هدفت هذه الدراسة إلى تقييم جدوى خلايا الأسنان بعد علاجات تبييض الأسنان المعتمدة على الكارباميد بيروكسيد باستخدام نموذج مقايسة نضح العاج في المختبر. تم تعريض 30 سنًا لـ 5٪ أو 16٪ CP gel (4 ساعات يوميًا) لمدة أسبوعين. تم قياس محتوى المينا العضوي باستخدام مقياس الجاذبية الحرارية. تم فحص الجدوى المعتمدة على الوقت للخلايا الجذعية لب الأسنان البشرية (HDPSCs) وخلايا الأرومة الليفية اللثوية (HGFCs) بعد التعرض غير المباشر لثلاث تركيزات متاحة تجاريًا من هلام CP باستخدام مقايسة نضح العاج في المختبر أو التعرض المباشر لـ 5 بالمائة H2O2. من خلال تقييم التغيير في مورفولوجيا الخلية وقياس الدم. أنتجت نسبة 5 في المائة و 16 في المائة CP أقل بكثير (ص< 0.001) enamel protein content (by weight) when compared to the control. The organic content in enamel varied accordingly to the CP treatment: for the 16% and 5% CP treatment groups, a variation of 4.0% and 5.4%, respectively, was observed with no significant difference. The cell viability of HDPSCs decreased exponentially over time for all groups. Within the limitation of this in-vitro study, we conclude that even low concentrations of H2O2 and CP result in a deleterious change in enamel protein content and compromise the viability of HGFCs and HDPSCs. These effects should be observed in-vivo.

وفقًا للدراسات ذات الصلة ،cistancheهو عشب شائع يعرف باسم "عشب معجزة يطيل الحياة". مكونه الرئيسي هوالسيستانوسيد، والتي لها تأثيرات مختلفة مثلمضادات الأكسدة، تعزيز وظيفة المناعة المضادة للالتهابات. الآلية بين cistanche وجلدتبييضيكمن في التأثير المضاد للأكسدة من cistancheجليكوسيدات. ينتج الميلانين في جلد الإنسان عن طريق أكسدة التيروزين المحفزالتيروزيناز، ويتطلب تفاعل الأكسدة مشاركة الأكسجين ، لذلك تصبح الجذور الخالية من الأكسجين في الجسم عاملاً مهمًاتؤثرالميلانينإنتاج. يحتوي Cistanche على السيستانوزيد ، وهو مضاد للأكسدة ويمكن أن يقلل من توليد الجذور الحرة في الجسم ، وبالتاليتثبيط إنتاج الميلانين.

انقر فوق ملحق Cistanche Tubulosa للتبييض

لمزيد من المعلومات:

david.deng@wecistanche.com WhatApp: 86 13632399501

يعكس السعي وراء تبييض الأسنان مطالب المرضى بجماليات فائقة والتقدم الكبير في عوامل وتقنيات تبييض الأسنان. على الرغم من أن هذا الإجراء يتم بشكل روتيني لتحسين جماليات الابتسامة ، إلا أنه لا يزال هناك أثران ضاران شائعان تم الإبلاغ عنه في الجسم الحي بعد علاجات تبييض الأسنان الحيوية: تهيج اللثة 1 وحساسية ما بعد الجراحة 2. ترتبط كل من هذه الآثار الضارة بشكل مباشر بالمنتجات الثانوية المنبعثة من تحلل مواد التبييض الهلامية المنشط 3،4. بيروكسيد الكارباميد (CP) هو أحد العلاجات الأكثر استخدامًا لتبييض الأسنان المنزلي الحيوي. CP (CO (NH2) H2O2) عضوي ، أبيض ، بلوري ، وسوف يتحلل إلى بيروكسيد الهيدروجين (H2O2) واليوريا. يتميز H2O2 بوزن جزيئي منخفض وقوة أكسدة عالية ، ويفضل انتشاره السريع في موشورات المينا والمساحات البينية. قد يتفكك H2O2 في الماء ، والأكسجين التفاعلي ، وأنواع الجذور الحرة ، مثل جذور الهيدروكسيل (OH−). في الأسنان ، يُعتقد أن "تفاعل التبييض" يتم بواسطة الجذور الحرة المشتقة من H2O 2- التي تكسر الجزيئات الكبيرة لسن الأسنان (الكروموفورات) إلى جزيئات أصغر ذات خصائص بصرية أقل أو غير ماصة ، الشكل 18 ، 9. لسوء الحظ ، لا يظل H2O2 محصوراً في العاج ويمكن أن يصل إلى حجرة اللب في الغالب عن طريق الانتشار عبر الأنابيب العاجية. لقد تم اقتراح أنه عند الوصول إلى اللب ، سيؤدي H2O2 إلى انخفاض في تكاثر الخلايا ، والتمثيل الغذائي ، والحيوية ، وتقليل قدرة إصلاح اللب ، ونخر الأنسجة ، وأخيراً إحداث ألم في اللب. اقترح تقرير مبكر أنه عند التركيزات المنخفضة ، فإن عوامل التبييض ليست ضارة بتركيبات الأسنان. ومع ذلك ، هناك أدلة متزايدة في المختبر على أنه عند التركيز المنخفض (5 في المائة و 10 في المائة) من CP ، يمكن اكتشاف التأثير الضار للجذور الحرة المشتقة من H2O 2- في جميع أنحاء العاج وعبر حجرة اللب. . على الرغم من أن استخدام عوامل وتقنيات تبييض الأسنان أصبح شائعًا بشكل متزايد ، فلا توجد دراسات حتى الآن في الأدبيات العلمية التي بحثت في التأثير الضار المحتمل للجذور الحرة المشتقة من H2O 2- مباشرة على خلايا الأسنان. إن إجراء مثل هذه التجارب مباشرة على المرضى من شأنه أن يعرض حيوية السن نفسه للخطر لأن المرء يتطلب الوصول إلى الأنسجة اللبية. بالنظر إلى الوظيفة الطبيعية للخلايا الجذعية لب الأسنان في إنتاج الخلايا المولدة للعاج لتكوين عاج تعويضي ولكي يدعم اللب نفسه حيوية السن بالكامل ، فمن الأهمية بمكان تقييم كيفية تأثير هذه المنتجات الثانوية على مجتمع مثل هذا السن. خزان الخلايا الجذعية الحرجة. تهدف هذه الدراسة في المختبر إلى تقييم تأثير التعرض لتركيز مختلف لتبييض الأسنان المنزلي الذي يعتمد على بيروكسيد البيروكسيد الشائع الاستخدام على خلايا الأسنان (HDPSCs و HGFCs) بشكل مباشر أو غير مباشر باستخدام نموذج قرص نضح العاج.

المواد والأساليب

بعد الخلع ، تم تخزين الأسنان مبدئيًا في محلول إيثانول بنسبة 7 0 في المائة لمدة تصل إلى 5 أيام في درجة حرارة الغرفة قبل تنقيتها من الأنسجة الرخوة المتبقية وتخزينها أخيرًا في محلول ثيمول بنسبة 0.1 في المائة عند 4 درجات حتى يتم طلب ذلك. دراسة (لم يتجاوز التخزين شهرين) (الشكل 2 أ-ط).

تحضير العينة لتحليل نسبة البروتين (الوزن) المينا.تم تعيين الأسنان المتسخة بشكل عشوائي لمجموعة التحكم ومجموعتين للعلاج (N {0}} / مجموعة). تم تعيين قوة هذه الدراسة بنسبة 8 0 في المائة مع قيمة احتمالية تبلغ 0. 05 من خلال تقدير حجم العينة الكافي المطلوب في دراسة تجريبية. تم اختيار تركيز مرتفع (16 بالمائة) ومنخفض (5 بالمائة) من الشلل الدماغي لمتابعة تبييض الأسنان المنزلي الذي يوجهه طبيب الأسنان على النحو الموصى به من قبل مجلس أطباء الأسنان الأوروبيين (إرشادات CED-DOC -2012-061- E أغسطس 2012). تم تعريض الأسنان لـ 5٪ أو 16٪ CP gel لمدة 4 ساعات يوميًا لمدة أسبوعين وتم الاحتفاظ بها في لعاب صناعي بين العلاجات. تم الاحتفاظ بالمجموعة الضابطة في لعاب اصطناعي خلال نفس الفترة. تم توزيع هلام البيروكسيد بشكل متجانس في صينية مفردة مكونة من لدن حراري مفرغ (غير متباعدة) لكل سن وتمت إزالة الفائض على النحو الموصى به من قبل الشركة المصنعة. على الرغم من اختلاف أحجام الأسنان ، إلا أننا نضمن أن تاج كل سن كان مغمورًا تمامًا في هلام CP طوال مدة العلاج. تم تحضير اللعاب الاصطناعي باستخدام المكونات التي حددها McKnight-Hanes و Whitford (الجدول 1) وحفظها عند 4 درجات بعد التحضير. بعد العلاج ، تم تقسيم كل سن طوليًا إلى نصفين شدقي ولساني (الشكل 2 أ-ب) التي خضعت لإزالة العاج واللب و EDJ باستخدام أزيز الماس والفولاذ المقاوم للصدأ في قبضة التوربينات السريعة. تم تنظيف غلاف المينا المتبقي (بسمك 0.3-0.5 مم) في ماء منزوع الأيونات بالموجات فوق الصوتية لمدة 30 ثانية (الشكل 2 أ-ثالثًا). تم سحق قذائف المينا بعد ذلك إلى مسحوق ناعم لاختبار قياس الوزن الحراري باستخدام "Spartan، Vibratory Sieve Shaker" (FRITSCH GMBH، Germany) (الشكل 2 أ-4).

تحليل نسبة المينا ‑ البروتين (الوزن) قبل التبييض وبعده.تم إجراء التحليل الوزني الحراري (TGA) باستخدام محلل TGA 5 0 (SHIMADZU CORPORATION ، اليابان). تتكون كل عينة من (4. 00 ± 0.25) مجم من مسحوق المينا موضوعة في بوتقة من البلاتين. تم تشغيل دورة التحليل الحراري الوزني (TGA) بين درجة حرارة الغرفة و 800 درجة ، بمعدل 10 درجات / دقيقة مع تعليق لمدة 1- دقيقة عند 30 درجة. تم إجراء القياسات تحت أكسجين (50 مل / دقيقة). يتم عرض منحنيات التحليل الحراري الوزني (TGA) كنسبة مئوية من فقدان الوزن على المحور Y (نسبة TGA) ودرجة الحرارة (الدرجة) في الشكل 2 ب.

زراعة الخلايا.تأثير CP على بقاء الخلايا الجذعية لب الأسنان البشرية (HDPSCs). تم الحصول على أقراص Dentin من إجمالي 34 سنًا بشريًا. تم قطع الأسنان بشكل عرضي عند مستوى منتصف الإكليل للحصول على سمك عاج قياسي لعينات قرص بسمك 3 مم باستخدام مشراح ماسي (STRUERS ، ACCUTOM -50 ، STRUERS LTD. ، SOLIHULL ، WEST MIDLANDS ، المملكة المتحدة). تم غمر الأقراص في 37 بالمائة من حمض الفوسفوريك في حمام صوتي لمدة تصل إلى 15 ثانية لإزالة طبقة اللطاخة ، تليها دقيقتان من الشطف بالماء المقطر. تم فحص الاتجاه الرأسي لأنابيب العاج وفتحها بواسطة الفحص المجهري الإلكتروني (FLEXSEM 1000. HITACHI HIGH TECHNOLOGIES ؛ TORONTO ، كندا) على أقراص محددة. تم تعديل ألواح البئر المزروعة بالخلايا بإدراج ترانسويل (THERMO FISHER SCIENTIFIC ، WHITBY ، CANADA) لدعم أقراص العاج بسمك 3 مم بقطر<4 mm (Fig. 3). Gaps between the transwell insert walls, and the edges of the dentin discs were sealed using a flowable composite resin material (FILTEK SUPREME ULTRA FLOWABLE RESTORATIVE, 3M ESPE) (Fig. 3a) to ensure that any CP gel deposited on top of the dentin disc could only perfuse through the dentin tubules (Fig. 3b) Additionally, we ensured that the cell growth medium was in direct contact with the dentin disc's underside to mimic the partial pressure in the dentinal tubules. HDPSCs (LONZA WALKERSVILLE, INC. MD 21793-0127 USA) were cultured in the dental pulp stem cell (DPSC) basal medium supplemented with dental pulp stem cell growth supplement (DPSCGS), 50 ml; l-glutamine, 10.0 ml; Ascorbic Acid, 5.0 ml; Gentamicin/Amphotericin-B (GA) (LONZA WALKERSVILLE, INC. MD 21793-0127 USA). Cells from the 4th passage were used with a minimum of 50,000 cells present in each well of the 12 well-plate the day before the treatment. Te HDPSCs sub-cultures and dentin discs were randomly assigned to three treatment groups: exposure to 5%, 10%, 35% CP gel, and control. For the treatment groups, a drop of activated CP gel (using a drop of artificial saliva) at relevant concentrations was directly applied on top of the dentin disc mounted in the transwell insert (Fig. 3a) to simulate the exposure of the HPSCs to the whitening treatment. Artificial saliva was used for the control group. A time assay of HDPSCs survivability was performed for up to 4 h by evaluating the change in cell shape and morphology optically, as presented in Fig. 4a. In Addition, the ratio of live/dead cells at each time point was obtained by hemocytometry after trypan blue staining.

تأثير H2O2 على بقاء الخلايا الليفية اللثوية البشرية (HGFCs). تم تربيتها HGFCs (SCINCELL RESEARCH LAB ORATORIES ، CARLSBAD ، CA 92008 ، الولايات المتحدة) في Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) (SIGMA CHEMICAL CO. ، ST. NY) و 10 بالمائة من المضادات الحيوية عند 37 درجة (ISOTEMP FISHER SCIENTIFIC ، PITTSBURGH ، PA). تم استخدام الخلايا من المقطع الرابع مع ما لا يقل عن 50 ، {8}} خلية موجودة في كل بئر من اللوحة (12 بئراً) في اليوم السابق للعلاج. تعرضت مركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية المستزرعة مباشرة إلى محلول H2O2 بنسبة 5 في المائة ، كما هو مبين في الشكل 5 أ-ط. تم إجراء فحص زمني لاستمرار بقاء مركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية لمدة تصل إلى 4 ساعات من خلال تقييم التغيير في شكل الخلية والتشكل بصريًا كما هو معروض في الشكل 5 أ-2 ، 3 ، 4 ، 5 و 6. بالإضافة إلى ذلك ، تم الحصول على نسبة الخلايا الحية / الميتة في كل نقطة زمنية (30 دقيقة ، 1 ساعة ، 2 ساعة ، 4 ساعات) عن طريق قياس الدم بعد تلطيخ التريبان الأزرق.

تنويه المؤلف.قرر المؤلفون عمدًا عدم الكشف عن العلامة التجارية أو الشركة المصنعة للمنتجات المتاحة تجاريًا المستخدمة في هذه الدراسة التي تم إجراؤها في تقديمنا السابق.

نتائج

نفاذية المينا.يوضح الشكل 2 ب منحنى قياس الوزن الحراري النموذجي (TGA) لتغير الوزن مع درجة حرارة عينة المينا المختارة. يظهر هذا التغيير بشكل أكثر وضوحًا في منحنى DrTGA (المشتق الأول لمنحنى TGA) ، مما يمثل أكبر معدل لتغير الكتلة عند درجة T =464. أظهرت مجموعة المعالجة بنسبة 16 بالمائة CP تباينًا عضويًا بنسبة 4. 0 بالمائة ، بينما أظهرت مجموعة المعالجة بنسبة 5 بالمائة CP تباينًا بنسبة 5.4 بالمائة (الشكل 2 ج) بدون اختلاف كبير. أظهرت كلا المجموعتين العلاجيتين انخفاضًا ملحوظًا (ص<0.001) enamel protein content by weight following CP treatment when compared to the control group (~50% on average).

HDPSCs.بعد مرور 24 0 دقيقة ، تعرض HDPSCs ، التي تعرضت لجميع علاجات CP ، مظاهر مورفولوجية خلوية غير أصلية (دائرية) عند مقارنتها بمجموعة التحكم (عدم التعرض لـ CP). تم تأكيد موت الخلية عن طريق عد قياس الدم باستخدام صبغة التريبان الزرقاء (الشكل 4 أ). يعرض الشكل 4 ب المخططات المجهزة للنسبة المئوية للخلايا الحية / الميتة مع مرور الوقت لمجموعة التحكم (بدون تعرض CP) (الشكل 4 ب-1) وتركيزات هلام CP الثلاثة (الشكل 4 ب-2 ، 3 و 4). كان هناك انخفاض أسي في عدد الخلايا الحية المتبقية مع مرور الوقت لمجموعات العلاج الثلاث. من خلال رسم النسبة المئوية للخلايا الحية / الميتة بمرور الوقت (الشكل 4 ب) ، من الممكن احتواء الانحلال الأسي على عدد الخلايا الحية المتبقية. عند حساب ثابت الاضمحلال (1 / e أو انخفاض 70 بالمائة في السكان الأصلي) لكل مجموعة ، يبدو أن كلاً من T10 بالمائة CP و T35 بالمائة CP قريبان من بعضهما البعض (27.9 ± 12.5) دقيقة و ( 28.3.6 ± 4.3) دقيقة (الشكل 4 ب -3 و 4) ، على التوالي. في المقابل ، T5 بالمائة CP=(203.4 ± 246.0) دقيقة (الشكل 4 ب-ii).

مركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية.تبدأ مركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية في فقدان مظهرها المورفولوجي بعد 30 دقيقة وتم تأكيد موت الخلايا عن طريق عد قياس الدم باستخدام صبغة التريبان الزرقاء. يمكن تسجيل أكثر من 95 في المائة من موت الخلايا بعد 120 دقيقة من التعرض لـ H2O2. يحدث ثابت الوقت Te 1 / e عند TH2O 2= (24.6 ± 4.6) دقيقة (الشكل 5 ب).

مناقشة

نفاذية المينا.يواجه المينا عوامل التبييض أولاً. ومع ذلك ، يتكون المينا من> 98 في المائة من الطور المعدني هيدروكسيباتيت ، و <2 في المائة من المينا يتكون من البروتين (90 في المائة أميلوجينين ، و 10 في المائة من المينا ، وأميلوبلاستين). تشكل هذه البروتينات غلافًا من المينا حول قضبان المينا في الأسنان الناضجة. أي خسارة في هذه البروتينات ستزيد من نفاذية المينا وتعزز تغلغل الكواشف الخارجية. تشير نتائجنا إلى أن بروتين المينا عرضة للتحلل التأكسدي من المنتجات الثانوية لتفاعل الانهيار CP. يعكس التغير الرئيسي في الكتلة (430-500 درجة) التدهور التأكسدي للمحتوى العضوي للمينا تاركًا المحتوى المعدني للمينا فقط في البوتقة. يعتبر تركيز CP منخفض (5 بالمائة) كافياً لتغيير محتوى البروتين في المينا. لقد ثبت أن عوامل التبييض القائمة على البيروكسيد تحدث تغييرات في نسيج السطح ومورفولوجيا المينا. فيريرا وآخرون أظهر أن 35 في المائة من بيروكسيد الهيدروجين (HP) يؤثر على شكل المينا ، مما ينتج عنه مسامات ، وانخفاضات ، ومخالفات سطحية بدرجات مختلفة 22. تسبب CP على وجه التحديد في تآكل موحد يشبه النقش للمينا السطحية وتحت السطحية بسبب انحلال المعادن وإزالة الكلس. يمكن أن يتسبب أيضًا في انخفاض صلابة المينا وزيادة خشونة المينا 24. لاحظت دراسة المجهر الإلكتروني أن معالجة التبييض باستخدام CP أو HP تسبب في تغييرات سطحية مختلفة ، بما في ذلك تقليل الطبقة المنشورية ، وإزالة المعادن من منشورات المينا ، وزيادة المسامية داخل و بين منشورات المينا 25. لقد وسع نهجنا هذا التمويل حيث أكدنا أن محتوى بروتين المينا قد انخفض أيضًا بشكل كبير ، مؤكدين على فتح المساحات بين المنشورية التي من شأنها أن تعمل كقنوات لاختراق تفاعلات الانهيار CP إلى الجزء الداخلي من السن ، بما في ذلك اللب. ومع ذلك ، نظرًا لأن التغييرات في تكوين المينا يمكن أن تكون قابلة للعكس داخل الجسم الحي ، فإن هذا التغيير في تكوين المينا ليس نهائيًا.

تأثير تبييض الأسنان على HDPSCs و HGFCs. تحدث فرط حساسية الأسنان في حوالي ثلثي المرضى أثناء التبييض الحيوي. يُعزى بشكل أساسي إلى انتشار البيروكسيد في المينا والعاج ، مما يؤدي إلى الجفاف وحركة السوائل اللاحقة في الأنابيب العاجية ، مما يحفز النهايات العصبية ، مما يؤدي إلى الحساسية. يؤدي التعرض المفرط للمنتجات الثانوية المنبعثة من جل التبييض إلى معظم الخلايا إلى الإجهاد التأكسدي. تؤدي الزيادة في مستويات ROS (أنواع الأكسجين التفاعلية) إلى تأثيرات ضارة على العديد من مكونات الخلايا ، بما في ذلك بيروكسيد الدهون ، والتعديلات التأكسدية للبروتين ، وتلف خلايا الحمض النووي. يمكن استخدام ثوابت الاضمحلال للإشارة إلى متى لم تعد الثقافة قابلة للحياة. ومن المثير للاهتمام ، أن التعرض لكل من 10 في المائة و 35 في المائة من CP أثر على ثقافة الخلية بشكل مشابه ، في حين أن التعرض بنسبة 5 في المائة للـ CP يؤثر على الثقافة بدرجة أقل بكثير ، كما ثبت من خلال الخطأ الأوسع في القيمة الثابتة. قد تؤدي ترجمة هذه النتائج في الجسم الحي إلى التخفيف الجزئي لموت الخلايا السريع هذا بسبب ضغط اللب الإيجابي ، وسوائل الأسنان ، والدفاع المتأصل للخلية ضد الإجهاد التأكسدي. كان أحد قيود دراستنا هو عدم التحقيق في التعافي الخلوي والاستجابة المناعية للمضيف بعد التعرض للجذور الحرة المشتقة من H2O 2-.

HDPSCs.من المعروف أن HDPSCs تمثل ثقافة غير متجانسة من أنسجة اللب ، بما في ذلك مجموعة من الخلايا الجذعية الوسيطة. قررنا استخدام هذه الثقافة غير المتجانسة لهذا التحقيق حيث يتم تجنيد الخلايا الجذعية الوسيطة كسلائف لخلايا جديدة شبيهة بخلايا الأرومة السنية ، وهي المسؤولة عن التجديد المركب لب عاج الأسنان بعد تلف الأرومة السنية المميتة كما هو متوقع بعد التعرض لـ ROS. وتشارك الخلايا المولدة للعاج أيضًا في بدء وتطوير وصيانة الاستجابة الالتهابية / المناعية لللب ، والتي تمثل خط الدفاع الأول للمضيف 32. ومن ثم فمن الضروري تقييم بقاء HDPSCs في بيئة شديدة الضرر. تشير نتائجنا إلى أن كلاً من التعرض للهلام بنسبة 10 في المائة و 35 في المائة لقرص العاج يؤثر على HDPSCs بنفس الطريقة (بناءً على ثابت الوقت) كما لو أن الخلايا تعرضت مباشرة لـ 5 في المائة من H2O2 كما هو الحال بالنسبة لمركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية. لا يمكن لقرص العاج (بسمك 3 مم) حجب تغلغل المنتجات الثانوية لتفاعلات الانهيار CP للوصول إلى ثقافة الخلية عندما يتجاوز تركيز CP 5 في المائة ، كما يتضح من قياسات قابلية الخلية للبقاء. يتوافق هذا مع دراستنا السابقة في المختبر 15 ، والتي أثبتت أنه حتى مع وجود عامل تبييض منخفض التركيز (5 بالمائة CP) ، يمكن أن ينتشر البيروكسيد والجذور الحرة عبر العاج إلى أنسجة اللب ، مما يتسبب في تدهور الكولاجين وتقليل الأسنان العضوية. المكونات (أميد الأول وأميد الثالث). أدت جميع بروتوكولات تبييض الأسنان التي تم تقييمها في هذه الدراسة إلى انتشار بيروكسيد عبر المينا وعبر الأسنان ، وهو مرتبط مباشرة بتركيز جل تبييض الأسنان ووقت تطبيقه على العاج. ومع ذلك ، كانت خلايا اللب من الأنسجة البشرية لا تزال حساسة للغاية لجميع بروتوكولات التبييض التي تم اختبارها في هذا التحقيق ، على الرغم من أن الاستجابة إلى 5 في المائة اختلفت عن 10 في المائة و 35 في المائة. أظهرت الدراسات السابقة الإجهاد التأكسدي لخلايا اللب الناجم عن H O بطريقة تعتمد على الوقت / التركيز. في الأسنان الحيوية ، يتسبب الإجهاد التأكسدي في استجابة اللب الالتهابية المرتبطة مباشرة بسماكة المينا وعاج الأسنان المبيضة. دراسة من قبل ساتو وآخرون. أظهر أن الإجهاد التأكسدي داخل الجسم الحي الناتج عن هلام 35 في المائة -H2O2 في أنسجة لب الضواحك البشرية الصغيرة زاد من نشاط البروتينات المعدنية وكاثيبسين السيستين B ، وكلاهما يلعب دورًا أساسيًا في تحلل مصفوفة البروتين. وفقًا لبيانات الدراسة الحالية ، يمكن التقليل من هذه الآثار الجانبية السلبية عن طريق تقصير وقت التلامس مع المينا أو العاج أو تقليل تركيز H2O2 في عوامل تبييض الأسنان. أظهرت العديد من التجارب السريرية أن جل تبييض الأسنان بتركيز H2O2 (15-20 في المائة) المطبق على المينا لمدة 45-60 دقيقة يمكن أن يعزز تغير لون كبير ناتج عن ارتفاع تركيز هلام H2O2 بنسبة 35 في المائة. في هذه الدراسات ، تراوحت نسبة الإصابة بحساسية الأسنان من 24 إلى 78 بالمائة ، وتعتبر خفيفة في الشدة من 35 إلى 37. علاوة على ذلك ، كشفت دراسة إكلينيكية حديثة أن كفاءة التبييض باستخدام المواد الهلامية المنخفضة بنسبة 5 في المائة كانت فعالة مثل تلك التي تحتوي على 10 في المائة من مركب CP38. وبالتالي ، من خلال تقليل تركيز البيروكسيد ووقت التعرض ، من الممكن تنفيذ بروتوكول تبييض الأسنان المنزلي الفعال والأقل عدوانية. ومع ذلك ، هناك حاجة لدراسات في الجسم الحي على الأسنان البشرية الحيوية لتقييم فعالية تبييض الأسنان واستجابات اللب بعد تطبيق بروتوكولات تبييض الأسنان التي تم تقييمها في هذه الدراسة. على الرغم من أن دراستنا لم تكن تنوي تكرار نموذج "داخل الجسم" مثل الأسنان ، فقد أنتجنا نموذجًا بسيطًا للتروية يسهل اختبار تأثير أساليب التبييض على خلايا الأسنان لتقييم قابليتها للبقاء على المدى القصير.

مركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية.تلعب الخلايا الليفية اللثوية البشرية دورًا أساسيًا في بنية الأنسجة والوظيفة والدفاع المناعي للمضيف. تشير بعض التقارير إلى أن H2O2 تسبب في حدوث تهيج وتقرح وحرق وبعض الآثار الضارة على اللثة. تم الإبلاغ عن أن بيروكسيد الهيدروجين عزز تنشيط PKC و ERK 1/2 وقلل من حيوية الخلية. ذكرت دراسة في المختبر أن الهيدروجين المستخدم بتركيزات من 10 إلى 200 ملي مولار يعزز موت الخلايا المبرمج. تم الكشف عن الأحداث المميزة للاستماتة مثل التغيرات المورفولوجية ، بما في ذلك تكثيف الكروماتين ، والتفكك النووي والحمض النووي ، والتي تعتبر سمة مميزة للخلايا التي تخضع لموت الخلايا المبرمج ، في مركبات الهيدروجين HGFCs. في هذه الدراسة ، وجدنا أن 5 في المائة من H2O2 يقلل من صلاحية مركبات الكربون الهيدروكلورية فلورية. لا يؤدي التأثير الفوري لـ H2O2 في قابلية الخلايا الليفية اللثوية إلى إنتاج الأحداث مباشرة في حجرة اللب ولكنه يشير إلى سبب حدوث تهيج اللثة ويدعم الحد من الاتصال المباشر مع اللثة. تم الإبلاغ عن انعكاس تأثير اللثة هذا بعد أسبوعين بنسبة 10 و 16 بالمائة من CP45.

الاستنتاجات

مراجع

1. Strassler، HE، Scherer، W. & Calamia، JR Carbamide peroxide عوامل التبييض في المنزل. تحديثا. ولاية نيويورك دنت. ياء 58 ، 30–35 (1992).

2. Dahl، J. & Pallesen، U. Tooth bleaching - مراجعة نقدية للجوانب البيولوجية. كريت. القس أورال بيول. ميد. 14 ، 292-304 (2003).

3. Gökay، O.، Müjdeci، A. & Algın، E. اختراق البيروكسيد إلى اللب من شرائط التبييض. J. Endod. 30 ، 887-889 (2004).

4. Camargo ، SEA ، Valera ، MC ، Camargo ، CHR ، Mancini ، MNG & Menezes ، MM تغلغل بنسبة 38 بالمائة من بيروكسيد الهيدروجين في حجرة اللب في أسنان الأبقار والأسنان البشرية المقدمة لتقنية التبييض المكتبية. J. Endod. 33 ، 1074-1077 (2007).

5. Toledano، M.، Yamauti، M.، Osorio، E. & Osorio، R. تزيد عوامل التبييض من تحلل الكولاجين الناتج عن البروتينات المعدنية في العاج. J. Endod. 37 ، 1668–1672.

6. الكحطاني ، ر. ، ستون ، س. ، ألماني ، إم ووترهاوس ، ب. مراجعة عن تبييض الأسنان. J. دنت. 100 ، 103423 (2020).

7. بارك ، HJ وآخرون. التغييرات في مينا الأبقار بعد المعالجة بعامل تبييض بنسبة 30 بالمائة من بيروكسيد الهيدروجين. صدمه خفيفه. ماتر. ياء 23 ، 517-521.

8. الفلاح ، HM ، Bertassoni ، LE ، Charadram ، N. ، Rathsam ، C. & Swain ، MV تأثير عوامل تبييض الأسنان على محتوى البروتين والخصائص الميكانيكية لمينا الأسنان. اكتا بيوماتر. 20 ، 120-128.

9. Okonogi، S. et al. تعزيز الاستقرار ونشاط تبييض الأسنان لبيروكسيد الكارباميد بواسطة فيلم الألياف النانوية المغزول كهربائيًا. الأدوية 13 ، 381 (2020).

10. مين ، كانساس وآخرون. يحفز بيروكسيد الهيدروجين أوكسيجين الهيم -1 وعاج الأسنان سيالوفوسفوبروتين mRNA في خلايا لب الإنسان. J. Endod. 34 ، 983-989.

11. Goldberg، M. & Smith، AJ الخلايا والمصفوفات خارج الخلية من العاج واللب: أساس بيولوجي للإصلاح وهندسة الأنسجة. كريت. القس أورال بيول. ميد. 15 ، 13-27.

12. Costa ، CA ، Riehl ، H. ، Kina ، JF ، Sacono ، NT & Hebling ، J. ردود لب الإنسان على تبييض الأسنان في المكتب. جراحة الفم. أورال ميد. عن طريق الفم باثول. راديول عن طريق الفم. إندود. 109 ، هـ 59-64.

13. Kugel، G.، Papathanasiou، A.، Williams، AJ 3rd.، Anderson، C. & Ferreira، S. التقييم السريري لأنظمة تبييض الأسنان الكيميائي والضوء. خلاصة. تابع. تعليم. صدمه خفيفه. 27 ، 54-62 (2006).

14. Goldberg، M.، Grootveld، M. & Lynch، E. الآثار غير المرغوب فيها والضارة لمنتجات تبييض الأسنان: مراجعة. كلين. التحقيق الشفوي. 14 ، 1-10.

19. شيافوني ، آر جيه وآخرون. تأثير عوامل التبييض على نفاذية المينا. أكون. J. دنت. 19 ، 313-316 (2006).

شكر وتقدير

الكاتب الاشتراكات

التمويل

تضارب المصالح

معلومات إضافية

إعادة طبع المعلومات والأذوناتمتاح على الإنترنت.

Pملاحظة الناشرتظل Springer Nature محايدة بشأن المطالبات القضائية في الخرائط المنشورة والانتماءات المؤسسية.

لمزيد من المعلومات: david.deng@wecistanche.com WhatApp: 86 13632399501