الطازجة لتعزيز كمياتهاإشيناكوسيد وأكتيوسيدي.19،20) ومع ذلك، لم يتم إجراء تحقيق تفصيلي لمقارنة التغيرات في المركبات النشطة بيولوجيًا ونشاط مضادات الأكسدة في قطع C. deserticola الطازجة أثناء عملية التبخير. كان الهدف من هذه الدراسة هو دراسة تأثير وقت التبخير (1، 3، 5، 7 دقائق) على كمية جليكوسيدات الفينيلثانويد، والسكريات، والسكريات القابلة للذوبان، والمستخلصات القابلة للذوبان في الإيثانول المخففة، وفقدان الوزن، والخصائص المضادة للأكسدة. في شرائح C. deserticola مقارنة بثلاث مجموعات أخرى (طازجة، مجففة بالفرن مباشرة، ومبيضة).

تجريبي

مواد كيميائية

المواد الكيميائية التحليلية: الميثانول، والإيثانول، والجلوكوز D، وحمض الكبريتيك، وفوسفات هيدروجين البوتاسيوم، ومونوهيدرات فوسفات هيدروجين البوتاسيوم تم الحصول عليها من شركة Beijing Chemical Works (بكين، الصين). تم شراء حمض الفورميك والفينول من شركة Sinopharm Chemical Reagent Co. (شنغهاي، الصين). تم شراء الميثانول من فئة HPLC من Fisher Scientific (تورنتو، كندا). تم الحصول على الماء منزوع الأيونات باستخدام نظام Milli-Q (Millipore Corp.، Bedford، MA، USA). 2، 2- ثنائي فينيل -1- بيكريل هيدرازيل (DPPH) تم توفيره بواسطة Alfa Aesar (Ward Hill، MA، USA) و2،2′-azobis (2- أمينو بروبان) ثنائي هيدروكلوريد (AAPH) ) بواسطة أداماس بيتا (شنغهاي، الصين). 6-ميثوكسي-2,5,7,8- رباعي ميثيل كرومان-2-حمض الكربوكسيل (ترولوكس)، 2،6-ثنائي-ثالث بوتيل-بي-كريسول (BHT) ، وتم الحصول على فلوريسئين (ملح الصوديوم) (FL) من TCI (طوكيو، اليابان)، ومجموعة مقايسة إجمالي قدرة مضادات الأكسدة (T-AOC) من معهد نانجينغ جيانتشنغ للهندسة الحيوية (نانجينغ، الصين). تم شراء معايير الأكتيوسيد (111530-200706) والإكيناكوسيد (111670-200503) من المعهد الوطني لمراقبة الأغذية والأدوية (بكين، الصين). المعايير ل2′-أسيتيللاكتيوسايدو cistanoside A و isoacteoside تم تقديمها كهدية من قبل الدكتور Zhiguo Ma. تم تحديد نقاء كل مركب مرجعي بأكثر من 98% عن طريق تطبيع منطقة الذروة التي اكتشفها كاشف صفيف الصمام الثنائي HPLC (DAD).

معالجة المواد وتحديد فقدان الوزن

تم جمع العينات في ربيع 2{{10}}14 في مزرعة نينغشيا في سيستانشس هيربا (106.08 درجة شمالاً، 38.24 درجة شرقًا، 1124.2 م ) في الصين، وتعرف عليه أحدنا (البروفيسور جون تشن). تم إيداع عينة قسيمة في معهد تطوير النباتات الطبية، الأكاديمية الصينية للعلوم الطبية، كلية الطب في بكين يونيون. تم جمع حوالي 3 كجم من سيقان C. deserticola بشكل عشوائي وشطفها بالماء النظيف. تتم إزالة أجزاء الإزهار بسكين من السيراميك، ثم يتم تقطيع السيقان إلى شرائح بحجم 3 مم. تم قياس كل شريحة 100 جم بالوزن (W0) كنسخة متماثلة. تم تقييم سبعة علاجات تجريبية مع ثلاث مكررات لكل علاج. للتبخير، تم وضع أربع دفعات من الشرائح في بخار ماء بدرجة 93 لمدة 1، 3، 5، أو 7 دقائق. من أجل التبييض، تم وضع معالجة واحدة في ماء بدرجة حرارة 96 درجة لمدة 5 دقائق. وكانت الشرائح الطازجة والمجففة بالفرن مباشرة هي العلاجين الآخرين المذكورين في هذه التجربة. تم وزن الشرائح المعالجة (W1) وتجفيفها في الفرن عند درجة حرارة 60 درجة. تم بعد ذلك إعادة وزن الشرائح المجففة (W2)، وطحنها، وسحقها (65 شبكة). تم تخزين مساحيق العينات في أكياس مفرغة عند درجة حرارة -20 حتى يوم التحليل. تم حساب فقدان الوزن على النحو التالي: فقدان الوزن بعد المعالجة بالحرارة العالية (%)=[(W0−W1)/ W0]×100، فقدان الوزن بعد التجفيف بالفرن (%)=[(W0) −W2)/W0]× 100، حيث W0 هو الوزن الأولي، وW1 وW2 هما الأوزان المقاسة بعد المعالجة بالحرارة العالية والتجفيف بالفرن، على التوالي.

جليكوسيدات فينيلثانويد وخصائص مضادة للأكسدة

استخراج العينات

A {{0}}.5- تم استخراج عينة مسحوقة باستخدام 25 مل من محلول ميثانول مائي بنسبة 60% بواسطة الموجات فوق الصوتية KQ-250DE (Kunshan Ultrasonic Instrument Co.، Jiangsu، الصين) عند 40 كيلو هرتز و200 وات و40 درجة لمدة 30 دقيقة. بعد الاستخراج، تم طرد العينات المعالجة لمدة 10 دقائق عند 4600 × جم (TD5؛ شركة Hunan Herexi Instrument & Equipment Co.، Hunan، China). تم ترشيح المادة الطافية من خلال مرشح حجم المسام 0.45- ميكرومتر للتحليلات اللاحقة.

تحديد جليكوسيدات فينيلثانويد

تحديد إشيناكوسيد، سيستانوسيد A،أكتيوسيد، إيزواكتيوسايد، و2′-أسيتيللاكتيوسايدمن عينات C. deserticola تم إجراؤها كما وصفها Ma et al.21) مع بعض التعديلات. تم إجراء التحليل باستخدام أداة HPLC 2695-2996 (Waters Corp.، Milford، MA، USA) مع مراقبة امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 33 0 نانومتر. تم إجراء الفصل على عمود Merck Purospher® Star RP-C18 (250 مم × 4.6 مم، 5 ميكرومتر) يعمل عند درجة 30 . يتكون الطور المتحرك بمعدل تدفق 1 مل/دقيقة من المذيب A (الميثانول) والمذيب B (0.1% حمض الفورميك المائي، v/v). تم تشغيل شطف التدرج على النحو التالي: 28% A ({{30}}–10 دقيقة)، 28–38% A (10–30 دقيقة)، 38% A (30– 45 دقيقة)، وكان حجم الحقن 10 ميكرولتر. تم تحضير محلول مختلط يحتوي على خمسة معايير مرجعية عن طريق إذابة المعايير المرجعية في 60٪ ميثانول إلى تركيز نهائي قدره 0.20 ملغم / مل للإشيناكوسيد، 0.21 ملغم / مل للأكتيوسيد، 0.20 ملغم / مل لـ 2′-أسيتيللاكتيوسيد، 0.05 ملغم / مل مل سيستانوسيد أ، و 0.05 ملغم / مل إيزواكتيوسيدي. تم بعد ذلك تخفيف المحلول إلى سبعة تركيزات مختلفة لإنشاء منحنيات المعايرة. تم التعبير عن تركيز جليكوسيدات فينيلثانويد في العينات بالجرام / كجم من الوزن الطازج (FW).

مستخلص السيستانش الطبيعي يحسن الذاكرة، مكمل غذائي PHGS75% ECH 30% ACT 12%

تحديد قدرة الامتصاص الجذري للأكسجين (ORAC)

تم إجراء اختبار ORAC كما وصفه Huang et al.22) مع بعض التعديلات. تم استخدام مضادات الأكسدة الاصطناعية BHT كعنصر تحكم إيجابي. باختصار، تم خلط 25 ميكرولتر من مستخلصات العينات المخففة و160 ميكرولتر FL في صفيحة ميكروية جيدة 96-. تم تحضين الخليط عند 37 درجة لمدة 15 دقيقة، قبل إضافة 20 ميكرولتر من AAPH. تمت مراقبة التألق باستخدام 485 نانومتر (الإثارة) و 520 نانومتر (الانبعاث) على فترات 3- دقيقة لمدة 72 دقيقة باستخدام Fluoroskan Ascent FL (Thermo Scientific، Waltham، MA، USA). تم استخدام Trolox (2.5–50.0 ميكرومول/لتر) كمعيار مرجعي، وتم التعبير عن النتائج على شكل ميكرومول من Trolox لكل كتلة من الشريحة الطازجة، μmol TE/g FW.

تحديد 2،2- ثنائي فينيل -1- بيكريل هيدرازيل نشاط كسح الجذور الحرة (DPPH)

تم إجراء اختبار DPPH كما وصفه Goupy et al.23) مع بعض التعديلات. تم استخدام مضادات الأكسدة الاصطناعية BHT كعنصر تحكم إيجابي. باختصار، تم خلط 1 مل من مستخلص العينة المخفف مع 1 مل من محلول ميثانول 0.2 ملي مول/لتر DPPH. تم حفظ المحاليل في الظلام عند درجة حرارة 25 لمدة 90 دقائق، ثم تم قياس الامتصاصية عند 517 نانومتر. تم استخدام Trolox (4.0–119.5 ميكرومول/لتر) كمعيار مرجعي، وتم التعبير عن النتائج على شكل ميكرومول من Trolox لكل كتلة من الشريحة الطازجة، μmol TE/g FW.

تحديد خاصية تقليل الحديديك المضادة للأكسدة (FRAP)

تم إجراء اختبار FRAP باستخدام مجموعة الفحص T-AOC وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة.

السكريات القابلة للذوبان والسكريات

تحضير عينة من السكريات القابلة للذوبان

تم استخراج عينة مسحوق 0.5- جم باستخدام 25 مل من محلول مائي من الإيثانول بنسبة 80% بواسطة الموجات فوق الصوتية KQ-250DE عند 40 كيلو هرتز، و150 وات، و80 درجة لمدة 30 دقيقة. تم ترشيح المحلول الاستخراجي الأول ونقله إلى دورق حجمي 50-مل. تمت إعادة استخلاص الرواسب، وتم دمج المرشح مع المحلول الاستخراجي الأول في الدورق الحجمي 50- مل وتم ملؤه حتى العلامة بمحلول إيثانول مائي 80%.

بعد ذلك، تم ضخ 1 مل من هذا المحلول في أنبوب زجاجي 10-مل لتبخير الإيثانول في حمام مائي مغلي. تمت إضافة الماء المقطر (5 مل) لإذابة المادة المتبقية، ثم تم نقل ذلك إلى دورق حجمي 100- مل وتم ملؤه حتى العلامة بالماء المقطر. وأخيرا، تم استخدام 2 مل من هذا المحلول المخفف لتقدير السكريات القابلة للذوبان.

تحضير عينة من السكريات

تم تجفيف الرواسب الناتجة عن استخلاص السكريات القابلة للذوبان بالهواء واستخلاصها باستخدام 25 مل من الماء المقطر بواسطة الموجات فوق الصوتية KQ- 250DE عند 40 كيلو هرتز و150 وات و80 درجة لمدة 30 دقيقة. تم ترشيح المحلول الاستخراجي الأول ونقله إلى دورق حجمي يبلغ 50- مل. تمت إعادة استخلاص الرواسب، وتم دمج ناتج الترشيح مع محلول الاستخلاص الأول في الدورق الحجمي 50- مل وتم ملؤه حتى العلامة بالماء المقطر. بعد ذلك، تم ضخ محلول 5- مل من هذا في دورق حجمي 50- مل وتم ملؤه حتى العلامة بالماء المقطر. وأخيرا، تم استخدام 2 مل من هذا المحلول المخفف لتقدير السكريات.

تحديد السكريات القابلة للذوبان والسكريات

تم إجراء تقدير السكريات القابلة للذوبان وعديدات السكاريد باستخدام طريقة حمض الفينول-الكبريت، كما وصفها Wang et al.24) تمت إضافة مليلتر واحد من محلول الفينول 6% إلى 2 مل من محلول العينة وخلطه جيدًا. بعد ذلك، تمت إضافة 5 مل من حمض الكبريتيك المركز بسرعة ورجها لمدة 5 دقائق. تم نقل الخليط إلى حمام ماء مغلي لمدة 15 دقيقة وتم تبريده بسرعة إلى درجة حرارة الغرفة للكشف عن الأشعة فوق البنفسجية. تمت مراقبة امتصاص الأشعة فوق البنفسجية عند 490 نانومتر في مقياس الطيف الضوئي UV2550 (شركة شيمادزو، كيوتو، اليابان). تم استخدام الماء المقطر كمادة فارغة. تم وزن الجلوكوز D اللامائي القياسي المرجعي بدقة وتذويبه في الماء المقطر إلى تركيز نهائي قدره 0.10 مجم / مل. بعد ذلك، تم ضخ 1، 2، 3، 4، 5، 6، و7 مل من محلول المخزون في سبعة قوارير حجمية 10- مل وتم ملؤها حتى العلامة بالماء المقطر. ثم تم استخدام التركيزات السبعة المختلفة للحلول القياسية لإنشاء منحنيات المعايرة.

تمييع المستخلصات القابلة للذوبان في الإيثانول

تم وزن العينات (4.0 جم) بدقة لتحديد مستخلصاتها المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول، وفقًا للطريقة الموضحة في دستور الأدوية الصيني (إصدار 2015).25) تم وزن العينة المسحوقة (W3) واستخلصت باستخدام 100 مل من محلول مائي من الإيثانول 50٪ في دورق مخروطي 250- مل مع الرج بين الحين والآخر لمدة 6 ساعات ويسمح له بالوقوف لمدة 18 ساعة. تم ترشيح المحلول المستخلص وتم تبخير 20 مل من المادة المرشحة حتى الجفاف، وتجفيفها عند 105 درجة لمدة 3 ساعات، وتبريدها في مجفف (جل سيليكا) لمدة 30 دقيقة. وأخيرا، تم وزن الكمية بدقة (W4). تم التعبير عن محتوى المستخلص المخفف القابل للذوبان في الإيثانول بـ جم / كجم مهاجم للعينة. تم حساب المستخلصات القابلة للذوبان في الإيثانول المخففة على النحو التالي: المستخلصات القابلة للذوبان في الإيثانول المخفف (جم / كجم FW) =[(W4×5)/W3]×(100−W5)×10، حيث W3 هو الوزن الأولي W4 هو الوزن المقاس بعد الاستخراج، وW5 هو فقدان الوزن بعد التجفيف بالفرن (٪).

تحليل احصائي

لتوضيح أي اختلافات بين مجموعات العلاج، تم تطبيق ANOVA أحادي الاتجاه باستخدام SPSS 13.0 (SPSS Inc.، Chicago، IL، USA). تم تقييم الفروق باستخدام اختبار دنكان بحد معنوي قدره 0.05. تم التعبير عن البيانات على أنها الانحراف المعياري (SD) (n =3).

النتائج والمناقشة

فقدان الوزن

إن وزن شرائح C. deserticola يحدد بشكل مباشر قيمتها التجارية في سوق الأعشاب الطبية. كما هو مبين في الجدول 1، تم تحليل فقدان الوزن لـ C. deserticola بعد المعالجة بالحرارة العالية والتجفيف بالفرن. تم العثور على مستويات أقل من فقدان الوزن عندما تم تجفيف الشرائح مباشرة في الفرن بدلاً من طهيها على البخار أو سلقها. كان للعينات المبيضة أعلى مستويات فقدان الوزن. أظهرت العينات المطبوخة على البخار مستويات أعلى من فقدان الوزن مع وقت تبخير أطول. أظهرت سبع دقائق من التبخير، وهي أطول مدة تحافظ فيها الشرائح الطازجة على شكلها، بشكل ملحوظ (ص<0.05) higher levels of weight loss after oven-drying than 5 min of steaming. Since phenylethanoid glycosides had been detected in the hot water (data not shown), it suggested that blanching/steaming promoted more water-soluble compounds to be dissolved in the hot water. Concerning weight loss after high-heat exposure, samples steamed for 1 minute exhibited extremely low weight loss. Therefore, 1 min of steaming was too short to make the Cistanche tissue brittle, so it was less able to release bioactive compounds (such as phenylethanoid glycosides) during the subsequent extraction procedure, compared with samples that had been steamed longer.

جليكوسيدات فينيلثانويد

يظهر في الشكل 1. مستويات الإيتشيناكوسايد، والسيستانوسايد A، والأكتيوسايد، والإيزوكتيوسايد، و2′-أسيتيللاكتيوسايد في شرائح C. deserticola التي تمت معالجتها بطرق مختلفة. وتحتوي العينات المطبوخة على البخار لمدة 7 دقائق على 2.16 جم/كجم من الوزن الزائد للإكيناكوسيد و{{6} .29 جم / كجم مهاجم من السيستانوسيد A، بزيادة قدرها −140 و −6 أضعاف، على التوالي، مقارنة بالشرائح الطازجة. ارتفع محتوى جليكوسيدات الفينيليثانويد بشكل حاد عندما تمت معالجة العينات الطازجة بدرجة حرارة عالية وتجفيف، خاصةأكتيوسيد، إيزواكتيوسايد، و2′-أسيتيللاكتيوسايد،بينما لم يتم اكتشافها في العينات الطازجة. قد يكون أحد الأسباب المحتملة لذلك هو تحلل جليكوسيدات فينيلثانويد بواسطة البيروكسيداز والجلوكوزيداز. سيتم تعطيل هذه الإنزيمات في العينات المجففة بدرجات حرارة عالية وانخفاض محتوى الماء، مما يؤدي إلى الاحتفاظ بمستويات عالية من جليكوسيدات الفينيليثانويد في المستخلصات. علاوة على ذلك، فإن جليكوسيدات الفينيليثانويد عبارة عن مركبات فينولية، والتي سيتم تصنيعها في النباتات الطازجة استجابة لضغوط درجات الحرارة المرتفعة وفقدان الرطوبة.

سيستانش توبولوسا الطبيعي يحسن وظيفة الكلى PHGS75% ECH 30% ACT 12%

تم الإبلاغ عن أن كلاً من التبخير والسلق لقطع C. deserticola الطازجة يعزز محتوى الإكيناكوسيد والأكتيوسيد.19،20) ومع ذلك، في هذه الدراسة، أعطى السلق تأثيرًا ملحوظًا (ص)<0.05) lower concentration of acteoside and cistanoside A than drying directly. Regarding the total concentration of the five phenylethanoid glycosides, the blanched samples were still lower than the directly oven-dried ones (1.73, 2.35 g/kg FW, respectively). Slices steamed for 5 and 7 min contained significantly (p<0.05) higher amounts of acteoside, isoacteoside, and 2′-acetylacteoside than directly oven-dried samples. In general, the highest levels of phenylethanoid glycosides were found in the steamed samples, suggesting that the above-mentioned pharmacological activities produced by جليكوسيدات فينيليثانويدفي C. يمكن تعزيز شرائح deserticola عن طريق العلاج بالبخار.

علاوة على ذلك، وجدنا أن وقت التبخير كان حاسمًا في تحديد محتوى جليكوسيدات الفينيليثانويد. أظهر كل من Echinacoside وcistanoside A وacteoside وisoacteoside اتجاهًا متزايدًا مماثلاً أثناء عملية التبخير، والذي زاد بشكل حاد (عند 1، 3 دقائق) ووصل إلى مستوياته القصوى عند 7 دقائق. لم يلاحظ أي تغيرات كبيرة في جليكوسيدات الفينيلثانويد الأربعة المذكورة أعلاه أثناء عملية التبخير من 3 إلى 7 دقائق. على العكس من ذلك، زاد 2′-أسيتيللاكتيوسيد بشكل ملحوظ (ص<0.05) with processing time. Notably, the levels of phenylethanoid glycosides in slices steamed for 1 min were significantly (p<0.05) lower than in directly oven-dried slices, except isoacteoside. Therefore, 1 min steaming of 3-mm fresh-cut C. deserticola was not long enough to inactivate the above-mentioned enzymes. Higher total levels of the five phenylethanoid glycosides were observed when the slices were steamed for 5 and 7 min (3.20, 3.52 g/kg FW, respectively) rather than directly oven drying. Steaming from 5 to 7 min more effectively promoted the extraction of phenylethanoid glycosides from C. deserticola, leading to a higher level of phenylethanoid glycosides in the extracts.

الشكل 1. تركيز (جم/كجم FW) من الإكيناكوسيد (A)، والسيستانوسايد A (B)، والأكتيوسيد (C)، والإيزواكتيوسايد (D)، و2′-أسيتيللاكتيوسايد (E) في شرائح سيستانش ديزيرتيكولا وفقًا لطرق المعالجة المختلفة تشير الحروف المختلفة (أ – ه) إلى فروق ذات دلالة إحصائية بين المعالجات (اختبار دنكان، ص<0.05, n=3).

النشاط المضاد للأكسدة

يتم عرض خصائص مضادات الأكسدة للشرائح، كما تم تقييمها بواسطة ORAC وDPPH وFRAP، في الشكل 2. وكما هو متوقع، أظهرت قيم ORAC تباينًا واسعًا بين العينات، حيث تراوحت بين 13.34 ميكرومول TE/g FW في العينات الطازجة، إلى 108.62 ميكرومول TE/g FW عند 7 دقائق من التبخير. أثناء عملية التبخير، زادت قيمة ORAC 4-أضعافًا بين 1 و7 دقائق من التبخير. ولوحظت اتجاهات مماثلة في كل من فحوصات DPPH وFRAP، مما يدل على زيادات سريعة أثناء العلاج بالتبخير. على الرغم من أن العينات المعالجة بالبخار كانت تحتوي في البداية على قيم أقل لمضادات الأكسدة (عند دقيقة واحدة)، إلا أنها أظهرت احتفاظًا أفضل بكثير بقدرة مضادات الأكسدة أثناء العملية. في حالة السلق، لم يلاحظ أي فروق ذات دلالة إحصائية في خصائص مضادات الأكسدة مقارنة بالتجفيف المباشر بالفرن.

الشكل 2. المستويات (μmol TE/g FW) لقدرة امتصاص جذري الأكسجين (ORAC) (A)، 2، 2- ثنائي فينيل -1- نشاط كسح الجذور الحرة للبيكريل هيدرازيل (DPPH) (B)، و خاصية تقليل الحديديك المضادة للأكسدة (FRAP) (C) لشرائح Cistanche deserticola وفقًا لطرق المعالجة المختلفة تشير الحروف المختلفة (a – f) إلى فروق ذات دلالة إحصائية بين المعالجات (اختبار Duncan، p<0.05, n=3).

لم يتم الإبلاغ سابقًا عن نشاط مضادات الأكسدة ORAC في السيقان الخام أو شرائح C. deserticola. ومع ذلك، تم قياس مستخلصات الإيثانول من السيقان الخام لـ C. deserticola في فحوصات DPPH و FRAP، 28) مما يدل على نشاط مضاد للأكسدة مرتفع، أقل قليلاً من 2(3) -t-butyl-4-hydroxyanisole (BHA) و أعلى من BHT. علاوة على ذلك، أظهرت جليكوسيدات فينيليثانويد المعزولة من C. deserticola أنشطة قوية في التخلص من DPPH، أقل قليلاً من حمض الأسكوربيك 29) وأعلى من -tocopherol.2) يمكن أن تكون C. deserticola مصدرًا محتملاً لمضادات الأكسدة الطبيعية، مثل خصائص مضادات الأكسدة للمركبات النقية المعزولة. من C. deserticola كانت أعلى من تلك الموجودة في بعض مضادات الأكسدة الاصطناعية. كما هو مبين في الجدول 2، أظهرت BHT بشكل ملحوظ (ص<0.05) higher antioxidant properties than C. deserticola slices steamed for 7 min. Therefore, there is still a big gap between C. deserticola slices and synthetic antioxidants of equal quality.

يستخدم اختبار DPPH كلاً من آليات نقل ذرة الهيدروجين (HAT) ونقل الإلكترون الفردي (SET)، في حين تتبع فحوصات ORAC وFRAP مبادئ تفاعلات HAT وSET، على التوالي.30) في هذه الدراسة، الاتجاهات العامة لقدرة مضادات الأكسدة التي تم تقييمها من خلال المقايسات الثلاثة كانت متشابهة جدا. وهكذا، أكدنا أن الشرائح المجففة من C. deserticola (المطهوة على البخار، والمجففة مباشرة بالفرن، والمسلوقة) كان لها تأثير ملحوظ (ع).<0.05) higher levels of antioxidant activity than fresh ones. Furthermore, steaming for 5 and 7 min significantly (p<0.05) enhanced levels of antioxidant activity compared with direct oven drying and blanching. Overall, our results showed that steaming fresh-cut C. deserticola slices was effective in preserving phenylethanoid glycoside levels and antioxidant activity.

السكريات القابلة للذوبان والسكريات ومستخلصات الإيثانول القابلة للذوبان

As shown in Fig. 3, levels of soluble sugars and polysaccharides exhibited the following descending order: fresh>directly oven-dried>steamed>متبيض. تحتوي الشرائح المبيضة على مستويات منخفضة جدًا من السكريات القابلة للذوبان والسكريات ومستخلص الإيثانول المخفف القابل للذوبان.يبدو جيدًا مع فقدان الوزن المرتفع. العينات الطازجة كان لها تأثير معنوي (p<0.05) higher content of soluble sugars (62.89 g/kg FW) and polysaccharides (17.36 g/kg FW) than the other samples, suggesting that heat treatment (oven drying, steaming, blanching) on fresh-cut samples would reduce the extraction of soluble sugars and polysaccharides. Heat treatment inhibited the hydrolysis of phenylethanoid glycosides to release the glucose, rhamnose, and so on. Moreover, heat treatment, used as an abiotic stress factors on fresh slices, gave rise to the synthesis of several phenylpropanoid compounds including phenylethanoid glycosides.27) Particularly, sugars contained in the slices were dissolved in the hot water to different extents by steaming or blanching. Thus, it is not surprising to see that the content of soluble sugars decreased by 23.88% in steaming and by 60.82% in blanching, while the content of polysaccharides decreased by 41.33% in steaming and by 53.83% in blanching, compared with fresh slices. It has been reported that the steaming process can increase reducing sugars and acidic polysaccharides in Ginseng Radix et Rhizoma,18) and mono sugars, including galactose and glucose, in Rehmanniae Radix.17) However, the whole dried crude drugs studied in the above-mentioned literature were quite different from the fresh-cut slices used in the present study.

الشكل 3. تركيز (جم / كجم FW) من السكريات القابلة للذوبان (A) والسكريات (B) ومستخلصات الإيثانول المخففة (C) لشرائح Cistanche deserticola وفقًا لطرق المعالجة المختلفة تشير الحروف المختلفة (a – e) إحصائيًا فروق ذات دلالة إحصائية بين المعالجات (اختبار دنكان، ص<0.05, n=3).

تحتوي الشرائح المجففة بالفرن مباشرة على أعلى محتوى من المستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول (89.26 جم/كجم مهاجم)، في حين أن الشرائح المقشرة تحتوي على أقل محتوى (47.60 جم/كجم مهاجم). على الرغم من أن جميع الشرائح المعالجة من C. deserticola استوفت معايير دستور الأدوية الصيني (طبعة 2015) لتكون مؤهلة على أنها Cistanches Herba، إلا أن الشرائح المقشرة ستجلب فوائد صحية أقل من العينات المجففة بالفرن مباشرة بسبب الخسارة الشديدة في الإيثانول المخفف القابل للذوبان. مقتطفات. فيما يتعلق بعملية التبخير، كان اتجاه السكريات القابلة للذوبان مشابهًا جدًا للاتجاه الملحوظ في المستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول، حيث انخفض تدريجيًا مع عدم وجود تغييرات ملحوظة من 3 إلى 7 دقائق. يتقلب تركيز السكريات مع زيادة طفيفة خلال فترة التبخير بأكملها. ومن الجدير بالذكر أن التبخير لمدة 7 دقائق أظهر الحفاظ الجيد على السكريات ولكن فقدانًا كبيرًا للسكريات القابلة للذوبان، في حين أظهر التبخير لمدة 5 دقائق عكسًا، مقارنة بالتجفيف المباشر بالفرن.

خاتمة

لقد أبلغنا عن تأثير التبخير على المركبات النشطة بيولوجيًا ونشاط مضادات الأكسدة في قطع C. deserticola الطازجة لأول مرة، وقدمنا ​​معلومات مهمة لتطوير عمليات فعالة لمعالجة ما بعد الحصاد لسيقان C. deserticola. وأظهرت الشرائح الطازجة أسوأ كفاءة لاستخلاص جليكوسيدات الفينيليثانويد والمركبات المضادة للأكسدة، مما يكشف أن هذه المواد كانت عرضة للتحلل الأنزيمي. في المقابل، كانت العينات المطبوخة على البخار تحتوي على أعلى مستويات جليكوسيدات الفينيليثانويد والأنشطة المضادة للأكسدة. على الرغم من أن السلق عزز بشكل طفيف محتوى الأكتيوسيد والإيزوكتيوسايد و2′-أسيتيللاكتيوسيد مقارنة بالتجفيف المباشر بالفرن، إلا أن قيم الوزن والسكريات القابلة للذوبان والسكريات والمستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول انخفضت جميعها بشكل كبير. بالنسبة لعملية التبخير، زادت مستويات جليكوسيدات الفينيليثانويد والسكريات بشكل طفيف مع مرور الوقت. تبخير لمدة 5 و 7 دقائق بشكل ملحوظ (ص<0.05) enhanced total levels of the five phenylethanoid glycosides than directly oven drying. However, the longer the steaming process, the greater the decrease in weight, soluble sugars, and dilute ethanol-soluble extracts. No significant decrease in soluble sugars was observed when slices were steamed from 1 to 5 min compared with directly oven-dried samples. The steaming time had a consistent effect on the antioxidant properties, with a significant increase evaluated by the DPPH, ORAC, and FRAP assays. It was concluded that C. deserticola slices can be successfully treated with 5 to 7 min of steaming to improve the phenylethanoid glycoside levels and antioxidant activity while preserving the amounts of soluble sالسكريات والسكريات والمستخلصات المخففة القابلة للذوبان في الإيثانول.

سيستانش توبولوسا مضاد للإرهاق ومضاد للأكسدة PHGS75% ECH 30% ACT 12%