دراسة مقارنة لتأثيرات الكركمين وجزيئاته النانوية على النمو والمناعة ومقاومة الإجهاد الحراري للبلطي النيلي (Oreochromis Niloticus)

قيمت هذه الدراسة آثار المكملات الغذائية مع الكركمين الحر أو النانوي على أداء النمو ، والحالة المناعية ، ومقاومة الإجهاد الحراري للبلطي النيلي (Oreochromis niloticus). تم تحضير سبعة أنظمة غذائية متساوية النيتروجين (28٪ بروتين) ومتساوية السعرات (445 كيلو كالوري / 1 0 0 جم DM). تم استكمال ستة أنظمة غذائية بثلاثة مستويات من الكركمين النانوي (50 (CN50) ، 100 (CN100) ، 200 (CN200) مجم / كجم من النظام الغذائي) أو الكركمين الحر (50 (C50) ، 100 (C100) ، 200 (C200) ) mg kg − 1 diet) ، وتم ترك حمية التحكم بدون مادة مضافة (CON). تم تغذية الأسماك (13.54 ± 0.32 جم) (متوسط ​​± SD) على العلائق التجريبية لمدة 65 يومًا.

بعد تجربة التغذية ، تعرضت الأسماك لضغط حراري حاد عن طريق رفع درجة حرارة الماء تدريجياً من 25 إلى 40 درجة خلال 3 ساعات. ثم تم تعريض السمكة إلى 40 درجة لمدة 4 ساعات. أظهرت النتائج تفوق النانو - الكركمين على شكله الحر في تعزيز أداء النمو ، مع أعلى النتائج التي تم الحصول عليها عند CN100 ، تليها CN200. فقط الإجهاد الحراري ، وليس الحميات التجريبية ، زاد من عدد الصفائح الدموية ، ومتوسط ​​حجم الجسم (MCV) ، ومتوسط ​​الهيموغلوبين العضلي (MCH) ، وعدد الكريات البيض ، وعدد العدلات ، بينما انخفضت الخلايا الليمفاوية.

هناك علاقة وثيقة بين مقاومة الإجهاد الحراري والمناعة. يمكن أن يسبب الإجهاد الحراري العديد من التحديات للجسم ، مثل ارتفاع درجة الحرارة وانخفاض درجة الحرارة والجوع ونقص الأكسجة. يمكن أن تؤدي هذه التحديات إلى تغييرات في البيئة داخل الخلايا وخارجها تؤدي إلى استجابة الجسم للضغط. بعد فترة طويلة من التكيف ، يمكن للجسم تطوير مقاومة أقوى للإجهاد الحراري. في الوقت نفسه ، يمكن أن يؤثر الإجهاد الحراري أيضًا على المناعة. بعد الإجهاد الحراري لفترات طويلة ، سوف يتضرر جهاز المناعة في الجسم إلى حد معين. تزيد الصدمة المناعية الناتجة عن الإجهاد الحراري من خطر الإصابة بالعدوى لدى المرضى وتقلل من وظيفة الخلايا المناعية. ومع ذلك ، يمكن أن يعزز الإجهاد الحراري المعتدل المناعة لأنه ينشط جهاز الشفاء الذاتي والجهاز المناعي في الجسم. لذلك ، يمكن أن يؤدي الإجهاد الحراري المعتدل إلى تقوية مقاومة الجسم ومناعته ، وتحسين القدرة على التكيف ومعدل بقاء الكائنات الحية في البيئات المعقدة. بالإضافة إلى علم الأحياء ، يجب علينا نحن البشر أيضًا الانتباه إلى تحسين المناعة. Cistanche له تأثير كبير على تحسين المناعة. Cistanche غني بمجموعة متنوعة من المواد المضادة للأكسدة ، مثل فيتامين C ، وفيتامين C ، والكاروتينات ، وما إلى ذلك ، يمكن لهذه المكونات أن تزيل الجذور الحرة ، وتقلل من الإجهاد التأكسدي وتحسن مقاومة الجهاز المناعي.

انقر فوق الملحق cistanche deserticola

أظهرت مجموعتي CN50 و CN 100 نشاطًا أقل لأنزيمات الكبد (ALT) و Aspartate aminotransferase (AST) ، بينما أعطى C200 أعلى نشاط لهذه الإنزيمات. تم الكشف عن أعلى مستويات الغلوبولين المناعي (IgM) في CN100 و CN200 و C100 و C200 ، تليها CN50. أظهرت مجموعة C200 مستويات أعلى من المكمل 3 والمكمل 4 (C3 و C4 على التوالي) من العلاجات الأخرى. أعطت مجموعات C50 و CON أقل قيم IgM و C3 و C4. كانت مستويات الكورتيزول أقل بشكل ملحوظ في مجموعات CN50 و CN100 مقارنة بالمجموعات الأخرى. بعد الإجهاد الحراري ، زادت ALT و AST و IgM و C3 و C4 والكورتيزول والجلوكوز. وبالتالي ، فإن النانو الكركمين أكثر فاعلية من شكله الحر في تعزيز مقاومة الإجهاد الحراري ، وتحفيز المناعة الفطرية ، وخفض مؤشرات الإجهاد ، وتعزيز أداء نمو البلطي النيلي بأفضل تركيز عند 100 مجم كجم.

يعتبر البلطي النيلي (Oreochromis niloticus) ثاني أكثر أنواع الأسماك التي يتم إنتاجها على مستوى العالم بعد المبروك. يُستزرع البلطي حاليًا في أكثر من 12 0 بلدًا حول العالم 2. انتعش إنتاج البلطي العالمي من أقل من 0.5 مليون طن متري في أوائل التسعينيات إلى 6.03 مليون طن متري في عام 2018 ، بمتوسط ​​معدل نمو سنوي بلغ 13.5 في المائة 2. ومع ذلك ، فإن الاستزراع المكثف للبلطي يجعله حساسًا لعوامل الإجهاد المختلفة ، مثل الإجهاد الحراري (HS) ، نتيجة رئيسية للاحتباس الحراري 3. على الرغم من أن البلطي النيلي يمكن أن يتحمل نطاقًا واسعًا من درجات الحرارة (نطاق درجة الحرارة المثلى هو 25-28 درجة) ، إلا أن درجات حرارة الماء فوق النطاق الأمثل قد تثبط جهاز المناعة وتضر باستجابته المضادة للأكسدة 4،5. يثبط التهاب الغدد العرقية المقيّح جهاز المناعة من خلال الاستجابات المناعية الخلطية التي تتم بوساطة الخلايا. على سبيل المثال ، تم العثور على HS لتقليل مستوى الغلوبولين المناعي (IgG و IgM) 7.

تتأثر أيضًا المؤشرات الأولية للاستجابة المناعية (خلايا الدم البيضاء وخلايا الدم الحمراء والهيموجلوبين والجلوكوز) خلال HS8. أظهر الدنيس ذو الخطم الحاد (Megalobrama amblycephala Yih) زيادة في الليزوزيم وأنشطة التكميلية البديلة والبروتين الكلي ومستويات Ig M بعد التعرض للإجهاد الحراري لمدة 6 ساعات ، وبالتالي انخفضت هذه المعلمات. وبالتالي ، يمكن أن يؤثر الإجهاد الحراري سلبًا على صحة الأسماك ، مما يؤدي إلى تراجع النمو وارتفاع معدل نفوق الأسماك. أصبح تعزيز آليات الدفاع للأسماك من خلال إعطاء المنشطات المناعية في النظام الغذائي أولوية للتحكم في عوامل الإجهاد في تربية الأحياء المائية. من بين المنشطات المناعية المختلفة ، تحتوي الأعشاب الطبية على مكونات كيميائية تعزز المناعة عبر مسارات محددة أو غير محددة ، مما يجعل الحيوان أكثر مقاومة للضغوط الخارجية.

الكركمين هو مكون عشبي برتقالي-أصفر ، كاره للماء ، حيويًا ومركب بوليفينوليك مستخرج من الكركم (كركم لونجا). المكونات النشطة الرئيسية للكركمين هي دييرولويل ميثان (77 في المائة) ، ديميثوكسيكوركومين (17 في المائة) ، وثنائي ميثوكسيكوركومين (6 في المائة) 13. من المثير للدهشة أن الكركمين يمتلك خصائص مضادة للفيروسات ، ومضادة للفطريات ، ومضادة للالتهابات ، ومضادة للأكسدة ، ومضادة للسرطان. وبالتالي ، يمكن أن يحفز الكركمين جهاز المناعة الفطري في fsh18،19. أظهرت العديد من الدراسات الآثار المفيدة للكركمين كمنشط مناعي محتمل ومرشح مضاد للأكسدة في الأنظمة الغذائية لأنواع الأسماك المختلفة 20-26. ومع ذلك ، فإن ضعف الذوبان في الماء والتوافر البيولوجي يحدان من التطبيقات العملية للكركمين.

في الآونة الأخيرة ، تم تطوير نانو الكركمين لتجنب خصائص توصيل الكركمين السيئة وتعزيز آثاره العلاجية. على عكس الكركمين ، الذي يشكل كتلًا بسبب انخفاض قابليته للذوبان في الماء ، يذوب نانو الكركمين تمامًا في وسط مائي ولا يشكل أي كتل بسبب وجود إمكانات زيتا. بالمقارنة مع الكركمين الخالي ، أظهر الكركمين النانوي نفاذية أعلى ، ودورة أطول ، وتوافرًا حيويًا جهازيًا أفضل في البلازما والأنسجة.

وفقًا لجيانغ وزملاؤه .31 فإن الكركمين المحمّل في الغلاف النانوي حفز أنشطته المضادة للأكسدة والمناعة. قد ترتبط هذه التأثيرات بتقليل الجسيمات إلى مقياس نانوي متري ، مما يضمن إطلاقًا مستدامًا للمواد الفعالة ويزيد من التوافر البيولوجي ومستويات التشتت الجزيئي. على الرغم من عدم إجراء دراسات لمقارنة تأثير الكركمين النانوي بتأثير شكله الحر على fsh ، فقد تم اختباره مؤخرًا على طيور مثل السمان الياباني (Coturnix japonica). وجد مارشيوري وزملاؤه 32 أن الكركمين المغلف بالنانو يحسن أداء السمان الياباني (Coturnix japonica) بجرعة أقل بثلاثة أضعاف من الكركمين الحر ، مما يشير إلى قدرة المواد النانوية على تحسين الإنتاج الحيواني.

حتى الآن ، لم يتم اختبار مادة الكركمين النانوية في وجبات الأسماك. لذلك ، هدفت هذه الدراسة إلى تقييم آثار المكملات الغذائية مع الكركمين الحر أو النانوي على تحسين أداء النمو ، وحالة المناعة ، ومقاومة الإجهاد الحراري في البلطي النيلي.

المواد والأساليب الغذائية التجريبية.

التركيب والتحليل الكيميائي للوجبات التجريبية موضحة في الجدول 1. تم تحضير سبع حمية متساوية النيتروجين (28٪ بروتين) ومتساوية (445 كيلو كالوري / 100 جم DM). تم استكمال ستة أنظمة غذائية بثلاثة مستويات من الكركمين النانوي (50 (CN50) ، 100 (CN100) ، 200 (CN200) مجم / كجم من النظام الغذائي) أو الكركمين الحر (50 (C50) ، 100 (C100) ، 200 (C200) ) mg kg − 1 diet) ، وتم ترك حمية التحكم بدون مادة مضافة (CON). تم خلط المكونات الجافة والمطحونة جيدًا يدويًا أثناء إضافة الزيوت. بعد ذلك ، تم تعجن جميع المكونات عن طريق إضافة الماء الدافئ تدريجياً. تم تكوير العجين باستخدام مفرمة لحم ذات قطر مناسب. تم تجفيف الوجبات الغذائية في الشمس وتخزينها بدرجة -20 في عبوات بلاستيكية.

الأسماك والمرافق التجريبية.

تم الحصول على إصبعيات البلطي النيلي (Oreochromis niloticus) من مزرعة تجارية بالقرب من الإسكندرية وحفظت في خزان من الألياف الزجاجية (1 م 3) في معمل تربية الأسماك بالمعهد القومي لعلوم المحيطات والمصايد ، فرع الإسكندرية ، مصر. تمت إعادة تخزين مائة وثمانية وستين قدمًا في الثانية (13.54 ± 0. 32 جم) في 21 حوضًا زجاجيًا (7 0 حوض سمك -1) بكثافة 8 أسماك لكل حوض مائي. يتكون كل علاج من 3 مكررات (أ ، ب ، ج). تم تأقلم الأسماك مع الأحواض المائية لمدة أسبوعين وتم تغذيتها على نظام غذائي للتحكم للتكيف مع الأنظمة الغذائية التجريبية. تم تغذية الأسماك بالعلائق التجريبية ثلاث مرات في اليوم حتى الشبع لمدة 65 يومًا. تم توفير ماء الصنبور منزوع الكلور لكل حوض مائي مع التهوية المستمرة. تم حساب كمية العلف المستهلكة في كل معاملة أسبوعيا بالاختلاف في وزن عبوات الطعام قبل وبعد الرضاعة. تم ضبط الفترة الضوئية على 12 ساعة: 12 ساعة فاتحة: داكنة ، على التوالي. تمت مراقبة معايير جودة المياه كل أسبوع طوال مدة التجربة باستخدام مقياس مضواء Hanna Aquaculture Multiparameter ، HI833 0 3. تم تسجيل درجة حرارة الماء والأكسجين المذاب والأمونيا- N ودرجة الحموضة على النحو التالي ؛ 25 ± 2.1 درجة و 6.4 مجم لتر -1 و 0.05 مجم لتر و 7.7 على التوالي. بعد التعرض للإجهاد الحراري (40 درجة) ، كان الأكسجين المذاب والأمونيا- N في حوض السمك 2.1 مجم لتر -1 ، و 0.62 مجم لتر على التوالي. بعد ساعتين من الرضاعة ، تمت إزالة البراز عن طريق الشفط.

إعلان أخلاقي.

تم إجراء التجارب وفقًا للمبادئ التوجيهية التي تم تحديدها والموافقة عليها من قبل المعهد الوطني لعلوم المحيطات ومصايد الأسماك للرعاية المؤسسية للكائنات المائية والحيوانات التجريبية (NIOF-IACUC) ، مصر.

تحضير الكركمين والنانو ‑ الكركمين.

تم تحضير الكركمين والنانو كركمين من قبل قسم الأبحاث في NanoTech Egypt للإلكترونيات الضوئية وتكنولوجيا النانو. تم تحضير الكركمين النانوي من خلال طريقة الاختزال كما وصفها Dhivya et al. تم الحصول على أطياف امتصاص UV-Vis على Ocean Optics USB2 0 00 بالإضافة إلى مقياس الطيف الضوئي VIS-NIR الألياف البصرية. لدراسة التشكل السطحي وحجم الجسيمات النانوية ، تم استخدام مجهر إلكتروني عالي الدقة للإرسال (TEM) ، JEOL JEM -2100. كشف تصوير TEM عن الشكل الكروي تقريبًا والسطح الأملس وتوزيع الحجم المنتظم لما يقرب من 50 ± 5.5 نانومتر من الكركمين النانوي (الشكل 1). تم تحديد توزيع حجم الجسيمات وإمكانات زيتا لجزيئات الكركمين النانوية بواسطة أداة Zetasizer Malvern (Malvern ، المملكة المتحدة) ، الإصدار 7.13 ، الرقم التسلسلي: MAL 1203718. كانت إمكانات Zeta (mV) وانحراف Zeta (mV) -25 .0 و 4.16 على التوالي (الشكل 2).

أداء مثمر.

تم جمع ووزن جميع الأسماك في كل خزان قبل البدء وفي نهاية تجربة التغذية. تم حساب النمو واستخدام الأعلاف ومؤشرات القياسات الحيوية الأخرى وفقًا للمعادلات التالية:

التركيب الكيميائي للجسم.

قبل بدء تجربة التغذية ، تم أخذ عينات عشوائية من 10 أسماك وتجميدها بدرجة -20 لتحليل الكيمياء الحيوية لكامل الجسم. في نهاية تجربة التغذية ، تم أخذ عينات من ستة أسماك لكل معاملة لتحليل الكيمياء الحيوية لكامل الجسم. تم تجميد جميع العينات على الفور عند -20 درجة حتى التحليل. تم اتباع طرق AOAC34 لتقييم محتوى البروتين الخام والدهون والرطوبة والرماد لجميع العينات.

أخذ عينات الدم.

بعد تجربة التغذية ، تم أخذ عينات من ستة أسماك لكل معاملة لتحليل الدم. تم استخدام زيت القرنفل (0. 1 مل لتر -1) لتخدير الأسماك. تم جمع عينات دم (1 مل) من الوريد الذيلية للأسماك في أنابيب بلاستيكية دقيقة تحتوي على مضاد للتخثر (حمض ثنائي بوتاسيوم إيثيلين ديامينيتترا أسيتيك ، EDTA) لحفظ العينات لاستخدامها في فحص الدم. تم جمع مل واحد من الدم من كل عينة في أنابيب دقيقة بدون مضاد للتخثر وطردها لمدة 10 دقائق عند 2500 × جم لفصل المصل ، الذي تم تخصيصه لفحص الكيمياء الحيوية.

فحص الدم.

كريات الدم الحمراء ، الهيماتوكريت (HCT) ، الهيموغلوبين (HGB) ، متوسط ​​حجم الجسم (MCV) ، متوسط ​​الهيموغلوبين في الجسم (MCH) ، متوسط ​​تركيز الهيموغلوبين في الجسم (MCHC) ، الصفائح الدموية (PLT) ، الكريات البيض والتعداد التفاضلي (العدلات) (LYMPH)) ، وحيدات (MON) ، الحمضات (EO) ، الخلايا القاعدية (BAS) والخلايا الحبيبية غير الناضجة (IG) باستخدام مقياس الدم الآلي XE 2100 (Advia 2120 & Sysmex ، Siemens). تم تقييم جميع المؤشرات المذكورة قبل وبعد الإجهاد الحراري.

الكيمياء الحيوية في المصل.

تم تحليل مصل ألانين أمينوترانسفيراز (ALT) ، مصل أسبارتات أمينوترانسفيراز (AST) ، الغلوبولين المناعي M (IgM) ، مكمل 3 و 4 (C3 و C4 ، على التوالي) ، تم تحليل تركيزات الكورتيزول والجلوكوز في مصل عينات الدم. تم تحليل الجلوكوز وفقًا لطريقة hexokinase باستخدام حزمة Cobas (الرقم المرجعي ، 04404483 190) من خلال محلل Cobas-c 311 ، معرف النظام 0 768316. تم تقييم الكورتيزول بناءً على تكوين طريقة المعقد المناعي ذات الصلة من خلال حزمة المقايسة المناعية اللمعان الكهربائي "ECLIA" (الرقم المرجعي ، 11875116 122) باستخدام محلل المقايسة المناعية Cobas-e. تم إجراء تحليل ALT باستخدام حزمة Cobas C (الرقم المرجعي ، 207649q 57 322) ، محلل Cobas-C 311 ، معرف النظام 0،764،957. تم اكتشاف ALT وفقًا لـ Bergmeyer et al. 37 و ECCLS38. حفز ALT التفاعل بين L-alanine و 2- oxoglutarate. يتم تقليل البيروفات المتكونة من Te بواسطة NADH في تفاعل محفز بواسطة اللاكتات ديهيدروجينيز (LDH) لتكوين L-lactate و NAD. معدل أكسدة NADH يتناسب طرديا مع نشاط ALT التحفيزي.

يتم تحديده عن طريق قياس الانخفاض في الامتصاصية. حفزت AST في العينة نقل مجموعة أمينية بين L-aspartate و 2- oxoglutarate لتكوين oxaloacetate و L-glutamate. ثم تفاعل أوكسالأسيتات مع NADH ، في وجود نازعة هيدروجين المالات (MDH) ، لتكوين NAD. اتبع هذا الاختبار توصيات IFCC ولكن تم تحسينه وفقًا لـ Bergmeyer et al. 37 و ECCLS38 باستخدام حزمة Cobas c (الرقم المرجعي ، 20764949322) من خلال محلل Cobas-C 311. نظام lD 076494I. تم تحديد IgM بناءً على مبدأ التراص المناعي من خلال Cobas c 311 ، معرف النظام 0767883 باستخدام حزمة Cobas c (الرقم المرجعي ، 03507190). تفاعلت الأجسام المضادة IgM مع بعضها البعض في العينة وشكلت مركبًا مستضدًا / جسمًا مضادًا. بعد التراص ، تم قياس هذا بطريقة عكر بطول موجي فرعي / رئيسي: 700/340. تم تحديد C3 و C4 من خلال تكوين راسب من خلال إضافة مصل مضاد محدد ثم تم تحديدهما بطريقة عكر بطول موجي فرعي / رئيسي: 700/34039. تم قياس C3 من خلال Cobas c 311 ، معرف النظام 0765600 باستخدام حزمة Cobas c (الرقم المرجعي ، 03001938322). تم تحليل C4 من خلال Cobas c 311 ، معرف النظام 0765619 باستخدام حزمة Cobas c (الرقم المرجعي ، 03001962322).

الإجهاد الحراري.

بعد إنهاء تجربة التغذية ، تم جمع خمسة أسماك من كل مكررة من الأحواض الزجاجية التجريبية ونقلها إلى خزان 0. 5- طن من الألياف الزجاجية يحتوي على 7 وحدات تربية فرعية (7- حاويات اسطوانية بلاستيكية مثقبة). تمثل كل حاوية نسخة طبق الأصل من كل علاج. تم تعريض النسخ المتماثلة A و B و C لكل معاملة إلى إجهاد حراري في الأيام الأولى والثانية والثالثة على التوالي. وهكذا ، تكرر تحدي الإجهاد الحراري ثلاث مرات على مدار ثلاثة أيام متتالية. تم رفع درجة حرارة الماء تدريجياً من 25 إلى 40 درجة خلال 3 ساعات. تم التحكم في درجة حرارة الماء بواسطة ترموستات اصطناعي. بعد التعرض إلى 40 درجة لمدة 4 ساعات ، تم تخدير fsh من كل وحدة باستخدام زيت القرنفل. تم جمع عينات الدم لتحديد مستويات ALT و AST و IgM و C3 و C4 والجلوكوز والكورتيزول ، بالإضافة إلى تعداد الدم في الأسماك.

تحليل احصائي.

تمت معالجة البيانات المتعلقة بأداء النمو واستخدام الأعلاف باستخدام تحليل التباين أحادي الاتجاه (ANOVA). تم استخدام ANOVA ثنائي الاتجاه لتقييم تأثير الإجهاد الحراري والوجبات الغذائية التجريبية على الأسماك. تم استخدام اختبار Duncan اللاحق لترتيب الوسائل. P أقل من أو يساوي 0. تم ​​اعتبار 0 5 ذات دلالة إحصائية. تمت معالجة جميع الإحصائيات باستخدام حزمة SPSS (الإصدار 23.0).

تصريح.

تم الإبلاغ عن جميع الطرق بواسطة إرشادات ARRIVE 2. 0.

نتائج

أداء النمو واستخدام الأعلاف.

يتم عرض أداء النمو ونتائج استخدام العلف للأسماك التي تم تغذيتها على العلائق التجريبية في الجدول 2. تم الحصول على أعلى وزن نهائي (FW) وزيادة الوزن (WG) في CN1 المغذى على fsh 0 0 متبوعًا بـ CN2 0 0 (P أقل من أو يساوي 0. 0 5). الأسماك التي تتغذى على CN5 0 أعطت FW و WG معتدلة وكانت مماثلة لتلك التي تم تغذيتها على C1 0 0 (P أكبر من أو تساوي 0. 0 5). تم تسجيل أدنى نتائج لـ WG في CON أو C50 أو C200 المغذي fsh (P أقل من أو يساوي 0.05). أظهرت الأسماك التي تم تغذيتها على CN100 و CN200 أعلى معدل نمو نوعي (SGR) ، يليه CN50 و C100 (P أقل من أو يساوي 0.05). ومع ذلك ، فإن SGR في CN200 تغذيه على fsh لم تختلف اختلافًا كبيرًا عن CN50 أو C100 (P أكبر من أو يساوي 0.05). أنتجت المجموعات السمكية المكونة من CON و C50 و C200 أقل معدل تراكمي للجرعات السمكية (P أقل من أو يساوي 0.05). تم تسجيل أعلى نتيجة لمتوسط ​​الكسب اليومي (ADG) في مجموعة CN100 ، تليها CN200 ثم مجموعات CN50 و C100 (P أقل من أو يساوي 0.05). أظهرت المجموعات CON و C50 و C200 أدنى قيم ADG (P أقل من أو يساوي 0.05). تم تسجيل أعلى كمية من العلف (FI) في CN50 و CN100 و CN200 و C100 ، تليها مجموعات CON و C50 و C200 (P أقل من أو يساوي 0.05). تم الكشف عن أدنى نسبة FCR في CN100 و CN200 ، تليها CN50 و C100 ، بينما لوحظت أعلى قيم FCR في CON و C50 و C200 (P أقل من أو يساوي 0.05). أعطت مجموعات CN100 و CN200 أعلى قيم لنسبة كفاءة البروتين (PER) ، يليها CN50 ، و C100 بينما أقل القيم أنتجت في CON و C50 و C200 (P أقل من أو يساوي 0.05).

التركيب الكيميائي للجسم.

يوضح الجدول 3. نتائج التركيب الكيميائي التقريبي للبلطي النيلي المغذي على العلائق التجريبية. لم يكن هناك اختلاف معنوي في المادة الجافة بين المجموعات المختلفة (P أكبر من أو يساوي 0. 0 5 ). تم الحصول على أعلى قيم للبروتين الخام (CP) في CN5 0 و CN1 0 0 و CN200 و C100 ، تليها CON و C50 و C200 (P أقل من أو يساوي إلى 0.05) ؛ ومع ذلك ، لم يكن C50 مختلفًا بشكل كبير عن CN50 و CN100 و C100 (P أكبر من أو يساوي 0.05). كان لجميع المعالجات نسبة دهون خام أعلى من CON (P أقل من أو يساوي 0.05). تم تسجيل أعلى نتائج للرماد في CON و C200 ، تليها C50 ، ولوحظت أقل النتائج في CN50 و CN100 و CN200 و C100 (P أقل من أو يساوي 0.05).

تحليل الدم.

يوضح الجدول 4 التحليل الدموي للأسماك بعد تجربة التغذية عند 25 درجة وبعد الإجهاد الحراري عند 4 0 درجة. أوضحت النتائج أن الأنظمة الغذائية التجريبية والضغط الحراري أثرت معنوياً على بعض معاملات الدم (P أقل من أو يساوي 0. 0 5). لم تؤثر النظم الغذائية التجريبية على تعداد الدم (P أكبر من أو يساوي {{1 0}. 05) باستثناء C200 ، التي أعطت عددًا أكبر من الكريات البيض وعددًا أقل من العدلات مقارنة بالأنظمة الغذائية التجريبية الأخرى (P أقل من أو يساوي 0.05). ومع ذلك ، بعد الإجهاد الحراري ، تم الكشف عن زيادة في عدد الصفائح الدموية ، MCV ، MCH ، الكريات البيض ، والعدلات ، بينما انخفض عدد الخلايا الليمفاوية (P أقل من أو يساوي 0.05) ولم يكن هناك أي تأثير على أمراض الدم الأخرى. المعلمات (P أكبر من أو يساوي 0.05).

تحليل الدم البيوكيميائي.

نتائج التحليل البيوكيميائي للدم قبل وبعد الإجهاد الحراري للبلطي النيلي الذي تم تغذيته على الوجبات التجريبية موضحة في الجدول 5. هناك تأثير عميق لكل من النظام الغذائي والإجهاد الحراري على معاملات الدم البيوكيميائية للبلطي النيلي (P أقل من أو يساوي إلى 0. 0 5). أظهر ALT أعلى نشاط في C2 0 0 ، يليه CON و C100 ، ثم C50 و CN200 ، بينما تم الحصول على أقل القيم في معاملات CN50 و CN100 (P أقل من أو يساوي 0.05) . تم إعطاء أعلى نشاط لـ AST في C200 ، تليها معاملات C100 و CON ، تليها C50 ، بينما تم الكشف عن أقل نشاط في معاملات CN50 و CN100 و CN200 (P أقل من أو يساوي 0.05). ومع ذلك ، لم تختلف قيمة AST في CN200 اختلافًا كبيرًا عن C50 (P أكبر من أو يساوي 0.05).

تم الحصول على أعلى مستويات IgM في C2 0 0 و C1 0 0 و CN1 0 0 و CN2 0 0 متبوعًا بـ CN5 0 ، بينما أعطت C50 و CON أدنى قيمة (P أقل من أو يساوي 0.05). أظهر C200 أعلى مستوى من C3 ، يليه CN50 (P أقل من أو يساوي 0.05) ، بينما C100 و CN100 و CN200 لم تختلف بشكل ملحوظ عن C200 أو CN50 (P أكبر من أو يساوي 0.05). أعطت C50 و CON أدنى قيم لـ C3 (P أقل من أو يساوي 0.05). تم العثور على أعلى قيم C4 في C200 و CN200 ، تليها CN50 ثم CN100 و C100 ، بينما أعطت C50 و CON أقل النتائج (P أقل من أو تساوي 0.05). أعطى C200 أعلى قيمة للكورتيزول ، يليه CON ، يليه C100 ، ثم CN200 و C50 (P أقل من أو يساوي 0.05). سجلت أقل نتائج الكورتيزول لـ CN50 و CN100 (P أقل من أو يساوي 0.05). كان الجلوكوز الذي تم الحصول عليه في C200 و CON أعلى من المعالجات الأخرى (P أقل من أو يساوي 0.05). لوحظت زيادة في ALT و AST و IgM و C3 و C4 والكورتيزول والجلوكوز بعد الإجهاد الحراري (P أقل من أو يساوي 0.05).

مناقشة

في الدراسة الحالية ، أدى تغذية البلطي النيلي على علائق تحتوي على الكركمين إلى نتائج نمو أفضل بشكل ملحوظ مقارنة بالنظام الغذائي الضابط. علاوة على ذلك ، تكشف هذه الدراسة بشكل ملحوظ عن تفوق الكركمين النانوي على شكله الحر في تحسين أداء نمو البلطي النيلي. في الدراسة الحالية ، تم تحقيق أفضل أداء للنمو (WG ، SGR ، ADG) واستخدام الأعلاف (FCR و PER) للبلطي النيلي عند 100 مجم / كجم ، تليها 200 مجم كجم / 1 غذاء من الكركمين النانوي. . هذا يتفق مع محمود وزملاؤه .23 الذين وجدوا أن تغذية البلطي النيلي (Oreochromis niloticus) ب 50 أو 100 مجم / كجم من النظام الغذائي من الكركمين يعزز أداء النمو واستخدام العلف. لقد ربطوا هذا التحسن في أداء النمو واستخدام الأعلاف بتحسين أنشطة إنزيمات الجهاز الهضمي (الأميليز والبروتياز والتريبسين والليباز). بالإضافة إلى ذلك ، يمكن أن يعزز الكركمين الإنزيمات الأخرى (Na plus / K plus -ATPase ، والفوسفاتاز القلوي المعوي ، و gamma-glutamyl transpeptidase ، والكرياتين كيناز) المسؤولة عن تدهور المغذيات والاستيعاب. علاوة على ذلك ، قد يعمل الكركمين كبريبايوتيك ، ويعزز منتديات الأمعاء ، ويحسن الهضم والامتصاص المعوي ، مما يؤدي إلى تحسين الصحة العامة والنمو في fsh40. تم الكشف عن التأثيرات الإيجابية للمكملات الغذائية من الكركمين في أنواع مختلفة من الأسماك مثل مبروك الحشائش (أفكار Ctenopharyngodon) 41 ، الكارب الكروشي (Carassius auratus) 22 ، الكروكر الأصفر الكبير (Pseudosciaene crocea) 42 ، تراوت قوس قزح (Oncorhynchus mykiss) 17 والآسيوي 43.

كما ذكرنا سابقًا ، فإن الدراسة الحالية تتفوق على جسيمات الكركمين النانوية على الكركمين الحر في تعزيز معدل نمو البلطي النيلي. بمعنى آخر ، يمكن لجرعة أقل من الكركمين النانوي أن تعزز أداء نمو البلطي النيلي وتعطي نفس تأثيرات جرعة أعلى من الكركمين الحر. على سبيل المثال ، أعطت حمية 50 مجم كجم من النانو-كركمين نفس التأثيرات مثل 100 مجم كجم من الكركمين الحر. كدعم ، أظهر الكركمين النانوي 60- زيادة أضعاف في نصف العمر البيولوجي مقارنةً بالكركمين الحر في نماذج الفئران. علاوة على ذلك ، يُظهر الكركمين النانوي توافرًا حيويًا نظاميًا أعلى في البلازما والأنسجة مقارنةً بالكركمين الخالي. قد يكون هذا بسبب انخفاض قابلية ذوبان الكركمين الحر في الماء ؛ لذلك ، فإنه يشكل تكتلات ويكون عرضة للتطهير ، بينما يذوب الكركمين النانوي تمامًا في الماء دون تكتلات بسبب إمكاناته من زيتا.

أدت إضافة الكركمين الخالي من الكركمين والنانو كركمين على أعلى مستوى (200 مجم / كجم من النظام الغذائي) في الدراسة الحالية إلى انخفاض أداء النمو واستخدام الأعلاف مقارنة بـ CON. في الواقع ، الكركمين هو بوليفينول. تم الإبلاغ عن أن الجرعات المنخفضة من مادة البوليفينول يمكن أن تتراكم بيولوجيًا في أنسجة الجسم حيث لا يتم امتصاصها بالكامل في الأمعاء. قد يسبب البوليفينول في المستويات العالية تراجعًا في النمو. كان هذا التأثير أقل في معالجات النانو - الكركمين ، مما يشير إلى أن نانو الكركمين قد يكون أكثر أمانًا من شكله الحر. كدعم ، كشف Lee et al.47 عن السلامة الحيوية لاستخدام النانو الكركمين.

في هذه الدراسة ، زاد الكركمين والنانو كركمين من البروتين الخام ومحتويات الدهون في جسم السمكة. وبالمثل ، فإن المكملات الغذائية التي تحتوي على الكركمين بمستويات 50-200 مجم كجم / 1 حمية حسنت بشكل ملحوظ ترسب الدهون الخام والبروتين في عضلات البلطي النيلي. يمكن أن يكون هذا مرتبطًا بتنظيم الجراثيم المعوية ، مما عزز الاستخدام الفعال للمغذيات. تفسير آخر سيكون التأثيرات المفيدة للكركمين على نشاط إنزيمات هضم الأسماك بما في ذلك التربسين والليباز والأميلاز. بالإضافة إلى ذلك ، تعمل الجسيمات سالبة الشحنة ، مثل الكركمين النانوي ، على إبطاء معدل امتصاص بروتينات المصل ، مما يؤدي إلى فترات نصف دورة أطول من الجسيمات المشحونة إيجابياً. يمكن أن يفسر هذا سبب احتواء الأنظمة الغذائية التي تتغذى على الأسماك والتي تحتوي على الكركمين النانوي على محتوى بروتين خام أعلى من الأنظمة الغذائية الخالية من الكركمين التي تتغذى على الأسماك.

أي زيادة في نشاط إنزيم الكبد ، مثل ALT و AST ، هي علامة بيولوجية لتلف الكبد. في هذه الدراسة ، انخفضت مستويات ALT و AST في مجموعات الكركمين النانوية إما قبل أو بعد الإجهاد الحراري وإلى حد ما في مجموعات الكركمين الحرة ، مما يدل على مزايا نانو الكركمين (تم تبرير ذلك في وقت سابق في هذه المناقشة ). بشكل مشابه ، يمكن أن يمنع الكركمين السمية الكبدية في الفئران التي يسببها بيروكسيد الهيدروجين ويقلل من مستويات إنزيمات ALT و AST. علاوة على ذلك ، أظهرت النتائج التجريبية في الفئران المصابة بالتليف الناجم عن رابع كلوريد الكربون (CCl4) أن الكركمين النانوي قلل بشكل كبير من مستويات ALT و AST 52. وبالتالي ، فإن قدرة الكركمين على تقليل بعض علامات الدم (مثل ALT و AST) تشير إلى قدرته كمضاد. - عامل التهابي أثناء إصابة الكبد 53.

على الرغم من التأثيرات الوقائية للكركمين ضد تلف الكبد في هذه الدراسة بتركيز معتدل (100 مجم / كجم من النظام الغذائي) ، ظهرت آثار ضائرة عند التركيز الأعلى (200 مجم / كجم من النظام الغذائي). باتباع نفس النمط ، أظهر الكركمين أيضًا تأثيرًا يعتمد على التركيز في الكارب العملاق (Cyprinus carpio) ، الذي عانى من تلف الكبد الناجم عن CCl. وبالمثل ، وجد أن الكركمين له تأثيرات مزدوجة على إصابة الكبد الكحولي في ذكور الجرذان اعتمادًا على التركيز ، حيث تم الحصول على تأثيره الوقائي فقط عند التركيز المنخفض ، ولكن لوحظ تسارع إصابة الكبد بتركيز أعلى 55. دراسة أخرى في أشارت الفئران إلى أن التركيز العالي مع تناول الكركمين على المدى الطويل يمكن أن يقلل من وزن الجسم ، ويسرع الإجهاد التأكسدي والالتهاب ويحفز إصابة الكبد مع زيادة مستويات AST و -GGT.

قد يكون التأثير المزدوج للكركمين مرتبطًا بقدرته على تحفيز أوكسيجيناز الهيم -1 (HO -1) بتركيزات غير سامة وسامة ، ويرتبط تحريض HO -1 بإنتاج أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) ، مما يشير إلى وجود علاقة سببية. وبالمثل ، وجد Cao وزملاؤه 58 أنه عند التركيزات المنخفضة ، يكون للكركمين تأثيرات مفيدة من خلال تحفيز الأنشطة المضادة للأكسدة ؛ ومع ذلك ، تزيد التركيزات الأعلى من مستويات ROS الخلوية ، مما يؤدي إلى تلف الحمض النووي المؤكسد في خلايا الورم الكبدي G2 البشري.

يؤدي الإجهاد الحراري إلى رفع مؤشرات الإجهاد ، مثل مستويات الكورتيزول والجلوكوز. في الدراسة الحالية ، أدى إدراج الكركمين (باستثناء الجرعة العالية من 200 مجم كجم في النظام الغذائي) أو نانو الكركمين في حمية البلطي إلى خفض كل من الجلوكوز والكورتيزول إما قبل أو بعد الإجهاد الحراري. تم الكشف عن أفضل مستويات الكورتيزول عند CN50 و CN100. ربما يكون هذا مبررًا بطبيعة الكركمين باعتباره بوليفينول. ثبت أن البوليفينول يحسن مؤشرات الإجهاد الكورتيزول والجلوكوز (59 ، 60). يمكن أيضًا أن تُعزى هذه التأثيرات إلى الخصائص المضادة للأكسدة للكركمين ، والتي تم العثور عليها للقضاء على الجذور الدهنية في غشاء الخلية وتصبح جذور الفينوكسيل. علاوة على ذلك ، يخفض الكركمين مستويات الجلوكوز في الكبد عن طريق زيادة امتصاص الجلوكوز من خلال تنظيم تعبيرات الجينات GLUT2 و GLUT3 و GLUT4. كدعم ، كشف وي وزملاؤه 63 أن الكركمين الغذائي يقلل بشكل كبير من الكورتيزول الناجم عن الإجهاد بمقدار الثلث في الخنازير.

ومع ذلك ، في هذه الدراسة ، أدى التركيز العالي من الكركمين (200 مجم كجم من النظام الغذائي) إلى مستوى أعلى من الكورتيزول مقارنة بالعلاجات الأخرى ، بما في ذلك المجموعة الضابطة. في موازاة ذلك ، أنتج C200 مستوى أعلى من الجلوكوز مماثل للمستوى الذي حصلت عليه المجموعة الضابطة. تم الإبلاغ عن نفس التأثير في الدجاج البياض ، حيث لم تقلل الجرعات العالية من الكركمين الكورتيزول مقارنة بالتركيزات المنخفضة التي أدت إلى خفض مستويات الكورتيزول قبل أو بعد التعرض لدرجات حرارة عالية 64. وربط المؤلفون هذا التأثير بإمكانية الفعل المزدوج للكركمين ، لأنه يمكن أن يعمل كمضاد للأكسدة و / أو مؤكسد ، حسب جرعته 65. يزيد التركيز العالي من البيروكسيدات من إطلاق ROS الذي يتلف الخلايا والأنسجة.

في هذه الدراسة لم تؤثر الأنظمة الغذائية التجريبية على التعداد الدموي باستثناء C200 الذي أعطى كريات بيضاء أعلى وعدلات أقل مقارنة بالعلائق التجريبية الأخرى. قد يؤكد العدد المرتفع من الكريات البيض عند مستوى عالٍ من الكركمين (200 مجم / كجم من النظام الغذائي) على الحالة المجهدة للأسماك عند هذا التركيز. تتناسب كثرة الكريات البيضاء بشكل مباشر مع شدة الإجهاد وكذلك الضرر الناجم عن الإجهاد الذي يؤدي لاحقًا إلى تشغيل نظام الدفاع المناعي 66،67.

تؤثر درجة الحرارة على بارامترات الدم في fsh68. في هذا الصدد ، بعد الإجهاد الحراري ، تم رفع عدد الصفائح الدموية ، MCV ، MCH ، الكريات البيض ، العدلات بينما انخفض عدد الخلايا الليمفاوية ، ولم يكن هناك تأثير على معاملات الدم الأخرى في الدراسة الحالية. في الدعم ، أبلغ Grzelak وزملاؤه 69 عن وجود قلة لمفية كبيرة وعدلات في سمك الزرد شديد الإجهاد (Danio rerio) مقارنةً بالضغوط غير المجهدة أو الخاضعة للرقابة. علاوة على ذلك ، ينتج عن الإجهاد الحراري نقص الأكسجة أو نقص الأكسجين ، وقد تم الإبلاغ عن هذا التأثير في الدراسة الحالية. بدوره ، وجد أن نقص الأكسجة يزيد من عدد الكريات البيض ، والصفائح الدموية ، والعدلات ويقلل من عدد الخلايا الليمفاوية في البلطي الأحمر 72. وقد يكون هذا مرتبطًا بمستوى الكورتيزول المرتفع 72. وقد ظهرت قلة العدلات ونقص اللمفاويات بعد العلاج بالكورتيزول في الكارب (C. carpio L.) 73. أنتج مبروك الدوع (Carassius carassius) نسبة عالية من العدلات إلى الخلايا الليمفاوية في الدم بعد تعرضه للإجهاد ، والذي يرتبط ارتباطًا وثيقًا بمستويات الجلوكوكورتيكويد المرتفعة 74.

الغلوبولين المناعي M والمكملات (C3 و C4) هي مكونات رئيسية في الجهاز المناعي الفطري للأسماك ، وهي من بين الخطوط الأولى للدفاع عن الجهاز المناعي وتلعب دورًا حاسمًا في حماية صحة الأسماك 75-78. يلعب IgM والمكملات دورًا مهمًا في حماية جسم الحيوان من العدوى أثناء الإجهاد ، فضلاً عن تعزيز ابتلاع الخلايا المبرمج والخلايا المصابة 79-82. في الواقع ، قبل وبعد الإجهاد الحراري في الدراسة الحالية ، زادت مستويات IgM و C3 و C4 مع التضمين الغذائي للكركمين. علاوة على ذلك ، أظهر الكركمين النانوي تحسنًا أفضل في هذه المؤشرات من الكركمين الحر. تسلط النتائج المقدمة هنا لـ IgM و C3 و C4 الضوء على حقيقتين: الجرعة المنخفضة من الكركمين أفضل ، والصياغة النانوية أكثر فعالية (والتي تم تبريرها سابقًا في هذه المناقشة). كدعم ، تسبب الكركمين في الاستجابة المناعية الفطرية للبلطي النيلي بجرعة 50 مجم / كجم من النظام الغذائي ، ولكن تم تثبيط النمو عند المستويات الأعلى. وجدت الدراسة الحالية أن مستويات IgM و C3 و C4 تزداد مع ارتفاع درجة الحرارة ، مما يكشف عن تحفيز إنتاج المواد المضادة للالتهابات لتقليل تلف الأنسجة. وهذا مدعوم بنتائج إنزيمات الكبد في الدم (ALT و AST) في هذه الدراسة. من المعروف أن الإجهاد الحراري يتسبب في تلف الأنسجة والإجهاد التأكسدي في الأسماك ؛ وبالتالي ، فإنه يؤدي إلى موت الخلايا المبرمج وموت الخلايا 83-85. يؤدي الإجهاد الحراري الحاد قصير المدى إلى التنظيم الأعلى لـ C3 و C486. علاوة على ذلك ، أدى النقص في النظام التكميلي إلى زيادة تلف الأوعية الدموية ونفاذية الأوعية الدموية والوذمة الوعائية 87.

لوحظ زيادة تدريجية في مستويات IgM في البلازما مع زيادة درجة الحرارة (18 ، 23 ، 28 ، 33 درجة) في البلطي النيلي باستثناء أعلى درجة حرارة. وبالمثل ، فإن تربية القاروص (Dicentrarchus labrax) عند درجة حرارة عالية (23 درجة) أدت إلى زيادة مستويات IgM مقارنة بتربية الأسماك عند 17 درجة. وعلى العكس من ذلك ، كشفت دراسات أخرى أن H2S يقلل من مستويات IgM و C3 و C4 في fsh89– 91. يمكن تبرير هذا التناقض من خلال مدة الإجهاد الحراري ، حيث ترتفع مستويات IgM و C3 و C4 تحت الضغط الحاد ولكنها تنخفض تحت الضغط المزمن. أظهر الدنيس الحاد (Megalobrama amblycephala Yih) زيادة في الأنشطة التكميلية البديلة ومستويات IgM بعد 6 ساعات من التعرض للإجهاد الحراري ، والتي انخفضت بعد 12 ساعة.

في الختام ، يتمتع الكركمين النانوي بالتفوق على الكركمين الحر في تحسين أداء النمو ، ومؤشرات الإجهاد ، والمناعة غير النوعية ، ومقاومة الإجهاد الحراري للبلطي النيلي. كانت المكملات الغذائية من الكركمين النانوي بمستويات 50 أو 100 مجم / كجم من النظام الغذائي فعالة في تحسين الأداء وتخفيف الآثار السلبية للإجهاد الحراري ، بينما أدت الجرعات من 100 أو 200 مجم / كجم / 1 إلى تحسين أداء نمو البلطي النيلي. . وهكذا ، كانت جرعة 100 مجم / كجم من النظام الغذائي فعالة لكل من أداء النمو والقدرة على مقاومة الحرارة.

توافر البيانات

يتم تضمين جميع البيانات التي تم إنشاؤها أو تحليلها خلال هذه الدراسة في هذه المقالة المنشورة.

مراجع

1. Wang، M. & Lu، M. Tilapia polyculture: مراجعة عالمية. تربية الأحياء المائية. الدقة. 47 ، 2363-2374 (2016).

2. منظمة الأغذية والزراعة للأمم المتحدة. 2020. الإنتاج العالمي لتربية الأحياء المائية 1950-2020.

3. باو ، جي دبليو وآخرون. استجابات الكيمياء الحيوية للدم ، وتكوين الأحماض الدهنية ، والتعبير عن الرنا الميكروي لتسخين الإجهاد في البلطي المستزرع المحسن وراثيًا (Oreochromis niloticus). ياء مصطلح. بيول. 73 ، 91-97 (2018).

4. السيد ، AFM ثقافة البلطي الثانية ، نهاية 348 (Elsevier / Academic Press ، 2020).

5. داود ، MAO ، عويضة ، NM & Elbialy ، ZIA ، زبدات الصوديوم الغذائية خففت المؤشرات الحيوية لإجهاد الدم ، وبروتينات الصدمة الحرارية ، والاستجابة المناعية للبلطي النيلي (Oreochromis niloticus) المعرض للإجهاد الحراري. ياء مصطلح. بيول. 88 ، 102500 (2020).

6. باجاث ، م وآخرون. تأثير الإجهاد الحراري على جهاز المناعة في الأبقار الحلوب. القس الدقة. دكتور بيطري. علوم. 126 ، 94-102 (2019).

7. أداء Chu و GM & Song و YM Growth وخصائص الدم والاستجابات المناعية لتسمين الخنازير في المواسم المختلفة. آسيوي جيه أنيم. دكتور بيطري. حال. 8 (5) ، 691-702 (2013).

8. داس ، ر. وآخرون. تأثير الإجهاد الحراري على صحة وأداء حيوانات الألبان: مراجعة. دكتور بيطري. عالم. 9 ، 260-268 (2016).

9. Zhang، C.-N. وآخرون. تأثيرات فركت أوليغوساكاريد على الاستجابة المناعية ، والقدرة المضادة للأكسدة ، وتعبيرات HSP70 و HSP90 في الدنيس ذو الخطم الحاد (Megalobrama amblycephala Yih) تحت ضغط الحرارة المرتفع. تربية الأحياء المائية 433 ، 458-466 (2014).

10. Dominguez، M.، Takemura، A.، Tsuchiya، M.، & Nakamura، S. تأثير العوامل البيئية المختلفة على مستويات الغلوبولين المناعي المنتشر في البلطي النيلي ، Oreochromis niloticus. تربية الأحياء المائية 241 ، 491e500 (2004).

11. Galina، J.، Yin، G.، Ardo، L. & Jeney، Z. Te استخدام الأعشاب المناعية في الأسماك: نظرة عامة على البحث. فيزيول السمك ، الكيمياء الحيوية. 35 ، 669-676 (2009).

12. Vallejos-Vidal، E.، Reyes-López، F.، Teles، M. & MacKenzie، S. Te استجابة fsh للأنظمة الغذائية المنشطة للمناعة. محار الأسماك إمونول. 56 ، 34-69 (2016).

13. لي ، دبليو إتش وآخرون. الكركمين ومشتقاته: تطبيقها في علم الأدوية العصبية وعلم الأعصاب في القرن الحادي والعشرين. بالعملة. نيوروفارماكول. 11 ، 338-378 (2013). 14. Ak، T. خصائص الكركمين المضادة للأكسدة والجذور. تشيم. بيول. يتفاعل. 174 ، 27–37 (2008).

15. Aggarwal، BB & Harikumar، KB التأثيرات العلاجية المحتملة للكركمين ، العامل المضاد للالتهابات ، ضد أمراض التنكس العصبي ، القلب والأوعية الدموية ، الرئة ، التمثيل الغذائي ، المناعة الذاتية والأورام. كثافة العمليات J. Biochem. خلية بيول. 41 ، 40-59 (2009).

16. Yuan، J.، Liu، R.، Ma، Y.، Zhang، Z. & Xie، Z. يخفف الكركمين من التهاب مجرى الهواء وإعادة تشكيل مجرى الهواء عن طريق تثبيط إشارات NF-kB و COX -2 في دخان السجائر- تسببها الفئران مرض الانسداد الرئوي المزمن. التهاب 41 ، 1804-1814 (2018).

17. Yonar، EM، Yonar، SM، İspir، Ü.، Ural، M. & Ş.،. تأثير الكركمين على القيم الدموية والمناعة وحالة مضادات الأكسدة ومقاومة تراوت قوس قزح (Oncorhynchus mykiss) ضد Aeromonas salmonicida subsp. أكروموجينيس. محار الأسماك إمونول. 89 ، 83-90 (2019).

18. ليا ، ت. وآخرون. آثار النظام الغذائي المضاف إليه الكركمين على النمو والمعلمات المناعية غير النوعية لسمكة Cirrhinus mrigala ضد عدوى Edwardsiella tarda. كثافة العمليات جيه كور. ميكروبيول. 6 ، 1230-1243 (2017).

19. Negi، PS، Jayaprakasha، GK، Rao، LJM & Sakariah، KK النشاط المضاد للبكتيريا لزيت الكركم: منتج ثانوي من صناعة الكركمين. J. أجريك. الغذاء تشيم. 47 ، 4297–4300 (1999).

20. ماندال ، MNA وآخرون. يحمي الكركمين خلايا الشبكية من موت الخلايا الناجم عن الإجهاد الناتج عن الضوء والأكسدة. راد الحرة. بيول. ميد. 46 ، 672-679 (2009).

21. براساد ، إس ، جوبتا ، إس سي ، تياجي ، إيه كيه آند أجروال ، بي بي كركمين ، أحد مكونات التوابل الذهبية: من السرير إلى المقعد والظهر. التكنولوجيا الحيوية. حال. 32 ، 1053-1064 (2014).

22. Jiang، J. et al. آثار مكملات الكركمين الغذائية على أداء النمو ، وأنشطة إنزيم الأمعاء الهضمي ، والقدرة المضادة للأكسدة لكارب الدوع Carassius auratus. تربية الأحياء المائية 463 ، 174-180 (2016).

23. محمود ، أ.ك. ، الصغير ، أ.أ. ، رضا ، إف إم ، محجوب ، عياط ، إس إيه ، إم إس ، تأثير مكمل الكركمين الغذائي على النمو ، والمناعة ، وحالة مضادات الأكسدة ، ومقاومة الأيروموناس hydrophila في Oreochromis niloticus. تربية الأحياء المائية 475 ، 16-23 (2017).

24. Umamaheswari، M. & Krishnamurthy، R. التأثيرات المناعية للكركمين (كركم لونجا) على أسماك المياه العذبة الصالحة للأكل كاتلا كاتلا (هاميلتون بوكانان). كثافة العمليات جيه أدف. علوم. الدقة. ماناج. 3 ، 115-118 (2018).

25. García-Pérez، OD et al. تأثير حامض اللينوليك المترافق والكركمين على أداء النمو وإنزيمات الإجهاد التأكسدي في اليافع الجمبري الأبيض المحيط الهادئ (Litopenaeus vannamei) الذي يتغذى بالأفلاتوكسين. تربية الأحياء المائية. الدقة. 51 ، 1051-1060 (2020).

26. Li، L.، Zhang، Z. & Huang، Y. تحليل النسخ التكاملي واكتشاف مسارات الإشارة المشاركة في التأثيرات الوقائية للكركمين ضد الإجهاد التأكسدي في خلايا كبد البلطي. أكوات. توكسيكول. 224 ، 105516 (2020).

27. مولر ، آر إتش آند كيك ، سي إم التحديات والحلول لتوصيل أدوية التكنولوجيا الحيوية - مراجعة لتكنولوجيا البلورات النانوية الدوائية والجسيمات النانوية الدهنية. J. Biotechnol. 113 ، 151-170 (2004).

28. Mythri ، RB ، Jagatha ، B. ، Pradhan ، N. ، Andersen ، J. & Bharath ، MS Mitochondrial complex I تثبيط في مرض باركنسون: كيف يمكن أن يحمي الكركمين الميتوكوندريا؟ أنتيوكس. إشارة الأكسدة والاختزال. 9 ، 399-408 (2007).

29. ساهني ، جي كي ، بابوتا ، س. وعلي ، ج. الدور الواعد للمستحضرات الصيدلانية النانوية في توصيل الأدوية. فارم. مرات. 43 ، 16-18 (2011).

30. Zou، P.، Helson، L.، Maitra، A.، Stern، ST & McNeil، SE الحرائك الدوائية لجسيمات الكركمين النانوية البوليمرية والتمثيل الغذائي في فئران القناة الصفراوية. مول. صيدلية. 10 ، 1977-1987 (2013).

31. جيانغ ، واي. ، تشيكوري ، س ، فانغ ، آر إتش وتشانغ ، ل. هندسة التفاعلات البيولوجية على المقياس النانوي. بالعملة. رأي. التكنولوجيا الحيوية. 55 ، 1-8 (2019).

32. مارشيوري ، إم إس وآخرون. الكركمين في حمية السمان في الإجهاد البارد يحسن الأداء وجودة البيض. الرسوم المتحركة. تغذية العلوم. تكنول. 254 ، 114–192 (2019).

33. Dhivya ، R. ، Rajendran ، J. & Rajasekaran ، M. حال. ماتر. بادئة رسالة. 6 ، 505-512 (2015).

34. AOAC (رابطة الكيميائيين التحليليين الرسميين). طرق التحليل الرسمية. AOAC ، أرلينغتون ، فيرجينيا (1990).

35. أكياس ، كربوهيدرات DB. في: Tietz NW (ed) أساسيات الكيمياء السريرية. الطبعة الرابعة دبليو بي سوندرز ، فيلادلفيا ، ص 351–374 (1996).

36. Rosalki، S. اختبار الكيمياء الحيوية لوظيفة قشر الكظر. كثافة العمليات J. كلين. الممارسة. 52 ، 189-191 (1998).

37. Bergmeyer، HU، Horder، N. & Rej، R. وافق على التوصية بشأن طرق IFCC لقياس التركيز التحفيزي للإنزيمات. الجزء 2. طريقة IFCC للأسبارتات aminotransferase. J. كلين. تشيم. كلين. بيوتشيم. 24 ، 497-510 (1986).

38. ECCLS. تحديد تركيز النشاط الحفزي في مصل L: أسبارتات أمينوترانسفيراز (EC 2.6.1.1 ، ASAT). كلين. تشيم. ميتي. 20 ، 198-204 (1989).

39. Tiez، NW، ed. دليل سريري للاختبارات المعملية ، الطبعة الثالثة. فيلادلفيا: شركة WB Saunders 354–357 (1995).

40. Midhun، SJ et al. تعديل جينات إنزيمات الجهاز الهضمي و GH و IGF -1 و IGF -2 في teleost ، Tilapia (Oreochromis mossambicus) بواسطة الكركمين الغذائي. تربية الأحياء المائية. كثافة العمليات 24 ، 1277-1286 (2016).

For more information:1950477648nn@gmail.com