arلغة
الصفحة الرئيسية / معرفة / المحتوى

معرفة

مكونات البامية المضادة للأكسدة والتعب

Mar 21, 2022

Fangbo Xia و Yu Zhong و Mengqiu Li و Qi Chang و Yonghong Liao و Xinmin Liu * و Ruile Pan *


معهد تطوير النباتات الطبية ، كلية الطب في اتحاد بكين ، الأكاديمية الصينية للطبالعلوم ، رقم 151 ، طريق ماليانوا الشمالي ، حي هايديان ، بكين 100193


للمزيد من المعلومات:ali.ma@wecistanche.com



الملخص


البامية (Abelmoschus esculentus (L.) Moench) ، نبات صحي ، منتشر على نطاق واسع في المناطق الاستوائية وشبه الاستوائية. أثبتت الدراسات السابقة أن قرون البامية تمتلكنشاط مضاد للتعب ،والهدف من هذا البحث هو توضيحمكافحة التعبالناخبين. لتحقيق ذلك ، قمنا بتقسيم قرون البامية (OPD) إلى بذور (OSD) وجلود (OSK) وقارننا محتويات عديد السكاريد الكلي ، وإجمالي البوليفينول ، وإجمالي الفلافونويد ، وإيزوكيرسيترن ، وكيرسيتين -3- O-gentiobiose ومضادات الأكسدة النشاط في المختبر ونشاط مضاد للتعبفي الجسم الحي بين OSD و OSK. كانت محتويات البوليفينول الكلي والسكريات الكلية 29.5 في المائة و 14.8 في المائة في OSD و 1.25 في المائة و 43.1 في المائة في OSK ، على التوالي. تم اكتشاف إجمالي مركبات الفلافونويد ، و isoquercitrin ، و quercetin -3- O-gentiobiose (5.35٪ ، 2.067٪ ، 2.741٪ ، على التوالي) فقط في OSD. أظهرت فحوصات مضادات الأكسدة ، بما في ذلك 1- ثنائي فينيل -2- picrylhydrazyl (DPPH) ، وقوة مضادات الأكسدة المخفضة (FRAP) واختبار القدرة المخفضة ، واختبار السباحة المحملة بالوزن ، أن OSD تمتلك مضادات أكسدة وآثار مكافحة التعب. علاوة على ذلك ، كشف التحديد البيوكيميائي أننشاط مضاد للتعبيحدث OSD عن طريق خفض مستويات حمض اللاكتيك في الدم (BLA) ونيتروجين اليوريا (BUN) ، وتعزيز تخزين الجليكوجين في الكبد وتعزيز القدرة المضادة للأكسدة عن طريق خفض مستوى malondialdehyde (MDA) وزيادة ديسموتاز الفائق (SOD) و glutathione peroxidase (GSH- Px) المستويات. أثبتت هذه النتائج أن بذور البامية كانتمكافحة التعبجزء من قرون البامية والبوليفينول والفلافونويد كانت مكونات نشطة.


الكلمات الرئيسية: بامية؛ مكافحة التعب؛ مضادات الأكسدة. البوليفينول



Cistanche

1 المقدمة


التعب هو ظاهرة فسيولوجية معقدة ، والتي يتم تعريفها على أنها صعوبة في بدء أو الحفاظ على الأنشطة التطوعية [1]. بصرف النظر عن التقدم في العمر والظهور في السرطان ، والاكتئاب ، وعدوى فيروس نقص المناعة البشرية ، والتصلب المتعدد ، ومرضى مرض باركنسون ، أصبح التعب من الأعراض الأكثر شيوعًا في البشر العاديين مع تزايد وتيرة الحياة الحديثة [2-4]. أظهرت الدراسات الاستقصائية المجتمعية الكبيرة أن أكثر من نصف السكان البالغين يشكون من التعب [5،6]. الإرهاق المزمن أو المتراكم طويل الأمد لا يقلل من جودة الحياة فحسب ، بل يؤدي أيضًا إلى متلازمة التعب المزمن وأمراض عضوية أخرى ، بل ويؤدي إلى كاروشي (الموت غير الطبيعي من أمراض القلب والأوعية الدموية الحادة الناجمة عن الإجهاد [7]). هناك العديد من النظريات حول أسباب الإرهاق ، مثل نظرية الإرهاق ، والتي تنص على أن الإرهاق ناتج عن نقص ATP المتاح لاقتران الأكتين والميوسين ، وضخ Na / K و Ca2` عن طريق الشبكة الساركوبلازمية [8-11 ] ؛ نظرية اضطراب التوازن ، التي تشير إلى التعب الناجم عن تراكم مختلف المنتجات الأيضية [10،12] ؛ تشير نظرية الكارثة إلى أن التعب قد يتطور بسبب الفشل في موقع واحد أو عدة مواقع على طول مسار إنتاج القوة [13]. من بين هؤلاء ، يُعتقد على نطاق واسع أن الإجهاد التأكسدي يلعب دورًا مهمًا في مسببات التعب [10،13-16]. ثبت أن مضادات الأكسدة من بعض الأعشاب تمتلك تأثيرات كبيرة مضادة للإرهاق ، مما يشير إلى أن العلاج بمضادات الأكسدة قد يكون أسلوبًا علاجيًا مفيدًا لمكافحة التعب [17-20]. لذلك ، يبحث المستهلكون عن المزيد من مكونات مضادات الأكسدة الطبيعية في نظامهم الغذائي لتقليل الضرر التأكسدي ومحاربة التعب. البامية (Abelmoschus esculentus (L.) Moench ، Family: Malvaceae) ، والمعروفة أيضًا باسم إصبع السيدة ، bhindi ، والبامية ، هي نبات سنوي موطنه أفريقيا وقد نمت في بلدان مختلفة حول العالم ، بشكل رئيسي في المناطق الاستوائية وشبه الاستوائية ، والمناطق المعتدلة الدافئة.


لطالما استخدمت قرون البامية كخضروات ومصدر للأدوية الغذائية. في الطب الآسيوي والأفريقي التقليدي ، تستخدم قرون البامية كغذاء مخاطي لمكافحة التهاب المعدة [21]. كشفت الدراسات الدوائية أن البامية تمتلك أنشطة مضادة للأكسدة ، وعصبية ، ومضادة لمرض السكر ، ومضادة لفرط شحميات الدم ، ومضادة للإرهاق [22-26]. على الرغم من أن النشاط المضاد للإجهاد في قرون البامية قد تم إثباته من قبل [26] ، إلا أنه لا يُعرف سوى القليل عن أنشطتها ومكوناتها المضادة للإجهاد. ذكرت الأدبيات السابقة أن قرون البامية تحتوي على نسبة عالية من السكريات والبوليفينول والفلافونويد [27–34]. وقد ثبت أيضًا أن البوليفينول والفلافونويد يمتلكان تأثيرات قوية مضادة للأكسدة ومضادة للإجهاد في الدراسات السابقة [15،18،20،35،36]. علاوة على ذلك ، كشفت تجربتنا النوعية الأولية ، التي استخدمنا فيها محلول كلوريد الحديديك ككاشف تطوير اللون ، أن مستخلص بذور البامية أظهر تفاعلًا فينوليًا قويًا ؛ ومع ذلك ، فإن مستخلص قشرته بالكاد أظهر مثل هذا التفاعل (المواد التكميلية) ، مما يدل على أن بذور البامية تحتوي على نسبة أعلى من البوليفينول والفلافونويد من قشور البامية. لذلك ، يمكن التكهن بأن بذور البامية قد تكون الجزء المضاد للإجهاد في قرون البامية ، وأن البوليفينول والفلافونويد قد تكون المكونات النشطة. كان الهدف من الدراسة هو توضيح المكونات المضادة للإرهاق في قرون البامية. لتحقيق ذلك ، قمنا بتقسيم قرون البامية الطازجة إلى بذور وجلود وقارننا المحتويات الكيميائية لعديد السكاريد الكلي ، وإجمالي البوليفينول ، وإجمالي مركبات الفلافونويد ، والأيزوكيرسيترين ، والكيرسيتين -3- O-gentiobiose ، وأنشطة مضادات الأكسدة في المختبر ومضادات- أنشطة التعب في الجسم الحي بين بذور البامية وجلودها. كل هذه النتائج أظهرت أن بذور البامية كانت الجزء المضاد للإجهاد في قرون البامية ، وأن البوليفينول والفلافونويد من المكونات النشطة. كما تمت دراسة الآليات المحتملة لأنشطة مكافحة التعب في البامية.


2. قسم تجريبي


2.1. المواد النباتية واستخراجها


تم شراء قرون البامية الطازجة من السوق (سانيا ، مقاطعة هاينان ، الصين) في يوليو 2013. تمت المصادقة على المصنع من قبل البروفيسور بينجانج تشانغ ، معهد النباتات الطبية ، الأكاديمية الصينية للعلوم الطبية ، وكلية بكين يونيون الطبية ، بكين ، الصين ، حيث تم إيداع عينات القسيمة (رقم 20130705) في معشبة المعهد. تم تحضير حصتين 2.5 كجم من قرون البامية الطازجة. تم تجفيف جزء واحد بالتجميد مباشرة للحصول على قرون بامية مجففة (251.3 جم). تم تقسيم الجزء الآخر إلى بذور بامية وقشر بامية ، تم تجفيفها بالتجميد للحصول على بذور بامية مجففة (50.1 جم) على التوالي وجلود بامية مجففة (200.5 جم). تم طحن قرون البامية والبذور والجلود جيدًا واستخلاصها بشكل منفصل مع 1500 مل من الماء المغلي لمدة ساعة واحدة (3 مرات). تم تجميع كل سائل مفلتر وتركيزه عند ضغط منخفض ، للحصول على بقايا قرون البامية (OPD ، 105.4 جم) ، بذور البامية (OSD ، 20.5 جم) ، وجلود البامية (OSK ، 84.1 جم) ، على التوالي. لذلك ، فإن نسبة استخراج OPD: OSK: OSD حوالي 5: 4: 1. تم تخزين جميع العينات عند -20 درجة مئوية حتى التحليل الكيميائي اللاحق والتجارب على الحيوانات.


Acteoside of Cistanche

2.2. المواد الكيميائية والكواشف


تم عزل Isoquercitrin و quercetin -3- O-gentiobiose من قرون البامية بواسطة مختبرنا ، بنقاوة تزيد عن 98 بالمائة ، عن طريق تحليل كروماتوجرافي سائل عالي الأداء (HPLC). تم شراء معايير Rutin و Gallic acid و D-glucose من المعهد الوطني لمراقبة الأغذية والأدوية (بكين ، الصين). تم استخدام كاشف الفينول Folin – Ciocalteu (1N ، Coolaber Science & Technology ، بكين ، الصين) لتقدير الفينولات. تم شراء مجموعة الطاقة المضادة للأكسدة الحديديك (FRAP) من Beyotime Biotechnology (بكين ، الصين). تم شراء 1 ، 1- diphenyl -2- picrylhydrazyl (DPPH) و Trolox من شركة Sigma-Aldrich Inc. (سانت لويس ، ميزوري ، الولايات المتحدة الأمريكية). تم شراء عازلة الفوسفات (PBS ، Gibco) من Thermo Fisher (والثام ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكية). المذيبات ، بما في ذلك الأسيتونيتريل (Thermo Fisher ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكية) وحمض الفورميك (CNW ، دوسلدورف ، ألمانيا) ، كانت من فئة HPLC ، وتم الحصول على الماء من نظام تنقية المياه Milli-Q (Millipore ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكية). تم شراء مجموعات الفحص لتحديد لاكتات الدم (BLA) ، نيتروجين اليوريا في الدم (BUN) ، الجليكوجين الكبدي (HG) ، الجلوتاثيون بيروكسيديز (GSH-Px) ، حمض الثيوباربيتوريك (TBA) ، وديسموتاز الفائق (SOD) من Nanjing Jiancheng Biotechnology المعهد (نانجينغ ، الصين). كانت جميع الكواشف والمواد الكيميائية الأخرى المستخدمة في هذه الدراسة من الدرجة التحليلية.


2.3 الحيوانات


تم شراء الفئران الذكور ICR (20-22 جم) من Vital River Laboratories (رقم مؤهل: SCXK 2012-0001 ، بكين ، الصين). تم إيواء الفئران في مجموعات من 6 حيوانات لكل قفص تحت درجة حرارة ثابتة (23 درجة مئوية 2 درجة مئوية) ورطوبة (50 بالمائة 10 بالمائة) في دورة خفيفة / مظلمة مدتها 12 12- ساعة (إضاءة مضاءة) من 8: 00 ص حتى 8: 00 م). كان للحيوانات حرية الوصول إلى نظام غذائي قياسي للطعام ومياه الشرب المعقمة في منزل حيوانات SPF (خالٍ من مسببات الأمراض المحددة). أجريت جميع الإجراءات التجريبية تحت إشراف وموافقة أكاديمية مركز الحيوانات التجريبية التابع لمعهد تطوير النباتات الطبية وبما يتفق بدقة مع دليل المعاهد الوطنية للصحة لرعاية واستخدام حيوانات المختبر (الطبعة الثامنة) [37].



2.4 التحليل الكيميائي لل OSD و OSK


2.4.1. تحديد إجمالي محتوى الفلافونويد (TF)


تم قياس محتوى TF بواسطة NaNO {0}} اختبار Al (NO) 3 اللوني وفقًا للمعايير الفنية لاختبار وتقييم الأغذية الوظيفية ، والتي أصدرتها اللجنة الوطنية للصحة وتنظيم الأسرة في جمهورية الصين الشعبية في 2 {{2 0}} 03 ، مع تعديلات طفيفة. باختصار ، تمت إذابة عينة 50 مجم في 40 مل ماء مقطر وتم استخلاص محلول العينة بمقدار 50 مل كلوروفورم ثلاث مرات. بعد ذلك ، تم تخفيف محلول الماء إلى 50 مل وتم امتصاص 2 مل من المحلول المخفف بواسطة 5 جم من راتنج بولي أميد وتم التصفية التتابعية باستخدام 20 مل من الإيثانول بنسبة 70 بالمائة. تم تركيز 70 بالمائة من شطف الإيثانول إلى 10 مل تحت ضغط. تم وضع ثلاثة مل من الشطف المركز في دورق حجمي سعة 10 مل ، ثم تمت إضافة 2 مل من الإيثانول بنسبة 70 بالمائة ، و 0.3 مل من NaNO2 (5 بالمائة) ، و 0.3 مل من Al (NO) 3. بعد 5 دقائق ، يضاف 2 مل من محلول NaOH (1.0 مولار) إلى محلول الخليط ويترك لمدة 6 دقائق. أخيرًا ، تمت إضافة 2.4 مل 30 بالمائة من الإيثانول. تم قياس الامتصاصية مقابل فراغ عند 510 نانومتر باستخدام مقياس الطيف الضوئي UV-VIS التابع لـ UNICO -2012 (شنغهاي ، الصين). تم حساب محتوى الفلافونويد الكلي من منحنى المعايرة باستخدام روتين كمعيار (20-100 مجم / لتر). تم الإبلاغ عن النتائج على أنها ملغ من مكافئ روتين لكل ملغ من العينات.


Echinacoside of Cistanche

2.4.2. تحديد إجمالي محتوى البوليفينول (TP)


تم تحديد محتوى TP باستخدام طريقة Folin - طريقة Ciocaiteu مع تعديل طفيف [38]. باختصار ، تم خلط عينة 5 0 مجم مع 25 مل من 5 {6}} بالمائة من محلول الميثانول ، ثم 0.5 مل من محلول العينة ، و 0.3 مل من كاشف Folin-Ciocaiteu و 10 مل من كربونات الصوديوم (10 بالمائة) بشكل كافٍ مختلط ، ثم تم تعديل الحجم إلى 25 مل بالماء المقطر. تم السماح للخليط بالوقوف عند 50 ْم في الظلام لمدة ساعة واحدة. تم قياس الامتصاصية عند 765 نانومتر. تم تحضير منحنى معايرة لحمض الجاليك. تم التعبير عن النتائج على شكل مجم من مكافئات حمض جاليك لكل مجم من العينات.


2.4.3. تحديد Isoquercitrin و Quercetin -3- O-Gentiobiose


تم إجراء القياس الكمي لكل من isoquercitrin و quercetin {0} O-gentiobiose بواسطة HPLC-UV باستخدام منحنى معايرة من خمس نقاط (r 2=0. 999) في نطاق 5-5 {{23 }} 0 ميكروغرام / مل. تم إذابة Isoquercitrin و quercetin -3- O-gentiobiose (5 مجم ، على التوالي) والعينات (10 مجم) في 10 مل ميثانول ، على التوالي. تم ترشيح جميع الحلول من خلال 0. 45- ميكرومتر من polytetrafluoroethylene Fifilters قبل تحليل HPLC. تم استخدام مضخة Waters 600 HPLC مع كاشف Waters 2489 للأشعة فوق البنفسجية / المرئية لفصل المركبات من خلال عمود الطور العكسي (Thermo synize aQ ، 4.6 مم 250 مم ، 5 ميكرومتر) بمعدل زميل 1 مل / دقيقة. يتكون الطور المتحرك من الأسيتونيتريل (أ) و 0.1 في المائة من حمض الأسيتيك في الماء (ب). كان برنامج الشطف المتدرج على النحو التالي: 10 بالمائة A عند 0 دقيقة وخطيًا حتى 40 بالمائة في 40 دقيقة ، و 90 بالمائة عند 41 إلى 50 دقيقة ، و 10 بالمائة عند 51-65 دقيقة. كان الطول الموجي للكشف عن الأشعة فوق البنفسجية 354 نانومتر وتم ضبط درجة حرارة العمود عند 25 درجة مئوية. تم تحديد المركبات من خلال المقارنة مع وقت الاحتفاظ بالمعايير وقياسها من خلال حساب المنطقة الواقعة تحت المنحنى بالمعايير الخارجية.


2.4.4. تحديد محتوى السكريات الكلية (TPS)


تم تحديد محتوى TPS باستخدام طريقة حمض الفينول والكبريتيك [39،4 0]. باختصار ، تمت إذابة عينة 8 0 مجم في 50 مل من الماء المقطر ، ثم تمت إزالة البروتين بالطريقة المتوحشة (محلول العينة: كلوروفورم: كحول N- بيوتيل=20: 4: 1). بعد ذلك ، تمت إضافة كمية أربعة أضعاف من الإيثانول إلى المحلول اللزج الناتج لترسيب مستخلص السكاريد الخام. تم طرد محلول الإيثانول عند 617.4 ميكروغرام لمدة 30 دقيقة للحصول على المادة المترسبة. تم غسل الراسب على التوالي باستخدام الإيثانول والأسيتون والإيثر ، وتم إذابته في 250 مل من الماء المقطر. بعد ذلك ، تم خلط 0.1 مل من محلول عديد السكاريد مع 0.9 مل من الماء المقطر ، و 1 مل 5 بالمائة من محلول الفينول ، و 5 مل من حمض الكبريتيك في أنبوب اختبار ، وحفظها في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة. تم قياس الامتصاصية عند 490 نانومتر باستخدام مقياس الطيف الضوئي UV-VIS التابع لـ UNICO -2012 (شنغهاي ، الصين). تم إنشاء منحنى معايرة الجلوكوز ، وتم تحديد محتوى TPS من معادلة الانحدار لمنحنى المعايرة. تم التعبير عن النتائج بالملجم من معادلات الجلوكوز لكل ملجم من العينات.


2.5 في فحوصات مضادات الأكسدة المختبرية


تم الكشف عن قدرة مضادات الأكسدة لكل من OPD و OSK و OSD من خلال ثلاث طرق ، بما في ذلك {0}} ثنائي فينيل -2- picrylhydrazyl (DPPH) ، وتقليل الطاقة المضادة للأكسدة (FRAP) ، وتقليل الطاقة ، وفقًا للأدبيات [19،41] مع تعديل طفيف. تم استخدام ترولوكس كعنصر تحكم إيجابي ، وتم التعبير عن النتائج على أنها قدرة مضادات الأكسدة المكافئة لـ Trolox. نظرًا لأن OPD يتكون من OSK و OSD ، لإلقاء الضوء على المكونات النشطة لقرون البامية ، تم استخدام تركيز OSK و OSD كمكافئ لـ OPD. وفقًا للاختبارات الأولية ، كانت نطاقات تركيز OPD و ODS و OSK 0. 0 {{1 0} 4 - 0. 8 ، {{17 }}. 0 {{2 0}} 32 - 0. 64 و 0. 0 0 0 8 - {{4 0}}. 16 مجم / مل لفحص DPPH ؛ 1. 0 - 4. 0 ، 0 .8-3.2 و {{5 0}}. 2–0.8 مجم / مل لفحص FRAP ؛ و 0.1-4 ، 0.08-3.2 و 0.02-0.8 ملغم / مل لخفض مقايسة القدرة ، على التوالي لمقايسة DPPH ، محلول العينة (50 ميكرولتر) بنطاق نسبي (0.004-0.8 مجم OPD / مل ، 0.0032-0.64 مجم OSK / تم خلط مل و 0.0008-0.16 مجم OSD / مل) بمحلول DPPH (100 ميكرولتر ، 1.28 × 10 مول / لتر) لقياس نشاط إزالة الجذور الحرة (A1) و 95 بالمائة من الإيثانول (100 ميكرولتر) للتحكم. (A2). تم خلط الماء المقطر (50 ميكرولتر) مع محلول DPPH (100 ميكرولتر) للفراغ (A0). تم قياس الامتصاصية عند 517 نانومتر بعد خلط المحاليل وحفظها في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة. تم حساب القدرة على تنظيف جذور DPPH باستخدام المعادلة التالية:


Flavonoids of Cistanche

نشاط الكسح (النسبة المئوية) {{0}} [1- (A 1- A2 / {A0] * 100 بالمائة. (1)


FRAP لثلاثة عينات من الحلول (1. 0 - 4. 0 مجم OPD / مل ، 0. 8–3.2 مجم OSK / مل ، و 0. 2– {{1 {18}}}. تم ​​اكتشاف 8 مجم OSD / مل) وفقًا لتعليمات معهد Beyotime للتقنية الحيوية. تم خلط محلول العينة المخفف (5 ميكرولتر) مع محلول عمل FRAP (18 0 ميكرولتر) واحتفظ به لمدة 5 دقائق عند 37 درجة مئوية. تم تسجيل امتصاص خليط التفاعل بعد ذلك عند 593 نانومتر. تم تحضير المنحنى القياسي باستخدام FeSO4 ، والذي يتراوح من 0 .15 إلى 1.5 مم. في تحديد القدرة المختزلة ، عينة محلول (0. 5 مل لـ 0. 1-4 مجم OPD / مل ، 0. 0 8–3.2 مجم OSK / مل و 0. 0 2 - {{5 0}. 8 مجم OSD / مل) تم خلطهما مع نفس حجم PBS (0. 2 مول / لتر تم إجراء الحضانة لمدة 20 دقيقة عند 50 درجة مئوية. تمت إضافة حمض Trichloroacetic (0.5 مل ، 10 بالمائة ، وزن / حجم) إلى الخليط ، والذي تم طرده عند 201.6 ميكروجرام لمدة 10 دقائق. بعد ذلك ، تم تخفيف الطبقة العليا من المحلول (0.5 مل) بالماء المقطر (0.5 مل) ثم تمت إضافة كلوريد الحديديك (0.1 مل ، 0.1 بالمائة ، وزن / حجم) إليها. تم قياس الامتصاصية عند 700 نانومتر.



2.6. التأثيرات المضادة للإرهاق في العيادات الخارجية ، والكسور ، والعرق ، والتحليل الكيميائي الحيوي


بناءً على نفس سبب اختبارات مضادات الأكسدة في المختبر ، تم تصميم جرعات مضادات الإجهاد من OPD و OSK و OSD كمجموعات OPD (0. 75 ، 1.5 0 ، و 3. {0. 6}} جم / كجم من وزن الجسم) ومجموعات OSK (0. 6 0 و 1.2 0 و 2.40 جم / كجم من وزن الجسم) ومجموعات OSD (0.15 و 0.30 و 0.60 جم / كجم من وزن الجسم). تم تغذية الفئران بنظام غذائي أساسي في البيئة التجريبية قبل التجارب. بعد 3 أيام من التكيف ، تم تقسيم 120 فأر بشكل عشوائي إلى عشر مجموعات: مجموعة التحكم (CG) ، و 3 مجموعات OPD ، و OSK ، و OSD لكل منها. كل مجموعة لديها 12 فأرا. عوملت المجموعة الضابطة (CG) بماء معقم ، بينما عوملت المجموعات الأخرى بالمستخلص المقابل. تم إعطاء الماء / المستخلصات عن طريق الفم (8: 00 صباحًا) للفئران مرة واحدة يوميًا لمدة 21 يومًا ، وتم إجراء اختبار المجال المفتوح واختبار السباحة المحملة بالوزن (WLST) في اليومين العشرين والحادي والعشرين على التوالي. بعد WLST ، تمت إزالة الفئران من البركة وتجفيفها بمناشف ورقية وإعادتها إلى أقفاصها الأصلية. تم تعمية المجربين في اختبار WLST واختبار الحقل المفتوح عن الظروف التجريبية وتم اختيار الحيوانات بصورة عشوائية قبل المشاركة في التجارب. لتوضيح التأثير المضاد للتعب لـ OSD أثناء الشفاء ، تم تخدير الفئران بالإيثر وتم جمع عينات الدم من كل مجموعة بعد WLST 24 ساعة. تم الحصول على عينات المصل بالطرد المركزي (896 ميكروغرام ، 15 دقيقة ، 4 درجات مئوية). تم تشريح الكبد وغسله بسرعة في محلول ملحي بارد. تم تجميد جميع العينات في النيتروجين السائل وحفظها عند -80 درجة مئوية لمزيد من التحليل.


2.6.1. اختبار المجال المفتوح


للتحقق من تأثيرات OPD و OSK و OSD على الأنشطة الحركية ، تم تقييم الفئران تلقائيًا باستخدام نظام تحكم بمساعدة الكمبيوتر مفتوح المجال تم تطويره بواسطتنا [42،43]. يتكون الجهاز من أربعة خزانات معدنية (قطرها 30 سم وارتفاعها 40 سم) مع كاميرا فيديو مثبتة في الأعلى. أجريت التجارب في غرفة هادئة وأضيئ الجهاز بمصدر ضوء 120 لوكس على السقف. بعد ساعة واحدة من الجرعات ، تم وضع كل فأر في وسط الخزان المعدني وسمح له بالاستكشاف بحرية لمدة دقيقتين وتم حساب المسافة المقطوعة في 4 دقائق ، وهو مؤشر للنشاط الحركي ، باستخدام البرنامج. تم اختبار أربعة فئران في وقت واحد.


Cistanche can relieve chronic fatigue syndrome symptoms

2.6.2. اختبار السباحة المحملة بالوزن (WLST)


تم إجراء WLST للحث على التعب وفقًا للمنهجية الموصوفة سابقًا مع تعديل طفيف [19 ، 44 ، 45]. بعد ساعة واحدة من الجرعات ، تم تحميل الفئران بألواح الرصاص التي تم تثبيتها في نفس الموضع من ذيولها وتزن حوالي 3 بالمائة من وزن جسمها. ثم أُجبرت الفئران المحملة بالوزن بشكل فردي على السباحة في مستقبلات أسطوانية (قطرها 40 سم) ، والتي كانت مملوءة بالماء (25 × 1 درجة مئوية) على عمق 30 سم. تم تصنيف الإرهاق على أنه فقدان للحركات المنسقة وفشل في الصعود إلى السطح خلال 10 ثوانٍ ، وتم تسجيل وقت السباحة على الفور. تم استبدال مياه المسبح بعد كل جلسة.



2.6.3. تحليل المعلمات البيوكيميائية المتعلقة بالتعب


تم تحضير المصل لتقدير نيتروجين اليوريا في الدم (BUN) وحمض اللاكتيك في الدم (BLA). تم تحضير الكبد لتحديد مكافئات malondialdehyde (MDA) ، ديسموتاز الأكسيد الفائق الكلي (SOD) ، الجلوتاثيون بيروكسيديز (GSH-Px) ، والجليكوجين الكبدي (HG). تم تحديد جميع المعلمات البيوكيميائية باستخدام الأطقم المتاحة تجاريًا ، وتم امتثال جميع الإجراءات لتعليمات الشركة الصانعة. باختصار ، تم تحديد محتوى HG باستخدام كاشف الأنثرون عند 620 نانومتر ، بينما تم تحديد BLA باستخدام كاشف نيتروترازوليوم كلوريد أزرق عند 530 نانومتر. تم تقييم BUN بواسطة اليورياز باستخدام طريقة الإنزيم المقترن بالجلوتامات ديهيدروجينيز عند 640 نانومتر. تم قياس نشاط GSH-PX في نظام مقترن عن طريق قياس انخفاض نوكليوتيد ثلاثي الفوسفوبيريدين (NADPH) عند 340 نانومتر. استند اختبار نشاط SOD على قدرته على تثبيط أكسدة O2 المنتج من نظام زانثين - زانثين أوكسيديز. تم تعريف وحدة واحدة من نشاط SOD على أنها الكمية التي تقلل الامتصاص عند 450 نانومتر بنسبة 50 بالمائة. تم تحديد محتوى مكافئات MDA عند 532 نانومتر من خلال التفاعل مع TBA لتشكيل منتج مستقر للون.


2.7. تحليل احصائي


تم إجراء التحديدات الكيميائية في ثلاث نسخ وتم التعبير عن النتائج كقيم متوسطة. تم إجراء فحوصات مضادات الأكسدة في ثلاث نسخ وتم التعبير عن النتائج على أنها قيم متوسطة - انحرافات معيارية. تم تحليل بيانات السلوك والكيمياء الحيوية بواسطة البرنامج الإحصائي SPSS (SPSS 19. 0 Inc. ، Chicago ، IL ، USA). تم استخدام تحليل التباين أحادي الاتجاه (ANOVA أحادي الاتجاه) مع اختبار الفرق الأقل أهمية (LSD) للمقارنة بين المجموعات. قيم P أقل من 0. 05 اعتبرت ذات دلالة إحصائية. تم التعبير عن النتائج على أنها متوسط ​​\ u200b \ u200b الخطأ المعياري للمتوسط ​​(SEM).


3. النتائج


3.1. التحليل الكيميائي لل OSK و OSD


كما هو موضح في الجدول 1 ، كانت محتويات TF و TP في OSD أعلى بكثير من تلك الموجودة في OSK ، وفي الوقت نفسه ، كان محتوى TPS في OSD أقل بكثير من محتوى OSK. تم اكتشاف مركبات isoquercitrin و quercetin -3- O-gentiobiose فقط في OSD باستخدام HPLC (كما هو موضح في الشكل 1).


image

image

3.2 نشاط مضادات الأكسدة في المختبر لـ OPD و OSK و OSD


كما هو مبين في الجدول 2 ، تم إثبات نشاط مضادات الأكسدة لـ OPD و OSD بواسطة DPPH و FRAP وتقليل فحوصات الطاقة ، وأظهر OSD نشاطًا مضادًا للأكسدة أفضل بكثير من OPD. ومع ذلك ، أظهر OSK تأثيرًا ضعيفًا في تقليل مقايسة الطاقة وعدم وجود تأثير في اختبارات DPPH و FRAP. لذلك ، كان OSD هو الجزء النشط من قرون البامية للنشاط المضاد للأكسدة



image


3.3 التأثيرات على النشاط الحركي لـ OPD و OSK و OSD


تم اختبار الأنشطة الحركية للفئران في اليوم الثاني 0 بعد معالجتها بـ OSD. كما هو مبين في الشكل 2 ، أدت جرعة عالية من مجموعات OSD (0. 6 جم / كجم) إلى تقليل المسافة الإجمالية للفئران في البيئة الجديدة بشكل ملحوظ مقارنة بالمجموعة الضابطة (ص=0. 04). ومع ذلك ، لم يلاحظ أي آثار كبيرة لمجموعات أخرى على المسافة الإجمالية. أظهرت هذه النتائج أن قرون البامية وبذورها ليس لها تأثير مثير على الجهاز العصبي المركزي. علاوة على ذلك ، يمكن استنتاج أن OSD قد يكون لها تأثير مهدئ طفيف بجرعة عالية (0.6 جم / كجم).



image


3.4. التأثيرات على وقت السباحة الحصري لـ OPD و OSK و OSD (WLST)


كما هو مبين في الشكل 3 ، بعد استكمال علاج OPD و OSK و OSD لمدة 21 يومًا ، يمكن للعلاج OPD (3 جم / كجم) و OSD (0. 3 و 0. 6 جم / كجم) يطيل وقت سباحة الفئران بشكل ملحوظ ، والذي امتد إلى 57.84 ˘ 12.37 و 46.51 5.82 و 7 0. 0 5 ˘ 12. 0 7 دقائق (p <0 .="" 0="" 5،="" p=""><0. 0="" 5="" and="" p=""><0. {{7="" 0}}="" 1)="" ،="" على="" التوالي="" ،="" أطول="" بكثير="" من="" ذلك="" في="" المجموعة="" الضابطة="" (15.2="" 0="" ˘="" 1.49="" دقيقة).="" وفي="" الوقت="" نفسه="" ،="" لم="" تظهر="" معالجة="" opd="" (0.="" 75="" و="" 1.5="" جم="" كجم)="" و="" osd="" (0.15="" جم="" كجم)="" و="" osk="" (0.6="" و="" 1.2="" و="" 2.4="" جم="" كجم)="" زيادة="" كبيرة="" في="" وقت="" السباحة="" في="" الفئران="" (="" 14.73="" ˘="" 1.28="" و="" 23.96="" ˘="" 3.70="" و="" 27.34="" ˘="" 5.72="" دقيقة="" على="" التوالي)="" بالمقارنة="" مع="" مجموعة="" التحكم="" (ص="0." 897="" ،="" ص="0." 398="" و="" ص="0." 268="" ،="" على="" التوالي="" )="" ،="" ولكن="" osd="" (0.15="" جم="" كجم)="" أظهرت="" اتجاهًا="" لزيادة="" وقت="" السباحة="" ،="" لكنها="" لم="" تكشف="" عن="" اختلاف="" كبير="" (ص="0." 225).="" علاوة="" على="" ذلك="" ،="" أظهرت="" anovas="" أحادية="" الاتجاه="" اختلافات="" كبيرة="" في="" الوقت="" المستنفد="" للسباحة="" للفئران="" بين="" المجموعات="" (f="" (3="" ،="" 40)="12." 839="" ،="" p=""><0.001). أظهر="" وقت="" السباحة="" للجرعة="" العالية="" من="" مجموعة="" osd="" (0.6="" جم="" كجم)="" فرقًا="" ملحوظًا="" مقارنة="" بمجموعة="" الجرعة="" المتوسطة="" (0.3="" جم="" كجم)="" (ع="0." 019)="" ،="" ولوحظت="" نفس="" النتيجة="" بين="" 0.="" 3-="" جم="" كجم="" و="" 0.="" 15-="" مجموعات="" جم="" كجم="" (ص="0." 034)="" ،="" مما="" يدل="" على="" أن="" osd="" يمكن="" أن="" يطيل="" وقت="" السباحة="" المرهق="" بطريقة="" تعتمد="" على="">

image

3.5 تأثير OSD على المعلمات البيوكيميائية في الفئران بعد اختبار السباحة المحملة بالوزن


نتيجة اختبار السباحة المحملة بالوزن الذي أظهره ، يمكن أن يطيل OSD بشكل ملحوظ الفئران في السباحة. ومع ذلك ، لم يظهر علاج OSK زيادة كبيرة في وقت السباحة في الفئران. لذلك ، تم تحديد المعلمات البيوكيميائية فقط على الفئران المعالجة OSD.


3.5.1. تأثير OSD على BLA و BUN و HG


كان الاختلاف في محتوى BLA و BUN و HG بين المجموعات مهمًا (BLA: F (3، 4 0)=8. 257، p <{{1 0}}.="" {{="" 2="" 0}="" 0="" 1؛="" bun:="" f="" (3،="" 4="" 0)="8." 596،="" p=""><0. {{3="" {{32}="" }}}}="" 0="" 1؛="" hg:="" f="" (3،="" 36)="6." 96="" 0،="" p=""><0. {{4="" 0}}="" 0="" 1).="" كما="" هو="" موضح="" في="" الجدول="" 3="" ،="" كانت="" مستويات="" bla="" و="" bun="" في="" مجموعات="" osd="" أقل="" بشكل="" ملحوظ="" من="" تلك="" الموجودة="" في="" المجموعة="" الضابطة="" بعد="" 24="" ساعة="" من="" اختبار="" السباحة="" المحملة="" بالوزن="" (bla:="" p=""><0. 0="" 5،="" p=""><0. 05="" و="" p=""><0.01 لـ="" 0.15="" و="" 0.3="" و="" 0.6="" جم="" كجم="" على="" التوالي="" ؛="" bun:="" p=""><0.01 لـ="" 0.15="" و="" 0.3="" و="" 0.6="" جم="" كجم).="" كانت="" مستويات="" hg="" في="" مجموعات="" osd="" أعلى="" بشكل="" ملحوظ="" مقارنة="" بالمجموعة="" الضابطة="" (p=""><0.05 ،="" p=""><0.01 و="" p=""><0.01 لـ="" 0.15="" ،="" 0.3="" و="" 0.6="" جم="" كجم="" ،="" على="">


image


3.5.2. تأثير OSD على GSH-PX و MDA و SOD


كانت الاختلافات بين أنشطة SOD و GSH-PX وما يعادل MDA بين المجموعات ذات دلالة (MDA: F (3، 4 0)=8. 355، p <0. {{18}="" }="" 0="" 1؛="" sod:="" f="" (3،="" 42)="9." 876،="" p=""><0. 0="" 0="" 1؛="" gsh-px:="" f="" (="" 3،="" 4="" 0)="7." 959،="" p=""><0. 0="" 0="" 1).="" كما="" هو="" موضح="" في="" الجدول="" 4="" ،="" كان="" مكافئ="" mda="" في="" مجموعات="" osd="" أقل="" بشكل="" ملحوظ="" من="" مجموعة="" التحكم="" بعد="" اختبار="" السباحة="" المحملة="" بالوزن="" (p=""><0. 0="" 1="" ،="" p=""><0. {="" {45}}="" 1="" و="" p=""><0. 0="" 1="" لـ="" 0.="" 15="" و="" 0.3="" و="" 0.6="" جم="" كجم="" على="" التوالي).="" علاوة="" على="" ذلك="" ،="" كانت="" مستويات="" sod="" و="" gsh-px="" في="" مجموعات="" osd="" أعلى="" بشكل="" ملحوظ="" مقارنة="" بمجموعة="" التحكم="" (sod:="" p=""><0.01 ،="" p=""><0.01 و="" p=""><0.01 ؛="" gsh-px:="" p=""><0.05 ،="" p=""><0.01 و="" p="">< 0.01="" لـ="" 0.15="" و="" 0.3="" و="" 0.6="" جم="" كجم="" على="">


image



4. مناقشة


تعتبر حجرة البامية غير الناضجة من الخضروات الصحية التي يتم استهلاكها في معظم مناطق العالم. أفادت دراسات سابقة أن قرون البامية غير الناضجة لها تأثيرات مضادة للأكسدة ومضادة للإجهاد [25 ، 46] ، لكن مكوناتها النشطة وآلياتها المحتملة لم تكن واضحة. من أجل التحقيق في الأنشطة المضادة للأكسدة والمضادة للإجهاد في قرون البامية ، قمنا بتقسيم قرون البامية الطازجة إلى بذور وجلود وحصلنا على OSD و OSK و OPD من خلال عملية الاستخراج ، ثم نشاط مضادات الأكسدة في المختبر من OSD و OSK و تم الكشف عن OPD باستخدام DPPH و FRAP وتم دراسة التأثير المضاد للتعب في الجسم الحي لـ OSD و OSK و OPD باستخدام اختبار السباحة المحملة بالوزن. أظهرت نتائجنا أن OSD لا يمتلك نشاطًا جيدًا مضادًا للأكسدة في المختبر فحسب ، بل يطيل أيضًا وقت السباحة للفئران بشكل ملحوظ مقارنة بمجموعة التحكم ، بينما لم يظهر OSK أي تأثير في كليهما. الوقت المستنفد للسباحة هو قياس مباشر يعكس بموضوعية قدرة الجسم على التحمل [47] ، ويرتبط تعزيز القدرة على التحمل بفترات السباحة الطويلة. لذلك ، يجب استنتاج الجزء المضاد للأكسدة ومضاد التعب من العيادات الخارجية كبذوره. علاوة على ذلك ، في هذه الدراسة ، يمكن أن يؤدي OSD (0. 3 {{1 0} ، 0.60 جم ​​/ كجم) إلى إطالة وقت سباحة الفئران بشكل ملحوظ ، وقد تكون الجرعات البشرية المكافئة لبذور البامية 0.9 ~ 1.8 جم / كجم (4.5 ~ 8.9 جم / كجم لقرون البامية) وفقًا لمساحة سطح الجسم [48]. يمكن الوصول إلى هذه الجرعات من خلال حصة بشرية من الخضار. ومع ذلك ، لا تزال المكونات النشطة للبامية غير واضحة. أظهرت نتائج التحليل الكيميائي في هذه الدراسة أن محتوى البوليفينول في OSD يبلغ حوالي 24 ضعف ما هو موجود في OSK ، لكن محتوى السكريات في OSK أقل بكثير من محتوى OSK (الجدول 1).


Moreover, total flavonoids content and two compounds of isoquercitrin and quercetin-3-O-gentiobiose were only detected in OSD and were not detected in OSK (Table 1). It has been proven that okra seeds contained epigallocatechin oligomers, catechin, and its oligomers, isoquercitrin, quercetin-3-O-gentiobiose, and other catechin and quercetin derivatives [27–29]. Furthermore, previous studies have reported that polyphenols like catechin and flavonoids like quercetin possess anti-fatigue activity due to their antioxidant activity [35,36,49–51]. Therefore, we deduced that polyphenols and flavonoids of OSD might be the antioxidant and anti-fatigue constituents. As for the reason that the effect of OPD was less than the effect of OSD, it might be that the high content of mucilaginous polysaccharides can affect the assimilation of polyphenols and flavonoids in OPD, which needs to be researched in the future. When it comes to the anti-fatigue mechanism of OSD, an open-field test showed that OSD had no central nerve stimulation in mice, which proved that the anti-fatigue of OSD was not through central excitation. Apart from this, it was likely that OSD possessed a slight sedative effect in high doses (>0. 6 جم / كجم). هناك حاجة إلى مزيد من البيانات لإثبات ذلك لأن الانخفاض الطفيف في الحركة يمكن أن يكون أيضًا نتيجة لانخفاض الدافع للاستكشاف أو تأثير محتمل للقلق. ومع ذلك ، في هذا البحث ، تم استخدام اختبار المجال المفتوح لاستبعاد احتمال قيام OSD بنشاط مضاد للإرهاق من خلال تأثير مثير على الجهاز العصبي المركزي ، ولم تظهر بيانات أكثر لإثبات التأثير المهدئ للـ OSD. علاوة على ذلك ، فقد ثبت أن أنواع الأكسيد التفاعلي المفرط (ROS) التي يتم إنتاجها أثناء التمرينات الشاقة هي المكون الرئيسي للإجهاد البدني. يمكن أن يؤثر ROS المفرط على العمليات الأيضية والأنزيمية المختلفة من خلال مهاجمة الأحماض الدهنية المتعددة غير المشبعة لإنتاج MDA ويؤدي إلى خلل في الأغشية الحيوية [13،52].


وبسبب هذا ، لا يؤثر ROS فقط على النشاط الأنزيمي أثناء عمليات اقتران الإمداد بالطاقة والإثارة والتقلص بشكل مباشر ، ولكنه يؤدي أيضًا إلى تسريع تراكم النفايات بما في ذلك BLA و BUN. علاوة على ذلك ، يعد المستوى المتزايد من BLA سببًا مهمًا للإرهاق بسبب انخفاض درجة الحموضة في الأنسجة ، ويشير المحتوى الأعلى من BUN إلى انخفاض القدرة على التحمل. لذلك ، لا يمكن فقط تعزيز القدرة على التحمل أثناء ممارسة الرياضة ولكن أيضًا تخفيف التعب البدني وتعزيز التعافي من خلال تعزيز نشاط أنظمة مضادات الأكسدة الأنزيمية بما في ذلك SOD و GSH-PX ، أو المكمل المباشر لمضادات الأكسدة. في هذه الدراسة ، يشير تحديد المعلمات البيوكيميائية التي أجريت بعد 24 ساعة من اختبار السباحة إلى أن علاج OSD أدى إلى انخفاض كبير في مستويات BLA و BUN في الدم ، و MDA في الكبد ، وزيادة مستويات HG ، و SOD ، و GSH في الكبد أثناء التعافي من التعب ، والذي أثبت أن OSD يمكن أن يخفف من التعب الجسدي ويعزز الشفاء. بالنظر إلى نتائج فحوصات مضادات الأكسدة في المختبر في بحثنا ، يمكن استنتاج أن OSD لعبت التأثير المضاد للإرهاق ليس فقط عن طريق تنظيف الجذور الحرة مباشرة ولكن أيضًا من خلال تعزيز أنشطة إنزيمات مضادات الأكسدة بما في ذلك SOD و GSH-PX.


23

انقر فوق الصورة لـ Cistanche Uk لمكافحة التعب

5. الاستنتاجات


في الختام ، أشارت الدراسة الحالية إلى أن OSD هو الجزء المضاد للإجهاد من البامية ، ومن المرجح أن تكون البوليفينول والفلافونويد من المكونات النشطة لـ OSD بسبب نشاطها المضاد للأكسدة. ومع ذلك ، فإن التعب هو ظاهرة معقدة ، والدراسة الحالية حول آليات مكافحة التعب في البامية أولية للغاية. لا تزال هناك حاجة إلى مزيد من التفاصيل في المستقبل.



مراجع


1. شودري ، أ. Behan، PO التعب في الاضطرابات العصبية. لانسيت 2004 ، 363 ، 978-988. [CrossRef]

2 - بيلواردو ، إن. Westerblad، H.؛ مودو ، جي ؛ كازابونا ، أ. بروتون ، ياء ؛ كانيجليا ، جي ؛ Pastoris ، O. ؛ جراسي ، ف. Ibáñez، CF تفكيك الموصل العصبي العضلي وإجهاد العضلات في الفئران التي تفتقر إلى neurotrophin -4. مول. خلية. نيوروسسي. 2001 ، 18 ، 56-67. [CrossRef] [PubMed]

3 - ثاراكان ب. Dhanasekaran ، M. ؛ براون بورغ ، جلالة الملك ؛ Manyam، BV Trichopus zeylanicus يكافح التعب بدون نشاط محاكاة الأمفيتامين. فيتوثر. الدقة. PTR 2006 ، 20 ، 165–168. [CrossRef] [PubMed]

4 - هوانغ ، إل زي ؛ هوانغ ، ب.ك. يي س. تشين ، ل. تجزئة موجهة بالنشاط الحيوي لخاصية مكافحة التعب في acanthopanax senticosus. ياء إثنوفارماكول. 2011 ، 133 ، 213-219. [CrossRef] [PubMed]

5. Pawlikowska، T .؛ شلدر ، تي. هيرش ، ريال ؛ والاس ، ص. رايت ، دي جي. Wessely ، SC دراسة قائمة على السكان للتعب والضيق النفسي. BMJ 1994 ، 308 ، 763-766. [CrossRef] [PubMed]

6. لي ، ج. حالة التعب لدى 2823 شخصًا سليمًا للفحص وعلاقته بالمؤشرات الفيزيائية ؛ جامعة بكين للطب الصيني: بكين ، الصين ، 2013.

7. يهاتا ، ت. كروشي ، الموت بسبب إرهاق. نيبون رينشو Jpn. J. كلين. ميد. 2005 ، 63 ، 1249-1253.

8. استقلاب Layzer ، RB استقلاب العضلات أثناء التعب والعمل. كلين بيليير. إندوكرينول. متعب. 1990 ، 4 ، 441-459. [CrossRef]

9. هولتمان ، إي. بيرجستروم ، م. سبريت ، ليرة لبنانية ؛ سودرلوند ، ك.استقلاب الطاقة والتعب ؛ حركية الإنسان: شامبين ، إلينوي ، الولايات المتحدة الأمريكية ، 1990.

10. Glaister، M. عمل عدو متعدد: الاستجابات الفسيولوجية وآليات التعب وتأثير اللياقة الهوائية. ميد الرياضة. 2005 ، 35 ، 757-777. [CrossRef] [PubMed]

11. نوزاكي ، س. ميزوما ، ح. تاناكا ، م. جين ، جي ؛ طهارة ، ت. ميزونو ، ك. ياماتو ، م. أوكوياما ، ك. إيجوتشي ، أ. أكيموتو ، ك. وآخرون. يحسن ثنائي كبريتيد الثيامين رباعي الهيدروفلوران التمثيل الغذائي للطاقة والأداء البدني أثناء تحميل التعب البدني في الفئران. نوتر. الدقة. 2009 ، 29 ، 867 - 872. [CrossRef] [PubMed]

12. ماكولي ، KK ؛ أوثير ، ب. الزيتون ، ياء ؛ كلارك ، BJ ، 3. إجهاد العضلات: دور التمثيل الغذائي. يستطيع. J. أبل. فيسيول. 2002 ، 27 ، 70-82. [CrossRef] [PubMed]

13. كارتر ، GT التعب. في موسوعة العلوم العصبية ، الطبعة الثانية ؛ أمينوف ، إم جي ، داروف ، آر بي ، محرران ؛ المطبعة الأكاديمية: أكسفورد ، المملكة المتحدة ، 2014 ؛ ص 276 - 280.

14. فيلر ، ك. ليون د. بينيت ، ياء ؛ ماكين ، ن. إلسويك ، ر. Lukkahatai ، N. ؛ Saligan ، LN Association of Mitochondrial Dysfunction and Figig: مراجعة الأدبيات. BBA كلين. 2014 ، 1 ، 12-23. [CrossRef] [PubMed]

15. لين ، واي. ليو ، H.-L. ؛ فانغ ، ياء ؛ يو ، سي إتش. Xiong ، Y.-K. ؛ Yuan، K. التأثيرات المضادة للإرهاق والحماية للأوعية من كيرسيتين -3- O-gentiobiose على الإجهاد التأكسدي والخلل البطاني الوعائي الناجم عن السباحة في الفئران. الغذاء تشيم. توكسيكول. 2014 ، 68 ، 290-296. [CrossRef] [PubMed]

16. إدواردز ، RH وظيفة العضلات البشرية والتعب. العثور على سيبا. سيمب. 1981 ، 82 ، 1-18. [PubMed]

17. جوبتا ، أ. فيج ، جي ؛ شارما ، س. تيركي ، ن. ريشي ، ص. الكركمين Chopra، K. Curcumin ، وهو مضاد أكسدة متعدد الفينول ، يخفف من متلازمة التعب المزمن في نموذج إجهاد الغمر بالماء في الفئران. بيولوجيا المناعة 2009 ، 214 ، 33-39. [CrossRef] [PubMed]

18. Wu، CY؛ تشين ، ر. وانغ ، XS ؛ شين ، ب. ؛ يو ، دبليو. Wu ، Q. أنشطة مضادات الأكسدة والمضادة للتعب لمستخلص الفينول من غلاف بذور Euryale Ferox salisb. وتحديد ثلاثة مركبات فينولية بواسطة lc-esi-ms / ms. الجزيئات 2013 ، 18 ، 11003–11021. [CrossRef] [PubMed]

19. جيانغ د. قوه ، واي. شو ، د. هوانغ ، واي إس. يوان ، ك. Lv، Z.-Q. التأثيرات المضادة للأكسدة والمضادة للإجهاد للأنثوسيانين لتنقية عصير التوت (MJP) وتنقية التوت (MMP) من أنواع مختلفة من فاكهة التوت في الصين. الغذاء تشيم. توكسيكول. 2013 ، 59 ، 1-7. [CrossRef] [PubMed]

20. سوامي ، MSL ؛ نافين ، س. سينجسيت ، د. نيكا ، م. Khanum، F. التأثيرات المضادة للإرهاق لمادة البوليفينول المستخلصة من قشر الرمان. كثافة العمليات J. Integr. بيول. 2011 ، 11 ، 69-72.

21. العبث ، ياء ؛ ثول ، سي ؛ نيهوس ، م. شيفتسوفا ، أ. جلوكر ، إي. بورين ، ت. Hensel، A. الخصائص المضادة للالتصاق لمستخلص الفاكهة Abelmoschus esculentus (البامية) غير الناضجة ضد التصاق بكتيريا هيليكوباكتر بيلوري. بلوس وان 2014 ، 9 ، e84836. [CrossRef] [PubMed]

22 - Tongjaroenbuangam، W .؛ روكسي ، ن. Chantiratikul، P.؛ Pakdeenarong، N.؛ كونغبونتاد ، دبليو. Govitrapong ، P. التأثيرات الوقائية العصبية للكيرسيتين والروتين والبامية (Abelmoschus esculentus Linn.) في الفئران المعالجة بالديكساميثازون. نيوروتشيم. كثافة العمليات 2011، 59، 677–685. [CrossRef] [PubMed]

23. Fan، S.؛ تشانغ ، واي. الشمس ، س. يو ، إل. لي ، م. تشنغ ، ب. وو ، العاشر ؛ يانغ ، ب. لي ، واي. Huang، C. مستخلص البامية يخفض نسبة الجلوكوز في الدم ودهون المصل في الفئران C57Bl / 6 عالية الدهون التي يسببها النظام الغذائي للسمنة. نوتر. بيوتشيم. 2014 ، 25 ، 702-709. [CrossRef] [PubMed]

24. Wang، H.؛ تشين ، جي ؛ رن ، د. يانغ ، ST يتم التوسط في نشاط نقص شحميات الدم في البامية من خلال تثبيط تكوين الدهون وزيادة تنظيم تدهور الكوليسترول. فيتوثر. الدقة. PTR 2014 ، 28 ، 268-273. [CrossRef] [PubMed]

25. Hu، L .؛ يو ، دبليو. لي ، واي. براساد ، إن. Tang، Z. النشاط المضاد للأكسدة للمستخلص ومكوناته الرئيسية من بذور البامية على خلايا كبد الفئران المصابة برابع كلوريد الكربون. بيوميد الدقة. كثافة العمليات 2014 ، 2014 ، 341291. [CrossRef] [PubMed]

26. يانغ ، واي. جين ، زي. ماو ، ص. جين ، ياء ؛ هوانغ ، ياء ؛ Yang، M. دراسة عن التأثير المضاد للتعب لمستخلصات البامية. ذقن. J. وزارة الدفاع. تطبيق فارم. 2012 ، 29 ، 4. [CrossRef]

27. Arapitsas ، P. تحديد وتقدير مركبات البوليفينول من بذور البامية وجلودها. الغذاء تشيم. 2008 ، 110 ، 1041-1045. [CrossRef] [PubMed].

28- Sengkhamparn، N.؛ ساجيس ، إل إم سي ؛ دي فريس ، ر. Schols ، HA ؛ Sajjaanantakul، T.؛ Voragen ، AGJ الخصائص الفيزيائية والكيميائية للبكتين من البامية (Abelmoschus esculentus (L.) Moench). Hydrocoll الغذاء. 2010 ، 24 ، 35-41. [CrossRef]

29. كاراكولتسيديس، بنسلفانيا؛ قسطنطينيد ، بذور البامية SM: مصدر بروتين جديد. J. أجريك. الغذاء تشيم. 1975 ، 23 ، 1204-1207. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhou، Y .؛ جيا ، العاشر ؛ شي ، ياء ؛ شو ، واي. جينغ ، إل. جيا ، ل. اثنان من triterpenes خماسية جديدة من Abelmoschus esculentus. هيلف. شيم. اكتا 2013، 96، 533-537. [CrossRef]

31. جيا ، إل. Zhong ، LJ ؛ لي ، HF ؛ Jing ، LL المكونات الكيميائية في جزء الماء من Abelmoschus esculentus. ذقن. التقليد. عشب. الأدوية 2011 ، 42 ، 2186-2188.

32. جيا ، إل. قوه ، م. جفن العين.؛ Jing، L. المكونات الكيميائية من جزء الأثير البترولي من Abelmoschus esculentus II. Zhongguo Zhong Yao Zazhi 2011 ، 36 ، 891–895. [CrossRef] [PubMed]

33. Jia، L .؛ لي ، HF ؛ Jing ، LL المكونات الكيميائية في مستخلص N- بيوتانول من Abelmoschus esculentus L. Chin. التقليد. عشب. الأدوية 2010 ، 41 ، 1771-1773.

34. جيا ، إل. جفن العين.؛ جينغ ، ليرة لبنانية ؛ Guo ، MM دراسات حول المكونات الكيميائية من جزء الأثير البترولي من Abelmoschus esculentus. J. تشين. ميد. ماطر. 2010 ، 33 ، 1262-1265.

35. كوبوري ، م. ؛ تاكاهاشي ، واي. أكيموتو ، واي. ساكوراي ، م. ماتسوناجا ، أنا ؛ نيشيمورا ، هـ. إيبوشي ، ك. أويكي ، هـ. Ohnishi-Kameyama، M. يقلل تناول كميات كبيرة من الكيرسيتين المزمن من الإجهاد التأكسدي ويحث على التعبير عن إنزيمات مضادات الأكسدة في الكبد والأنسجة الدهنية الحشوية في الفئران. J. Funct. أغذية 2015 ، 15 ، 551-560. [CrossRef]

36. نوغيرا ​​، إل. راميريز سانشيز ، أنا ؛ بيركنز ، جورجيا ؛ ميرفي ، أ. توب ، بي آر ؛ سيبايوس ، ج. فياريال ، FJ ؛ هوجان ، MC ؛ مالك ، MH (-) - يعزز الإبيكاتشين مقاومة التعب والقدرة التأكسدية في عضلات الفأر. J. Physiol. 2011، 589، 4615–4631. [CrossRef] [PubMed].

37. لجنة تحديث دليل رعاية واستخدام حيوانات المختبر. دليل لرعاية واستخدام حيوانات المختبر ، الطبعة الثامنة ؛ مطبعة الأكاديميات الوطنية: واشنطن العاصمة ، الولايات المتحدة الأمريكية ، 2011.

38. Liao، H. دونغ ، دبليو. شي ، X. ؛ ليو ، ح. Yuan، K. تحليل ومقارنة المكونات النشطة وأنشطة مضادات الأكسدة من مقتطفات من Abelmoschus esculentus L. Pharmacogn. ماج. 2012، 8، 156–161. [PubMed]

39. Zhu، Z .؛ Li، N. دراسة حول طريقة تحديد محتوى البامية عديد السكاريد. جيانغسو الزراعية. علوم. 2012 ، 40 ، 2. [CrossRef]

40. DuBois، M.؛ جيلز ، كا. هاملتون ، كيه. ريبيرس ، بنسلفانيا ؛ سميث ، طريقة القياس اللوني لتقدير السكريات والمواد ذات الصلة. شرجي. تشيم. 1956 ، 28 ، 350–356. [CrossRef]

41. Luo، J .؛ لي ، إل. الفصل التحضيري لغليسريد فينيل بروبانويد من لمبات Lilium lancifolium بواسطة كروماتوجرافيا عالية السرعة للتيار المعاكس وتقييم أنشطتها المضادة للأكسدة. الغذاء تشيم. 2012 ، 131 ، 1056-1062. [CrossRef]

42. Dang، H .؛ تشين ، واي. ليو ، إكس. وانغ ، س. وانغ ، إل. جيا ، دبليو. وانج ، واي. نواة سرير السطور الطرفية: علم التشريح ، وعلم وظائف الأعضاء ، ووظائف نواة السرير. بروغ. Neuro-Psychopharmacol. بيول. الطب النفسي 2009 ، 33 ، 1417-1424. [CrossRef] [PubMed]

43. Wang، Q .؛ ماي ، WL ؛ لي ، YH ؛ تشين ، سان جرمان ؛ وانغ ، LW ؛ فنغ ، زد كيو ؛ تشو ، يف. Liu، XM إنشاء نظام معالجة الصور المعتمد على الكمبيوتر للنشاط الحركي للحيوان والتحقق من المسكنات بمسحوق كايكسين. ذقن. التقليد. عشب. الأدوية 2009 ، 40 ، 1773-1779.

44. Qi، B .؛ ليو ، إل. تشانغ ، هـ. Zhou ، G.-X. ؛ وانغ ، س. دوان ، X.-Z. ؛ باي ، X.-Y. ؛ وانغ ، S.-M. ؛ تشاو ، د. التأثيرات المضادة للإرهاق للبروتينات المعزولة من Panax quinquefolium. ياء إثنوفارماكول. 2014 ، 153 ، 430-434. [CrossRef] [PubMed]

45. Tan، W. يو ، KQ ؛ ليو ، ص. اويانغ ، MZ ؛ يان ، MH ؛ لو ، ر. Zhao ، XS نشاط مضاد للتعب للسكريات المستخرجة من الجذر Rehmannia Preparata. كثافة العمليات J. بيول. ماكرومول. 2012 ، 50 ، 59-62. [CrossRef] [PubMed]

46. ​​Wang، J.؛ تشو ، ياء ؛ Tang، G. دراسة عن تأثير مكافحة التعب في البامية. ذقن. J. وزارة الدفاع. تطبيق فارم. 2003 ، 20 ، 2. [CrossRef]

47 ـ كونتارتيز ، RV ؛ مانشادو فدي ، ب. جوباتو ، كاليفورنيا ؛ de Mello، MA Stress Biomarkers في الفئران التي خضعت لتمارين السباحة والجري. شركات بيوتشيم. فيسيول. مول. تكامل. فيسيول. 2008 ، 151 ، 415-422. [CrossRef] [PubMed]

48. Xu، SY المنهجية التجريبية لعلم العقاقير. دار النشر الطبية الشعبية: بكين ، الصين ، 2002.

49. Zanwar، AA؛ بادول ، سي إل ؛ شندي ، PS ؛ هيغده ، MV ؛ Bodhankar، SL دور مضادات الأكسدة لمضادات الاكسدة في الصحة والمرض. في البوليفينول في صحة الإنسان والأمراض. Watson، RR، Preedy، VR، Eds .؛ المطبعة الأكاديمية: سان دييغو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية ، 2014 ؛ ص 267-271.

50. Jadhav، SB؛ Singhal، RS Laccase- الصمغ العربي المتقارن لتحضير أوليغومر الكاتشين القابل للذوبان في الماء مع نشاط مضاد للأكسدة معزز. الغذاء تشيم. 2014 ، 150 ، 9-16. [CrossRef] [PubMed]

51. Liudong، F .؛ فنغ ، زي. دوكسينج ، إس. شيوفانغ ، س. شياولونغ ، ف. Haipeng، L. تقييم الخصائص المضادة للأكسدة والتأثير المضاد للتعب لبوليفينول الشاي الأخضر. علوم. الدقة. مقالات 2011 ، 6 ، 2624-2629.

52. أنت ، L. تشاو ، م. ريجنستين ، جي إم ؛ Ren ، J. في النشاط المضاد للأكسدة في المختبر والتأثير المضاد للإجهاد في الجسم الحي لببتيدات Loach (misgurnus anguillicaudatus) المحضرة عن طريق هضم غراء. الغذاء تشيم. 2011 ، 124 ، 188-194. [CrossRef]


قد يعجبك ايضا