الإدارة في الجسم الحي لاتحادات بكتيريا الأمعاء تكرر أنماط الأيض لليوروليثين A وB في نموذج الفئران غير المنتج لليوروليثين Ⅰ

على مدى عقود من الزمن، ارتبط استهلاك الإيلاجيتانين (ETs) وحمض الإيلاجيك (EA) بالعديد من التأثيرات البيولوجية، بما في ذلك مضادات الأكسدة، ومضادات السرطان، ومضادات الالتهاب، والبكتيريا، وأنشطة النسخ المضادة لفيروس نقص المناعة البشرية. فقيرة جدًا. وجدت الدراسات البشرية السابقة أن إفراز البول لـ EA و EA-O-glucuronide أقل من 1٪ من المدخول. 2،3 ومع ذلك، في حين أن امتصاص ET و EA منخفض، يتم استقلابهما بشكل أكبر بواسطة الكائنات الحية الدقيقة القولونية إلى يوروليثينات. (Uros)، المسؤولة، جزئيًا على الأقل، عن التأثيرات المفيدة للأطعمة الغنية بـ ET و (أو) EA.1،4

انقر لملين

أولاً، يتم إطلاق EA من خلال التحلل المائي لروابط إستر ET بواسطة الإنزيم المعروف باسم ellagitannase.5 EA يخضع لمزيد من التحلل، مما ينتج 6H-dibenzo[b,d]pyran-6-أحد مشتقاته يسمى Uros. تبدأ سلسلة التفاعلات هذه بانقسام حلقة اللاكتون بواسطة إنزيم اللاكتوناز، مما يؤدي إلى تكوين حمض اللوتيك، والذي يتم بعد ذلك نزع كربوكسيلته إلى خماسي هيدروكسي-أورو (Uro-M5). وتحوله عملية نزع الهيدروكسيل المتتالية إلى رباعي هيدروكسي-أوروس (Uro-D، وUro-E، و Uro-M6) وtrihydroxy-Uros (Uro-C، وUroM7، وUro-G)، لينتج أخيرًا ثنائي هيدروكسي-Uros (Uro-A andisoUro-A) ومونوهيدروكسي-Uro (Uro-B)، ويتم اكتشاف الأخير بشكل عام عندما يتم إنتاج isoUro-A أيضًا.1

يشير التباين الواسع في الملامح الأيضية لليورو المكتشفة لدى البشر بعد تناول الأطعمة الغنية بـ ET إلى وجود اختلافات بين الأفراد في الكائنات الحية الدقيقة القولونية المسؤولة عن تدهور ET.6-8 يمكن أن تفسر التفاعلات العديدة المحتملة بين البكتيريا القولونية والكائن المضيف المصائر الأيضية المختلفة للأنظمة الغذائية (بولي). ) الفينولات.6،9 هذا التفاعل ثنائي الاتجاه بين الكائنات الحية الدقيقة في الأمعاء والفينولات (البولي) دفع المجتمع العلمي إلى تجميع السكان بناءً على تواجدهم.النمط الظاهري الأيضي (النوع المعدني) لشرح الاختلافات في تأثيرات البوليفينول. 10، 11 وبشكل أكثر تحديدًا، وفقًا لعملية التمثيل الغذائي ET و EA، يمكن تقسيم الأفراد إلى أنماط Urometabotypes (UMs) المرتبطة بتكوين ووظيفة ميكروبيوم الأمعاء. 7،8،12

تم وصف ثلاث UM-A بشرية (UM-A، وUM-B، وUM-0) مرتبطة بثلاثة ملفات تعريف مختلفة لإنتاج Uro في المجموعات السكانية الغربية والشرقية.13-15 في هذا الصدد، أفراد النمط الأيضي A (UM-A) إنتاج العديد من Uros الوسيطة ولكن فقط يوروليثين A (Uro-A)، وهو Uro الرئيسي الممتص في UM، في نهاية المسار التقويضي الميكروبي. ينتج أفراد النمط الفوقي B (UM-B) بعض Uros الوسيطة وثلاثة Uros نهائية، أي، يوروليثين B (Uro-B)، يوروليثين A (IsoUro-A)، وUro-A، وهي Uros الرئيسية الممتصة في UM-B. لذلك، يمكن للأوروسات الوسيطة أن تعمل بشكل أساسي في الأمعاء، بينما يمكن أن يكون للأوروسات النهائية تأثيرات موضعية وجهازية.6 في المقابل، لا يستطيع الأفراد الذين لديهم النوع المعدني 0 (UM-0) إنتاج هذه الأوروسات النهائية (فقط تم اكتشاف سلائف Urolithin-M5 حتى الآن، والتي لا يتم امتصاصها في القناة الهضمية).

وقد لوحظت اختلافات في الملامح البولية بين UMs وعلى طول الأمعاء الغليظة، مما يدل على إنتاج Uro السائد في منطقة القولون البعيد. سكان الولايات المتحدة.13-15 تم التعرف على الأجناس البكتيرية Gordonibacter وElagibacter على أنها قادرة على استقلاب EA إلى بعض Uros.20-23 ومع ذلك، فقد وجد أن بعض المواد الوسيطة (على سبيل المثال، Uro-D، Uro-E، Uro-E) لا يتم إنتاج M7 وUro-G) والأوروس النهائي (Uro-A وUro-B) في مزارع نقية لهذه البكتيريا، مما يعني الحاجة إلى بكتيريا أخرى لإكمال مجموعة Uros التي تشكل كلاً من UM-A وUM-B . في الآونة الأخيرة، تم التعرف على اتحادات البكتيريا المعوية المشاركة في استقلاب EA لإنتاج أنماط الأيض المنتجة للبول (UM-A وUM-B) في المختبر.

أنتجت الاتحادات البكتيرية التي تحتوي على Gordonibacter plusEnterocloster genera وElagibacter plus Enterocloster في المختبر البوليثينات المرتبطة بـ UM-A وUM-B، على التوالي.25 ومع ذلك، فإن قدرة هذه الاتحادات البكتيرية على تكرار ملامح Uro البشرية المرتبطة بـ UM-A وUM-B في الجسم الحي لا يزال مجهولا. علاوة على ذلك، فإن سلامة استهلاك هذه البكتيريا المنتجة لليورو كبروبيوتيك جديد لا تزال غير مؤكدة، حيث لم يتم اختبارها من قبل على الحيوانات أو البشر. في هذه الدراسة، تم تقييم الاتحادات البكتيرية المذكورة أعلاه لقدرتها على استعمار أمعاء الفئران غير المنتجة لليورو (UM-0-like) وتحويلها إلى فئران منتجة للبول تحاكي UM-A وUM-B، على التوالي. كما تم تقييم سلامة هذه الاتحادات البكتيرية. علاوة على ذلك، تم تطوير إجراءات جديدة تعتمد على تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الحقيقي (qPCR) لكشف وقياس كمية بكتيريا Ellagibacter وEnterocloster في عينات البراز.

المواد والأساليب

الكيميائية والكواشف

تم تصنيع Uros وتنقيته كيميائيًا بواسطة VillapharmaResearch SL (Parque Tecnológico de Fuente Álamo، Murcia، Spain). تم شراء EA من Sigma-Aldrich (St Louis، MO، USA). تم الحصول على محلول ملحي الفوسفات (PBS) من شركة FisherScientific (الولايات المتحدة الأمريكية)، في حين تم الحصول على الميثانول والإيثانول وحمض الفورميك من Panreac Química (برشلونة، إسبانيا). تم شراء مذيبات درجة قياس الطيف اللوني السائل (LC-MS) من JT Baker (ديفينتر، هولندا). تم استخدام ماء ميليبور فائق النقاء (بيدفورد، ماساتشوستس، الولايات المتحدة الأمريكية) طوال فترة الدراسة. وكانت جميع المواد الكيميائية والكواشف من الدرجة التحليلية.

تحضير الاتحادات البكتيرية

Gordonibacter urolithinfaciens DSM 27213T، Ellagibacter isourolithinifaciens DSM 104140T، وEnterocloster انسحب CEBASS4A9، جميعها معزولة ومحددة في مختبرنا (CEBAS-CSIC، إسبانيا)، تمت زراعتها لاهوائيًا في 5 مل ويلكنز - أنابيب تشالغرين اللاهوائية المتوسطة (WAM، أوكسويد) عند 37 درجة لمدة 48 ساعة في الغرفة اللاهوائية Concept 400 (BakerRuskin Technologies Ltd، Bridgend، South Wales، UK) ومعلقة في PBS مكملة بـ 10٪ جلسرين و0.05٪ L- سيستين هيدروكلوريد (PanReac) كيميكا، برشلونة، إسبانيا). بعد الحضانة اللاهوائية، تم إعداد الاتحادات. 24،25 باختصار، "الاتحاد البكتيري A" يحتوي على G. سلالات urolithinfaciens وE. Bolteae؛ يحتوي "الاتحاد البكتيري B" على ثقافات E. isourolithinifaciens وE. Bolteae؛ و"كوكتيل التحكم" يحتوي على PBS معقم يحتوي على 10% جلسرين و0.05% L- سيستين هيدروكلوريد. قبل الإعطاء، تم توزيع جميع الكوكتيلات في قسامات سعة 3.5 مل وحفظها عند -80 درجة.

الحيوانات والوجبات الغذائية والتصميم التجريبي

تمت الموافقة على البروتوكول التجريبي (المرجع 624/2020) من قبل الحكومة المحلية، ولجنة الأخلاقيات الحيوية التابعة لمجلس البحوث الوطني الإسباني (مدريد، إسبانيا)، ولجنة أخلاقيات التجارب على الحيوانات من جامعة مورسيا (إسبانيا). اتبعت التجارب توصيات الاتحاد الأوروبي بشأن التجارب على الحيوانات (التوجيه رقم 2010/63/EU الصادر عن البرلمان الأوروبي والمجلس بشأن حماية الحيوانات المستخدمة للأغراض العلمية). تم الحصول على فئران ويستار (ن=18؛ 9 إناث و9 ذكور) تزن 240 ± 31 جم من إنفيغو (برشلونة، إسبانيا). تم اختيار نموذج الفئران هذا بناءً على عدم قدرته على إنتاج أوروس التي لوحظت في دراساتنا الأولية التي تم فيها اختبار عينات البراز من نماذج الفئران المختلفة. تم تشكيل ثلاث مجموعات (أ، ب، ج) من خلال تعيين 6 حيوانات بشكل عشوائي لكل منها (3 إناث و 3 ذكور فئران). ) لكل مجموعة (الشكل 1).

تم وضع كل مجموعة فئران في قفصين مختلفين، مقسمين حسب الجنس، في غرفة ذات بيئة يمكن التحكم في درجة حرارتها (22 ± 2 درجة) مع رطوبة نسبية 55 ± 10٪ ودورة مظلمة فاتحة (12 ساعة). تلقت الفئران نظامًا غذائيًا قياسيًا (تيكلاد، برشلونة، إسبانيا) يحتوي على (%/100 جرام من الوزن الطازج) 14.3% بروتينات (وجبة جلوتين الذرة)، 48% كربوهيدرات (وسائط القمح، القمح المطحون، الذرة المطحونة) و4% دهون (زيت فول الصويا). ) ، 2.9 كيلو كالوري g−1 كثافة طاقة، و4.1% ألياف خام، مكملة بمسحوق EA أكبر من أو يساوي 95% نقاء (3.6 مجم لكل 100 جرام من الدجاج). تم خلط EA بشكل متجانس مع التغذية القياسية المطحونة، ثم إعادة تكويرها وتجفيفها بالتجميد. تم تخزين النظام الغذائي المخصب EA بعيدا عن الرطوبة والضوء. جرعة EA الممنوحة لكانت الفئران في النظام الغذائي تقريبًا 0.72 مجم لكل فأر يوميًا (EA1 × حمية)، جرعة بشرية مكافئة تبلغ 41 مجم يوميًا −1.26 تم تغذية جميع المجموعات بنظام EA 1 × ومياه الصنبور الإعلانية طوال فترة التجربة ( 5 أسابيع). نظرًا لأن الـ EA المكتشف في عينات البراز كان منخفضًا خلال الأسبوع الأول، تمت إضافة بعض الـ EA الإضافي في الأيام التالية. في الأسبوع 3، تم إعطاء جرعة إضافية قدرها 1.5 ملغم لكل فأر يوميًا مذابة في الماء عن طريق التغذية بالتزقيم للحيوانات (إجمالي=EA 3× النظام الغذائي)، والذي تم إعطاؤه لمدة أسبوع واحد فقط. أخيرًا، في الأسبوع 4، تمت إضافة ≈5 جم من الجوز لكل فأر يوميًا (مصدر EA آخر) إلى النظام الغذائي EA 1 × وتم الحفاظ عليه حتى نهاية الدراسة لتقييم تأثير EA المحتوي على مصفوفة الطعام على قدرة البكتيريا. لإنتاج أوروس. تم قياس الوزن والطعام وكمية الماء يوميًا. وتم إعطاء اتحادات بكتيريا الأمعاء عن طريق الفم عن طريق التزقيم. تلقت المجموعة أ 500 ميكرولتر من الكوكتيل البكتيري A، وتلقت المجموعة B 500 ميكرولتر من الكوكتيل البكتيري B، وتلقت المجموعة C (التحكم) 500 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني. تم إجراء التزقيم الفموي كل يومين خلال الأسبوعين الأولين وكل يوم خلال الأسبوعين التاليين. في الأسبوع الماضي (الأيام 28 إلى 32)، واصلت الحيوانات اتباع نفس النظام الغذائي المكمل بالجوز ولكن بدون إعطاء البكتيريا عن طريق الفم. وفي نهاية الدراسة، تم التضحية بالحيوانات باستخدام غرفة ثاني أكسيد الكربون.

إجراءات أخذ العينات

تم جمع عينات البراز أثناء الدراسة لتحليل البول بواسطة UPLC-ESI-QTOF-MS/MS والميكروبات المعوية بواسطة تسلسل جين الرنا الريباسي 16S وqPCR. تم استخراج الدم في نقاط زمنية مختلفة (خط الأساس، يوم 28، ونهاية الدراسة) لتحليلات الدم والكيمياء الحيوية في الدم. تم الحصول على عينات الدم من الوريد الذيل (≈500 ميكرولتر) وتم جمعها في أنابيب تحتوي على الهيبارين عند خط الأساس واليومين 28 و 32 (الشكل 1). تم إجراء فصل البلازما على الفور عن طريق الطرد المركزي عند 3000 جم لمدة 10 دقائق عند 4 درجات وتجميدها عند - 80 درجة حتى مزيد من التحديد للمتغيرات السيروبيوكيمائية. تم جمع الكبد والكلى والطحال ووزنها وفحصها للكشف عن أي اختلافات شكلية عند التضحية.

تصميم وتحسين الاشعال والتحقيق في التقدير الكمي لـ Ellagibacter وEnterocloster بواسطة qPCR

تم الحصول على تسلسل جينات الرنا الريباسي 16S لـ Ellagibacter isourolithinifaciens DSM 104140T وE. تم الحصول على CEBAS S4A9 من قاعدة بيانات GenBank (قاعدة بيانات EMBL). تمت محاذاة التسلسلات مع البكتيريا القريبة من الناحية التطورية باستخدام برنامج تحليل الوراثة التطورية الجزيئية (MEGA 11) وتم فحصها بحثًا عن مناطق التسلسلات المحفوظة والمتغيرة لتصميم الاشعال والتحقيق لاكتشاف وقياس Ellagibacter و Enterocloster (الجدول 1). تم تصميم مسبار التمهيدي والتحقق من صحته باستخدام أدوات Primer Questand Oligo Analyzer، على التوالي (Integrated DNATechnologies, Inc., Belgium). تم تصنيف مسبار TaqMan عند الأطراف 5 ′ و3 ′ بمجموعة 6- كربوكسي-فلوريسئين (6FAM) وجهاز تبريد بلاك بيري (BBQ)، على التوالي. تم إجراء qPCR باستخدام نظام الكشف عن التسلسل ABI 7500. وكانت التركيزات النهائية لكل بادئ ومسبار 300 و375 نانو مولار لبكتيريا Ellagibacter و200 و500 نانو مولار لـEnterocloster. تم تنفيذ بروتوكول qPCR التقليدي لتضخيم الحمض النووي لبكتيريا Ellagibacter وإنتروكلستر، على التوالي. كان ملف تعريف التضخيم لتضخيم Ellagibacter عبارة عن دورة واحدة عند 95 درجة لمدة 5 دقائق، تليها 45 دورة عند 95 درجة لمدة 15 ثانية، و50 درجة لمدة 40 ثانية، و72 درجة لمدة 31 ثانية. وأخيرًا، تمت إضافة دورة واحدة عند 72 درجة لمدة 5 دقائق. . كان ملف تعريف التضخيم لتضخيم الأمعاء هو دورة واحدة عند 95 درجة لمدة 5 دقائق، تليها 40 دورة من 95 درجة لمدة 15 ثانية، و65 درجة لمدة 40 ثانية، و72 درجة لمدة 31 ثانية. وأخيرًا، تمت إضافة دورة واحدة عند 72 درجة لمدة 5 دقائق.

استخراج الحمض النووي البراز والتحليلات الميكروبية للأمعاء

تم إجراء استخراج الحمض النووي من عينات البراز باستخدام مجموعة تنقية الحمض النووي للأنسجة NucleoSpin® (Macherey-Nagel، ألمانيا)، وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة مع بعض التعديلات. تم قياس كمية الحمض النووي بواسطة قياس الفلور (Qubit3.0 – ThermoFisher Scientific™، المملكة المتحدة)، وتم قياس النقاء من نسبة الامتصاص عند طول موجي 260/280 نانومتر (A260/A280) (NanoDrop-ThermoFisher Scientific™، المملكة المتحدة ). تم تحديد تكوين الكائنات الحية الدقيقة في القناة الهضمية من خلال تسلسل المناطق المتغيرة V3 و V4 لجين الرنا الريباسي 16S بعد بروتوكولات Illumina (Illumina Inc.، San Diego، CA، USA) بطول قراءة يبلغ 2 × 300 نقطة أساس في نهاية التشغيل (MiSeqReagent Kit v3) ، شركة إلومينا). تم إجراء تسلسل Metagenomic على منصة MiSeq-Illumina (خدمة تسلسل FISABIO، إسبانيا). تم إجراء معالجة البيانات، وإزالة التسلسل الخيميري، ومحاذاة التسلسل، وتجميع تسلسل الجينات 16S rRNA كما هو موضح في مكان آخر للحصول على التصنيف التصنيفي.8،27 تم تحقيق تضخيم DNA Gordonibacter في نظام ABI 7500 qPCR كما هو موضح سابقًا. تم استخدام الاشعال والمسابير المحددة المصممة في هذه الدراسة بعد بروتوكول qPCR الموصوف أعلاه. واستخدمت المنحنيات القياسية للحمض النووي الجينومي لبكتيريا Gordonibacter وEnterocloster وEllagibacter في القياس الكمي. تم تحليل جميع عينات البراز في ثلاث نسخ.

استخلاص وكشف وقياس كمية اليوروليثين في عينات البراز

تم استخراج عينات البراز ({{0}}.2–0.5 جم) بنسبة 1: 10، بمحلول MeOH/H2O (8{{ 20}}/20)، محمض بـ 0.1% حمض الهيدروكلوريك، ومتجانس عن طريق الدوامة لمدة دقيقتين والرج عند 1500 دورة في الدقيقة عند درجة حرارة الغرفة لمدة 10 دقائق في سخان كتلة. تم الطرد المركزي للمعلق عند درجة 14 000 جم عند 4 درجة لمدة 10 دقائق، وتم ترشيح المادة الطافية من خلال مرشح غشاء PVDF بقطر 0.22 ميكرومتر (Millipore Corp., Bedford, MA) وتم تخفيفه 3 × باستخدام MeOH (0.1% حمض الفورميك). ) قبل الحقن في نظام UPLC-ESI-QTOF-MS. تم استخدام نظام UPLC (Agilent 1290Infinity) إلى جانب نظام LC/MS لزمن الطيران الرباعي (QTOF) (6550 Accurate-Mass) (Agilent Technologies، Waldbronn، ألمانيا) لتحليل المستقلبات البرازية باستخدام طريقة الشطف المتدرج كما هو موضح سابقًا .29،30 باختصار، تم إجراء الفصل في عمود الطور العكسي aPoroshell 120 EC-C18، باستخدام الماء والأسيتونيتريل، وكلاهما محمض بحمض الفورميك بنسبة 0.1%، كأطوار متحركة. كان معدل التدفق 0.4 مل دقيقة، وكان حجم الحقن 5 ميكرولتر. تم استخدام برنامج التحليل النوعي MassHunter (الإصدار B.10، Agilent Technologies، Waldbronn، ألمانيا) لمعالجة البيانات. تم التعرف على جميع المستقلبات عن طريق المقارنة المباشرة مع المعايير وتأكيدها من خلال كتلتها الجزيئية. تم الحصول على منحنيات المعايرة لـ EA وUros المختلفة بخطية جيدة (R2 > 0.99).

أمراض الدم والكيمياء السريرية

تم تحديد المتغيرات الدموية في الدم المصاب بالهيبارين باستخدام محلل دم آلي مع برنامج محدد لعينات دم الفئران (AVDIA 120، Siemens، Munich، Germany). وكانت المتغيرات التي تم تحليلها هي متوسط ​​حجم الكريات (MCV)، متوسط ​​الهيموجلوبين الكري (MCH)، متوسط ​​تركيز الهيموجلوبين الكري (MCHC)، توزيع كريات الدم الحمراء (RDW)، متوسط ​​حجم الصفائح الدموية (MPV)، الصفائح الدموية (PCT)، عرض توزيع الصفائح الدموية (PDW). متوسط ​​مكون الصفائح الدموية (MPC)، متوسط ​​كتلة الصفائح الدموية (MPM)، عدد الصفائح الدموية (PLT)، محتوى الهيموجلوبين الشبكي (CHr)، ومتوسط ​​حجم كريات الخلايا الشبكية (MCVr). تم تحليل المتغيرات الكيميائية الحيوية للبلازما والكالسيوم (Ca) والفوسفور (P) باستخدام محلل الكيمياء وعلم السموم Olympus AU400 (Beckman Coulter، California، USA). كانت المتغيرات البيوكيميائية هي البروتينات الكلية (PROT)، الألبومين (ALBU)، الجلوبيولين (GLOB)، الكرياتينين (CREA)، الجلوكوز (GLUC)، الكولسترول (CHOL)، الدهون الثلاثية (TRIGL)، الفوسفاتيز القلوي (ALP)، ناقلة الببتيداز جاما جلوتاميل ( GGT)، ناقلة أمين الأسبارتات (AST)، ناقلة أمين الألانين (ALT). أخيرًا، تم تحليل مستويات هرمون الغدة الدرقية (T4) باستخدام نظام المقايسة المناعية IMMULITE® 1000 (Siemens).

تحليل احصائي

يتم التعبير عن البيانات على أنها الانحراف المعياري المتوسط ​​(SD). تم إجراء التحليل الإحصائي باستخدام الإصدار 27 من برنامج SPSS.0 (SPSS Inc.، Chicago، IL، USA)، والاختلافات مع p < 0.05 اعتبرت ذات دلالة إحصائية. تم تقييم الحالة الطبيعية للبيانات باستخدام اختبار شابيرو ويلك. تم إجراء مقارنات بين مجموعات العلاج المختلفة باستخدام تحليل التباين المقاس المتكرر (RM ANOVA) مع اختبار Tukey's أو Dunnett's T3 اللاحق، اعتمادًا على ما إذا كانت البيانات تتبع توزيعًا طبيعيًا أو غير طبيعي، على التوالي. تم استكشاف الاختلافات بين الذكور والإناث باستخدام اختبار الطالب المقترن، أو اختبار رتبة موقعة ويلكوكسون عندما تكون البيانات موزعة بشكل طبيعي أو غير طبيعي، على التوالي. تم استخدام تأثير تحليل التمييز الخطي لمربع كاي (LEfSe) للكشف عن السمات البكتيرية التفاضلية بين المجموعات. تم استخدام ارتباط بيرسون لتحليل الارتباطات المحتملة بين المتغيرات في البيانات الموزعة طبيعيا، في حين تم تطبيق ارتباط سبيرمان في البيانات غير الموزعة طبيعيا. تم إجراء مخططات البيانات باستخدام Sigma Plot 14.5 (Systat Software، San Jose، CA، USA).

الطب العشبي الطبيعي لتخفيف الإمساك-Cistanche

السيستانش (الاسم العلمي: Cistanche) هو جنس من النباتات الطفيلية التي تنتمي إلى فصيلة Orobanchaceae. تشتهر هذه النباتات بخصائصها الطبية وقد تم استخدامها في الطب الصيني التقليدي لعدة قرون. توجد أنواع Cistanche في الغالب في المناطق القاحلة والصحراوية في الصين ومنغوليا وأجزاء أخرى من آسيا الوسطى. تتميز نباتات Cistanche بسيقانها اللحمية الصفراء وتحظى بتقدير كبير لفوائدها الصحية المحتملة. في الطب الصيني التقليدي، يعتقد أن Cistanche له خصائص منشطة ويستخدم عادة لتغذية الكلى وتعزيز الحيوية ودعم الوظيفة الجنسية. كما أنه يستخدم لمعالجة مشاكل الشيخوخة والتعب والصحة العامة. في حين أن Cistanche له تاريخ طويل من الاستخدام في الطب التقليدي، فإن البحث العلمي حول فعاليته وسلامته مستمر ومحدود. ومع ذلك، فهو يحتوي على العديد من المركبات النشطة بيولوجيًا مثل جليكوسيدات فينيلثانويد، والإيريدويدات، والقشور، والسكريات، والتي قد تساهم في آثاره الطبية.

ويسيستانشمسحوق سيستانش، أقراص سيستانش، كبسولات سيستانش،ويتم تطوير المنتجات الأخرى باستخدامصحراءcistancheكمواد أولية، ولكل منها تأثير جيد في تخفيف الإمساك. الآلية المحددة هي كما يلي: يُعتقد أن سيستانش له فوائد محتملة لتخفيف الإمساك بناءً على استخدامه التقليدي ومركبات معينة يحتوي عليها. في حين أن البحث العلمي على وجه التحديد حول تأثير Cistanche على الإمساك محدود، يُعتقد أن لديه آليات متعددة قد تساهم في قدرته على تخفيف الإمساك. تأثير ملين:سيستانشمنذ فترة طويلة يستخدم في الطب الصيني التقليدي كعلاج للإمساك. ويعتقد أن له تأثير ملين خفيف، والذي يمكن أن يساعد في تعزيز حركات الأمعاء والتسبب في الإمساك. يمكن أن يعزى هذا التأثير إلى المركبات المختلفة الموجودة في سيستانش، مثل جليكوسيدات الفينيليثانويد والسكريات. ترطيب الأمعاء: بناءً على الاستخدام التقليدي، يعتبر سيستانش ذو خصائص مرطبة، ويستهدف الأمعاء على وجه التحديد. قد يساعد تعزيز ترطيب وتليين الأمعاء على تليين الأدوات وتسهيل مرورها، وبالتالي تخفيف الإمساك. تأثير مضاد للالتهابات: قد يرتبط الإمساك أحيانًا بالتهاب في الجهاز الهضمي. يحتوي Cistanche على مركبات معينة، بما في ذلك جليكوسيدات الفينيليثانويد والقشور، والتي يعتقد أن لها خصائص مضادة للالتهابات. من خلال تقليل الالتهاب في الأمعاء، قد يساعد في تحسين انتظام حركة الأمعاء وتخفيف الإمساك.