تأثير مستخلص Cistanches Herba المائي على فقدان العظام في الجرذ المبيض
Mar 04, 2022
الاتصال: أودري هوaudrey.hu@wecistanche.com
Haidong Liang 1 و * و Fang Yu 2 و Zhihong Tong 1 و Zaiguo Huang 3
1 Hands and feet microsurgery, Dalian Municipal Central Hospital, Dalian 116033, China; E-Mail: tongzhih37@sina.cn
2 School of Medicine, Dalian University, Dalian 116033, China; E-Mail: yufangk7@sina.cn
3 Orthopedics Department, Dalian Municipal Central Hospital, Dalian 116033, China; E-Mail: huangzg41@sina.com
الملخص:لتقييم قدرة مستخلص Cistanches Herba للطب الصيني التقليدي (CHE) على منع فقدان العظام في الجرذ المبيض المستأصل (OVX) ، تم إعطاء مستخلص Cistanches Herba (CHE) داخل المعدة للفئران. تم تخدير إناث الفئران باستخدام بنتوباربيتال صوديوم (40 مجم كجم ، IP) ، وتمت إزالة المبايض بشكل ثنائي. تم تخدير الفئران في المجموعة التي تديرها الصور ، وإجراء عمليات جراحية في البطن ، وخياطتها دون إزالة المبايض. بعد أسبوع واحد من الشفاء من الجراحة ، تم تقسيم الفئران OVX بشكل عشوائي إلى ثلاث مجموعات وعولجت عن طريق الفم باستخدام H2O (مجموعة OVX) أو CHE (100 أو 200 مجم كجم يوميًا) لمدة 3 أشهر. تم التعامل مع المجموعة التي تديرها الصور (ن=8) عن طريق الفم باستخدام H2O. بعد 3 أشهر ، تم فحص الكثافة المعدنية الكاملة لعظام الجسم (BMD) ، والمحتوى المعدني للعظام (BMC) ، ومؤشر النشاط الحيوي للعظام ، ومستويات المعادن في الدم ، وأنشطة إنزيمات الدم المضادة للأكسدة في الفئران التي تم تشغيلها بطريقة الشام ، واستئصال المبايض ، ومستخلص Cistanches Herba. أظهرت النتائج أن علاج مستخلص Cistanches Herba يعتمد بشكل كبير على الجرعة المعتمد على الكثافة المعدنية للعظام (BMD) ، والمحتوى المعدني للعظام (BMC) ، والحمل الأقصى ، والإزاحة عند الحمل الأقصى ، والإجهاد عند الحمل الأقصى ، والحمل عند الكسر التلقائي ، والإزاحة عند الكسر التلقائي ، بالإضافة إلى الإجهاد عند الانقطاع التلقائي ، وأنشطة إنزيمات الدم المضادة للأكسدة ، أدت إلى انخفاض مستويات الكالسيوم والزنك والنحاس في الدم مقارنة بمجموعة OVX. توضح هذه التجربة أن إعطاء مستخلص Cistanches Herba إلى الفئران المبيضية يعكس فقدان العظام ويمنع هشاشة العظام.
الكلمات الدالة:استئصال المبيض. فأر؛ عظم؛ مضادات الأكسدة. سيستانش هربا
1 المقدمة
هشاشة العظام هي مرض الشيخوخة المصاحب لفقدان العظام الذي يحدث غالبًا بدون أعراض حتى يصبح التدهور البنيوي الدقيق كبيرًا لدرجة أن كسر العظام يحدث دائمًا عند النقطة التي يكون فيها انخفاض كتلة العظام أقل مما هو مطلوب لسلامة العظام. هشاشة العظام لها أهمية كبيرة في الرعاية الصحية. على الرغم من انخفاض الكتلة ، فإن العظام طبيعية فيما يتعلق بالتمعدن ولكن من الناحية النسيجية ، هناك انخفاض في سمك القشرة وعدد وحجم ترابيق العظم الإسفنجي الخشن [1-3].
تم إجراء الكثير من الدراسات حول هذا المرض في السنوات الأخيرة. تشير البيانات المتراكمة إلى أن فقدان هرمون الاستروجين عند انقطاع الطمث هو مساهم رئيسي في التسبب في المرض لأن هذا الهرمون هو المنظم السلبي الرئيسي لنشاط ناقضات العظم [4-6] ، وناقضات العظم هي الخلايا الرئيسية المسؤولة عن إعادة تشكيل العظام في هشاشة العظام [7].
هشاشة العظام بعد انقطاع الطمث هي أكثر أمراض العظام الأيضية شيوعًا ، وتتميز بالفقدان السريع لأنسجة العظام المعدنية ، وتعطل البنية التربيقية للعظام ، والتغيرات في الخصائص البلورية للرواسب المعدنية ، مما يؤدي إلى فشل بنيوي (كسر). المواقع الغنية بالعظم الإسفنجي ، مثل الفقرات والورك والساعد البعيد [8-11]. يعتبر نقص هرمون الاستروجين المحدد الرئيسي لفقدان العظام لدى النساء بعد سن اليأس. تم استخدام الفئران والكلاب التي تم استئصال المبيض عليها على نطاق واسع في نماذج هشاشة العظام. في عام 1996 ، تم الإبلاغ عن تأثيرات ibandronate على الكلاب المبيضية [12].
يُصنف Cistanches Herba (CH) ، وهو نبات طفيلي من Cistanche deserticola YC Ma ، كعامل تونسي في الطب التقليدي الشرقي ويستخدم بشكل شائع لعلاج النسيان وفقدان السمع والعقم والإمساك المزمن. CH له أنشطة دوائية مختلفة ، بما في ذلك مضادات مستقبلات الألم ، ومضادة للالتهابات ، وتأثيرات تعزيز المناعة [13 ، 14]. أفادت دراسة سابقة أن Cistanches Herba يمكنها توجيه الخلايا الجذعية اللحمية العظمية (BMSCs) للتمايز إلى بانيات العظم ، مما يعد باحتمالية مواتية لعلاج هشاشة العظام وانفصال الكسور العظمية [15]. Chen et al. [16] ذكرت أن عديدات السكاريد Cistanches Herba قد تعزز انتقال دورة خلايا نخاع العظم واستعادة وظيفة المكونة للدم في الفئران المصابة بفقر الدم في نخاع العظم ، وتسريع تكوين الدم في سلالة الروبروم وسلالة النواة الكبيرة.
في هذه الدراسة ، تم فحص كثافة المعادن في العظام (BMD) ، ومحتوى المعادن في العظام (BMC) ، ومؤشر النشاط الحيوي للعظام ، ومستويات المعادن في الدم ، وأنشطة إنزيمات الدم المضادة للأكسدة في الفئران التي تم تشغيلها بطريقة الشام ، واستئصال المبايض ، و Cistanches Herba لدراسة آثار العلاج. مع مستخلص Cistanches Herba على جودة العظام.
الطب الصيني التقليدي Cistanches Herba extract (CHE)
2. المواد والأساليب
2.1. تحضير مستخلصات Cistanches Herba المائية
تم جمع Cistanches Herba من الصحراء في دوري alxa لمنطقة Nei Monggol (منغوليا الداخلية) المتمتعة بالحكم الذاتي في عام 2010.
تم استخراج ساق Cistanches Herba المجفف بالماء المقطر عند 100 درجة لمدة ساعتين. تم الطرد المركزي للمحلول عند 4000 دورة / دقيقة لمدة 10 دقائق. تمت إزالة المخلفات عن طريق الترشيح وتبخر المرشح المجمع بالتسخين للحصول على التركيز المطلوب (2.1 جم مستخلص مكافئ للنباتات الجافة / مل). كان محصول الاستخراج 13.7 بالمائة (وزن / وزن). تم تخزين المستخلص المائي في 2-8 درجة.
2.2. الحيوانات
تم استخدام 32 أنثى من جرذان Wistar بعمر 3 أشهر ، ووزنها بين 240 و 270 جرامًا في بداية التجربة للدراسة. تمت صيانتها في ظل ظروف معملية قياسية مع دورة مظلمة ومضيئة لمدة 12 ساعة ، مع إمكانية الوصول المجاني إلى طعام الفئران المختبر القياسي وماء الصنبور.
2.3 التجارب على الحيوانات.
تم تخدير إناث الفئران باستخدام بنتوباربيتال صوديوم (40 مجم كجم ، IP) ، وتمت إزالة المبايض بشكل ثنائي. تم تخدير الفئران في المجموعة التي تديرها الصور ، وإجراء عمليات جراحية في البطن ، وخياطتها دون إزالة المبايض. بعد أسبوع واحد من الشفاء من الجراحة ، تم تقسيم جرذان OVX بشكل عشوائي إلى ثلاث مجموعات (ن=8 في كل مجموعة) وعولجت داخل المعدة باستخدام H2O (مجموعة OVX) ، مستخلص Cistanches Herba (CHE) (100 أو 200 مجم كجم) 1 يوميًا) لمدة 3 أشهر. تم التعامل مع المجموعة التي تديرها الصور (ن=8) عن طريق الفم باستخدام H2O.
في اليوم الأخير من الدراسة ، تم وزن الحيوانات والتضحية بها ، وتم جمع عينات الدم في وقت واحد. تم تشريح عظام الفخذ وتخلص من الأنسجة الرخوة لقياس الاختبارات الميكانيكية الحيوية.
تم إجراء جميع التجارب وفقًا لبروتوكولات البحث التي وضعتها لجنة رعاية الحيوان في الصين.
2.4 قياس كثافة العظام
تم تحديد المحتوى المعدني لعظم الفخذ (BMC) وكثافة المعادن في العظام (BMD) باستخدام Hologic QDR {{0} W DXA. تم تكييف الأداة مع وضع الدقة الفائقة مع تباعد الأسطر 0. 0 254 سم ، ودقة الوضوح 0.0127 سم ، وميزاء الموازاة بقطر 0.9 سم. وضعت العظام في طبق بتري. لمحاكاة كثافة الأنسجة الرخوة المحيطة بالعظام ، تم سكب ماء الصنبور حول العظام لتحقيق عمق 1 سم. يتم إعطاء نتائج BMC وللمنطقة التي تم قياسها. يتم حساب كثافة المعادن بالعظام في هذه المنطقة على أنها BMC مقسومة على المنطقة. بالإضافة إلى نتائج إجمالي عظم الفخذ ، تم تحليل المنطقة البعيدة والمتوسطة لعظم الفخذ كمناطق فرعية [17].
2.5 اختبار الميكانيكا الحيوية للعظام
تم الاحتفاظ بعظام عظم الفخذ عند 4 درجات حتى تحديد قوة الانكسار باستخدام 5- kN Flexure Fixture ، تمت تهيئتها لاختبارات الانحناء بثلاث نقاط وتم إرفاقها بجهاز Instron Universal Testing Machine Model 4502 المجهز بـ 10- خلية تحميل kN (Instron ، كانتون ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكية) ، كما هو موضح سابقًا [18]. كانت سرعة التقاطع 50 مم / دقيقة ، وكان معدل أخذ عينات البيانات 10 عينات / ثانية. تم تحديد الحد الأقصى للحمل ، والضغط عند الحد الأقصى للحمل ، والحمل عند الفشل ، والضغط عند الفشل في عظام الفخذ باستخدام برنامج Series IX ، الإصدار 8.08. 00 (Instron).
2.6. التحليل البيوكيميائي
تم قياس مستويات الكالسيوم والزنك والنحاس في الدم عن طريق الامتصاص الطيفي الذري.
بناءً على طريقة King and Armstrong [19] ، تم تقييم نشاط الفوسفاتاز القلوي (ALP) باستخدام فوسفات فينيل ثنائي الصوديوم كركيزة. تمت قراءة اللون الذي تم تطويره عند 510 نانومتر في مقياس طيف ضوئي للأشعة فوق البنفسجية بعد 10 دقائق. تم التعبير عن أنشطة ALP كـ IU / L.
تم تحديد تركيز سوء الغشاء المخاطي في الدم (MDA) باستخدام الطريقة التي وصفها Jain et al. [2 0] ، بناءً على تفاعل TBA. باختصار ، 0. 2 مل من كريات الدم الحمراء أو طاف تم الحصول عليها من الأنسجة ، 0. 8 مل محلول فوسفات (pH 7.4) ، 0. 0 25 مل BHT ، و { {19}} تمت إضافة 5 مل 30 بالمائة من TCA إلى الأنابيب وخلطها. بعد حضانة ساعتين عند 20 درجة ، يطرد الخليط (4000 × جم) لمدة 15 دقيقة. بعد ذلك ، تم أخذ 1 مل من المادة الطافية وإضافتها إلى كل أنبوب ، ثم 0.075 مل من 0.1 M EDTA و
0. تمت إضافة 25 مل من 1 بالمائة TBA. تم تحضين هذه الأنابيب ذات الأغطية اللولبية المبطنة بالتفلون عند 90 درجة في حمام مائي لمدة 15 دقيقة وتبريدها إلى درجة حرارة الغرفة. تم قياس الكثافة الضوئية عند 532 لتركيز MDA في الدم.
تم تحديد نشاط الجلوتاثيون بيروكسيديز (GSH-Px) وفقًا لطريقة لورانس وبورك [21]. يتكون خليط الفحص من 2. 0 مل من محلول فوسفات 75 ملي مولار (الرقم الهيدروجيني 7. 0) ، 5 0 ميكرولتر من 6 0 ملي مولار جلوتاثيون ، {{15} } .1 مل من 3 0 وحدات / مل اختزال الجلوتاثيون ، 0. 1 مل من 15 ملي مولار EDTA ، و 0.1 مل من 3 ملي مولار NADPH والكمية المناسبة من طاف الأنسجة إلى الحجم النهائي 3.0 مل . بدأ التفاعل بإضافة 0.1 مل من 7.5 ملي مولار H2O2. تم تسجيل معدل تغير الامتصاصية أثناء تحويل NADPH إلى NADP plus بشكل طيفي عند 340 نانومتر لمدة 3 دقائق. تم التعبير عن نشاط GSH-Px للأنسجة على شكل ميكرولتر من NADPH مؤكسد إلى NADP بالإضافة إلى بروتين 1 مجم.
تم تحديد نشاط ديسموتاز الفائق (SOD) في الدم وفقًا لطريقة Sun et al. [22]. يعتمد مبدأ الطريقة على تثبيط اختزال نيتروبلو تترازوليوم (NBT) باستخدام نظام أوكسيديز زانثين زانثين كمولد للأكسيد الفائق. تم تقييم النشاط في طاف 10000 جم من مستخلصات الميثانول / الكلوروفورم (5/3 ، حجم / حجم) من متجانسات الأنسجة (10 بالمائة). تم تعريف وحدة واحدة من SOD على أنها كمية الإنزيم التي تسبب تثبيطًا بنسبة 50 بالمائة في معدل تقليل NBT.
تم قياس نشاط الكاتلاز (CAT) باستخدام طريقة أبيي [23]. تمت إضافة المصل إلى كفيت يحتوي على 2.89 مل من محلول فوسفات 5 0 مليمول / لتر (درجة الحموضة 7. 0). بدأ التفاعل بإضافة 0. 1 مل من 30 مليمول / لتر H2O2 المحضر حديثًا لجعل الحجم النهائي 3.0 مل عند 25 درجة. تم قياس معدل تحلل H O عند 240 نانومتر لمدة 5 دقائق على مقياس الطيف الضوئي. تم تعريف وحدة واحدة (U) من CAT على أنها كمية الإنزيم المطلوبة لتحلل 1 نانومول من H O في الدقيقة ، عند 25 درجة ودرجة الحموضة 7.8.
2.7. تحليل احصائي
تم التعبير عن النتائج التجريبية بمتوسط ± SD لثمانية حيوانات في كل مجموعة. تم تحليل المعلمات الكيميائية الحيوية إحصائيًا باستخدام تحليل أحادي الاتجاه للتباين ANOVA ، متبوعًا باختبار المقارنة المتعددة لـ Dunnett (DMCT). P- قيمة<0.05 was="" considered="" statistically="">
3. النتائج
انتهت صلاحية حيوانين أثناء الدراسة. وبالتالي ، كانت أعداد المجموعات في ختام الدراسة كما يلي: 8 في مجموعة الضبط الزائفة ؛ 7 في مجموعة OVX ؛ 7 في مجموعة معالجة CHE (100 مجم كجم / 1 يوميًا) ، و 8 في مجموعة معالجة CHE (200 مجم كجم / 1 يوميًا). بعد يومين من العملية ، كان تناول الطعام والماء للفئران أقل بقليل مما كان قبل العملية. لا يوجد حيوان يعاني من العدوى والتشبع. لم يلاحظ أي آثار سلبية واضحة سريريا في الفئران.
قبل العملية ، لم يكن هناك فرق كبير (p> {0}}. 0 1) في وزن جسم الجرذان بين المجموعات. كان وزن الجسم لمجموعة OVX أقل بشكل ملحوظ (p <0. 0="" 1)="" من="" وزن="" المجموعة="" الصورية="" (الجدول="" 1).="" أدى="" تناول="" مستخلص="" cistanches="" herba="" بجرعة="" 1="" 0="" 0="" و="" 200="" مجم="" كجم="" يوميًا="" بشكل="" ملحوظ="" (p=""><0.05) إلى="" زيادة="" وزن="" جسم="" الفئران="" في="" المجموعة="" المعالجة="" بـ="" che="" (100="" و="" 200="" مجم="" كجم="" يوميًا).="" أظهرت="" البيانات="" التي="" تم="" الحصول="" عليها="" من="" الحيوانات="" أن="" هناك="" فروق="" ذات="" دلالة="" إحصائية="" بين="" كثافة="" المعادن="" بالعظام="" و="" bmc="" لمجموعة="" ovx="" والتحكم="" الشام="" (p=""><0.01). كما="" كان="" متوقعًا="" ،="" أدى="" تناول="" مستخلص="" cistanches="" herba="" بجرعة="" 200="" مجم="" كجم="" إلى="" زيادة="" كبيرة="" في="" كثافة="" المعادن="" بالعظام="" و="" bmc="" للمجموعة="" المعالجة="" بـ="" che="" (p=""><0.05 ؛="" p=""><>
4. مناقشة
هشاشة العظام هي واحدة من أكثر الاضطرابات شيوعًا المرتبطة بنقص هرمون الاستروجين والشيخوخة. يؤدي انقطاع الطمث إلى ارتفاع معدل دوران العظام ، وعدم التوازن بين تكوين العظام وارتشاف العظام ، وفقدان العظام الصافي. يعود فقدان العظام الناجم عن نقص هرمون الاستروجين في المقام الأول إلى زيادة ارتشاف عظم ترقق العظم في كل من البشر وحيوانات التجارب [24].
على الرغم من أن هشاشة العظام تؤثر على كل من الرجال والنساء الأكبر سنًا ، إلا أن النساء بعد سن اليأس كن موضع التركيز الأساسي لهشاشة العظام [25 ، 26]. النقص الدراماتيكي في الهرمونات الأنثوية هو العامل الأكثر أهمية لهشاشة العظام عند النساء بعد سن اليأس. نموذج الفئران OVX هو الأكثر شيوعًا في الأبحاث حول هشاشة العظام بعد سن اليأس [27 ، 28] ، حيث ينتج عن استئصال المبيض زيادة في ارتشاف العظم على تكوين العظام في البداية ويسبب فقدان العظام. تسبب عملية OVX زيادة كبيرة في وزن الجسم والتي يمكن أن تكون بمثابة دليل لتقييم نجاح العملية [29]. في نهاية الدراسة الحالية ، تم تخفيض أوزان الجسم لمجموعة OVX بشكل ملحوظ مقارنة بأوزان المجموعة الوهمية ، ومنع العلاج بمستخلص Cistanches Herba هذه الانخفاضات تمامًا. نفترض أن OVX تسبب في إزعاج فسيولوجي شديد أثر على تناول طعام الفئران. بعد ذلك ، تم تقليل وزن الجسم لمجموعة OVX بشكل ملحوظ.
تم وصف كثافة المعادن في العظام على أنها مجرد مقياس بديل لقوة العظام [30] ؛ ومع ذلك ، فإن الخصائص المعمارية الدقيقة هي علامة ظهرت حديثًا لتقييم التأثير الحقيقي للعلاج على جودة العظم التربيقي. على الرغم من أن انخفاض كتلة العظام هو عامل خطر رئيسي للكسر [31] ، فإن الحفاظ على بنية العظام التربيقية يساهم بشكل كبير في قوة العظام وقد يقلل من مخاطر الكسور بما يتجاوز كثافة المعادن بالعظام و BMC ، كما يتضح من عدد من الدراسات التي أفادت عن وجود ارتباطات وثيقة بين الهياكل المجهرية الخصائص والقوة الميكانيكية الحيوية للعظام [32،33]. في هذا العمل ، وجد أن كثافة المعادن بالعظام و BMC تختلف اختلافًا كبيرًا بين المجموعات الصورية والمجموعات المستأصلة للمبيض. عزز العلاج بمستخلص Cistanches Herba بشكل كبير كثافة المعادن بالعظام و BMC في الفئران OVX. بالإضافة إلى ذلك ، لا تزال إدارة مستخلصات Cistanches Herba تزيد بشكل كبير من الحمل الأقصى المعتمد على الجرعة ، والإزاحة عند أقصى حمل ، والإجهاد عند أقصى حمل ، والحمل عند الكسر التلقائي ، والإزاحة عند الانقطاع التلقائي ، والإجهاد عند المجموعات المعالجة بالكسر التلقائي CHE مقارنة بمجموعة OVX. أشارت هذه النتائج إلى أن عظام الفخذ من الفئران التي تغذت على مستخلص Cistanches Herba كان لها حمل أعلى عند الفشل وبالتالي يمكن أن تكون أكثر مقاومة لكسور الإجهاد. بالإضافة إلى ذلك ، كان لدى الفئران في مجموعة OVX مستويات أعلى في الدم من الكالسيوم والزنك والنحاس مقارنة بتلك الموجودة في المجموعة الصورية. أدت إدارة مستخلص Cistanches Herba إلى خفض مستويات الكالسيوم والزنك والنحاس في الدم في الفئران OVX.
تتفق الفكرة القائلة بأن الحالة المؤكسدة مهمة في هشاشة العظام مع الارتباط الوبائي القوي بين هشاشة العظام وتصلب الشرايين ، وهو مرض يلعب فيه الإجهاد المؤكسد دورًا رئيسيًا. علاوة على ذلك ، فقد لوحظ مؤخرًا أن هناك ارتباطًا في النساء بين الإجهاد التأكسدي (يقاس بواسطة مؤشر حيوي للإجهاد التأكسدي ، 8- iso-PGF 2-) [34] ، ومستويات مضادات الأكسدة [35] ، و كثافة المعادن في العظام. تشير الدراسات السريرية التي فحصت العلاقة بين الأسكوربات الغذائي و / أو التكميلي وكتلة العظام لدى البشر أيضًا إلى وجود ارتباط مع زيادة كتلة العظام [36].
نظرًا لأن MDA لديه تفاعل عالي تجاه المجموعات الأمينية ، فإنه يثبط تخليق الأحماض النووية والبروتينات كما أنه يعطل الإنزيمات [37 ، 38]. وبالتالي ، فإن الانخفاض في إنزيمات الفخذ المضادة للأكسدة التي لوحظت بعد OVX قد يكون بسبب زيادة بيروكسيد الدهون. تشارك إنزيمات مضادات الأكسدة في نظام الدفاع ضد الأنسجة التي تتوسطها الجذور الحرة أو التلف الخلوي. أنها تستقلب إما الجذور الحرة أو وسيط الأكسجين التفاعلي للمنتجات غير الراديكالية. تشمل هذه الإنزيمات عائلة من الإنزيمات المعتمدة على الجلوتاثيون [39]. في هذه الدراسة ، أبلغنا عن انخفاض كبير في مستويات الإنزيمات المضادة للأكسدة. SOD ، GSH-Px ، CAT في دم الفئران المبيضية. تشير هذه النتائج إلى أن نقص هرمونات المبيض يرتبط بالفشل في مكافحة الإجهاد التأكسدي. تستخلص إدارة Cistanches Herba أنشطة SOD و GSH-Px و CAT المعتمد على الجرعة بشكل كبير في فئران OVX. يبدو أن هذه النتائج تشير إلى تأثير وقائي أفضل لمستخلص Cistanches Herba ضد الإجهاد التأكسدي الناجم عن OVX.
باختصار ، مستخلص Cistanches Herba فعال في منع فقدان العظام الناجم عن نقص هرمون المبيض كما يتضح من BMD لعظم العظام وقيم BMC ومستويات الدم Ca و Zn و Cu. بما أن هشاشة العظام مرتبطة بالإجهاد التأكسدي ، فإن الدراسات من هذا النوع تشهد على أهمية القيم العلاجية لمضادات الأكسدة. نفترض أن مستخلص Cistanches Herba يحسن جودة العظام ربما جزئيًا من خلال تعزيز أنشطة إنزيمات OVX المضادة للأكسدة وتقليل العناصر المعدنية للعظام.
مستخلص Cistanches Herba: يمنع فقدان العظام
مراجع
1. كاناليس ، إي. جيوستينا ، أ. Bilezikian ، JP آليات العلاجات الابتنائية لهشاشة العظام. إنجل. جيه ميد. 2007 ، 357 ، 905-916.
2. Heaney، RP؛ ريكير ، ر. Saville، PD تغييرات سن اليأس في إعادة تشكيل العظام. مختبر J. كلين. ميد. 1978 ، 92 ، 964-970.
3. مكنمارا ، إل إم ؛ إديرفين ، AGH ؛ ليونز ، سي جي ؛ السعر ، C. ؛ شيفر ، ميغابايت ؛ وينان ، هـ. Prendergast ، PJ قوة الأنسجة التربيقية العظمية الإسفنجية من الجرذان العادية والمستأصلة المبيض والمعالجة بالأدوية على مدار الشيخوخة. العظام 2006 ، 39 ، 392-400.
4. Compston، JE العلاج بالهرمونات البديلة. كلين. روماتول. 1997 ، 11 ، 583-596.
5. Meiner، SE ترقق العظام المتوسع: خيارات العلاج اليوم. حال. ممارسة التمريض 1999 ، 7 ، 26-31.
6. Aubin، JE؛ Bonnelye، E. Osteoprotegerin، و ligand الخاص به: نموذج جديد لتنظيم تكون الخلايا العظمية و ارتشاف العظام. هشاشة العظام. كثافة العمليات 2000 ، 11 ، 905-913.
7. رودمان ، جي دي التطورات في بيولوجيا العظام: ناقضة العظم. إندوكر. القس 1996 ، 17 ، 308-332.
8. الكستناء ، CH ، الثالث. العلاج الدوائي: كالسيتونين ، البايفوسفونيت ، والستيرويدات الابتنائية. في هشاشة العظام: المسببات والتشخيص والإدارة. Riggs ، BL ، Melton ، LJ ، III ، Eds. ؛ ليبينكوت-رافين: فيلادلفيا ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية ، 1995.
9. Quan، Q.-M .؛ وو ، دبليو. لي ، Y.-X. ؛ كاي ، Q.-R. الاختلاف في محتويات إكارين وفلافونويد لأنواع بارنوورت. جيه ميد. النباتات الدقة. 2010 ، 4 ، 1176-1181.
10. دو ، XG ؛ عموم ، هرتز ؛ تشانغ ، قبرصي ؛ تشانغ ، هاي ؛ ليو ، جلالة الملك ؛ تشين ، زي. ينظم مستخلص Zeng ، XY Zingiber officinale التثبيط المناعي الناجم عن أشعة g في الفئران. جيه ميد. النباتات الدقة. 2010 ، 4 ، 1647–1655.
11. Paschalis، EP؛ بيتس ، ف. ديكارلو ، إي. مندلسون ، ر. Boskey ، التحليل المجهري AL FTIR لخزعات القمة الحرقفية البشرية من عظم هشاشة العظام غير المعالج. كالسيف. كثافة العمليات الأنسجة. 1997 ، 61 ، 487-492.
12. موتوي ، ح. كانوه ، ح. أوغاتا ، إس. كاواموكي ، ك. شيكاما ، هـ. فوجيكورا ، ت. الوقاية من فقدان العظام بواسطة البايفوسفونيت YM175 في الكلاب التي تم استئصال المبيض مع تقييد الكالسيوم الغذائي. JPn. فارماكول. 1996 ، 71 ، 239-246.
13. Lin، LW؛ هسيه ، MT ؛ تساي ، FH ؛ وانغ ، WH ؛ نشاط Wu ، CR المضاد للألم والمضاد للالتهابات الناجم عن Cistanche deserticola في القوارض. ياء إثنوفارماكول. 2002 ، 83 ، 177-182.
14. وو ، XM ؛ جاو ، XM ؛ تسيم ، كو ؛ Tu ، PF أرابينوجالاكتان معزول من سيقان Cistanche deserticola يؤدي إلى تكاثر الخلايا الليمفاوية المستنبتة. كثافة العمليات J. بيول. ماكرومول. 2005 ، 37 ، 278-282.
15. تسنغ ، جي سي ؛ معجب ، YG ؛ ليو ، جيه آر ؛ Zeng YR يي ، تشيكوسلوفاكيا ؛ Liang Y. دراسة تجريبية للتمايز الاتجاهي للخلايا الجذعية الوسيطة العظمية (BMSCs) إلى بانيات العظم تسترشد بالكيستانش الصحراوي المحتوي على المصل. Zhongguo Gu Shang 2010 ، 23 ، 606-608.
16. تشين ، Z.-W. ؛ Zhu ، B.-D. ؛ Xu H.-Y. دراسة تجريبية لعديد السكاريد الذي يعيش في الصحراء على تكوين الدم المنظم في الفئران المصابة بفقر الدم في نخاع العظم. ذقن. قوس. التقليد. ذقن. ميد. 2007 ، 25 ، 1473–1474.
17. براكاسام ج. يه ، كيه. تشين ، م. كاسترو ماجانا ، م. ليانغ ، كونيتيكت ؛ Aloia، JF تأثيرات هرمون النمو وهرمون التستوستيرون على تكوين العظام القشرية وكثافة العظام في الفئران المسنة التي تم استئصال المبايض. 1999 العظام ، 24 ، 491-497.
18. McClung، JP؛ ستال ، سي إتش ؛ مارشيتيلي ، ل. موراليس مارتينيز ، ن. ماكين ، كم ؛ يونغ ، AJ ؛ Scrimgeour، AG آثار إنزيم الفايتيز الغذائي على زيادة وزن الجسم ، وتكوين الجسم ، والميكانيكا الحيوية للعظام في الفئران النامية التي تتغذى على نظام غذائي منخفض الزنك. نوتر. بيوتشيم. 2006 ، 170 ، 190–196.
19. الملك ، EJ. Armstrong، AR طريقة مناسبة لتحديد نشاط المصل والفوسفاتيز الصفراوي. يستطيع. ميد. مساعد. 1934 ، 31 ، 376-381.
20. جاين ، SK ؛ مكفي ، ر. دويت ، ياء ؛ Herbst ، JJ بيروكسيد غشاء كريات الدم الحمراء والهيموغلوبين الغليكوزيلاتي في مرض السكري. داء السكري 1989 ، 38 ، 1539-1543.
21. لورانس ، RA ؛ Burk ، نشاط RF Glutathione peroxidase في كبد الفئران الذي يعاني من نقص السيلينيوم. بيوتشيم. بيوفيز. الدقة. كومون. 1976 ، 71 ، 952-958.
22. الشمس ، واي. أوبيرلي ، LW ؛ طريقة بسيطة للمقايسة السريرية لأكسيد ديسموتاز. كلين. تشيم. 1988 ، 34 ، 497-500.
23. أبي ، H. Catalase في المختبر. طرق الانزيم. 1988 ، 10 ، 121-126.
24. مظفري ، ز. ؛ أزارنيا ، م. عبد الحميد أنجاجي ، س. تقييم التأثيرات السامة للمستخلص المائي لأوراق نبات Trigonella foenum-graecum على نمو النسيج العظمي الطويل في جنين الجرذ. جيه ميد. النباتات الدقة. 2010 ، 4 ، 1148-1155.
25. Buencamino، MCA؛ سيكون ، أل ؛ جاين ، أ. ثاكر ، HL دراسة قائمة على الملاحظة حول الالتزام بإرشادات علاج هشاشة العظام. صحة المرأة 2009 ، 18 ، 873-881.
26. شميت، مينيسوتا؛ شميت ، ياء ؛ Dören، M. دور النشاط البدني في الوقاية من هشاشة العظام لدى النساء بعد سن اليأس - تحديث. ماتوريتاس 2009 ، 63 ، 34-38.
27. Lelovas، PP؛ زانثوس ، تي تي ؛ ثوما ، جنوب شرقي ؛ كلمات ، GP ؛ Dontasi، IA الفئران المختبرية كنموذج حيواني لأبحاث هشاشة العظام. شركات ميد. 2008 ، 58 ، 424-430.
28 - Ncango، DM ؛ بوهل ، سي إتش ؛ فان ويك ، PWJ ؛ Kock، JLF العقاقير غير الستيرويدية المضادة للالتهابات (NSAIDs) تمنع نمو مسببات أمراض الخميرة. Afr. J. ميكروبيول. الدقة. 2011 ، 5 ، 1123-1125.
29. Fazliana، M.؛ نازيمون ، WMW ؛ قو ، HF ؛ أوستينسون ، CG Labisia pumila ينظم وزن الجسم والأديبوكينات في الفئران المبيضية. ماتوريتاس 2009 ، 62 ، 91-97.
30. Bourrin، S.؛ عمان ، ص. بونجور ، جي بي ؛ Rizzoli، R. استعادة الكثافة والقوة المعدنية لعظم القصبة القريبة ، ولكن ليس بنية العظم الإسفنجي ، بعد العلاج طويل الأمد بالبايفوسفونيت أو العلاج الانتقائي لمستقبلات هرمون الاستروجين في الجرذان المسنة. العظام 2002 ، 30 ، 195-200.
31. Borah، B. دوفرسن ، تي إي ؛ Chmielewski ، بنسلفانيا ؛ الإجمالي ، GJ ؛ برينجر ، MC ؛ يحافظ Phipps، RJ Risedronate على البنية التربيقية ويزيد من قوة العظام في فقرات المبيض المصغر التي تم قياسها بواسطة التصوير المقطعي ثلاثي الأبعاد. J. بون مينر. الدقة. 2002 ، 17 ، 1139-1147.
32. مولر ر. حنان ، م. سميث ، سي ؛ Bauss، F. يحافظ ibandronate المتقطع على جودة العظام وقوة العظام في العمود الفقري القطني بعد 16 شهرًا من العلاج في قرد cynomolgus المبيض. J. بون مينر. الدقة. 2004 ، 19 ، 1787 - 1796.
33. Lane، NE؛ كومر ، جيه إل ؛ ماجومدار ، س. خان ، م. لوتز ، ياء ؛ ستيفنز ، ري ؛ كلاين ، ر. فيلبس ، ك.ف.تأثيرات هرمون الاستروجين الاصطناعي المترافق ، أ (سينستين) على بنية العظام التربيقية وقوتها في نموذج الفئران المبيض المستأصل. كثافة العظام. 2002 ، 13 ، 816-823.
34. Basu، S. مايكلسون ، ك. أولوفسون ، هـ. جوهانسون ، إس. Melhus، H. الرابطة بين الإجهاد التأكسدي وكثافة المعادن في العظام. بيوتشيم. بيوفيز. الدقة. كومون. 2001 ، 288 ، 275-279.
35. Maggio، D.؛ باراباني ، م. Pierandrei ، M. ؛ كريستينا بوليدوري ، م. كاتاني ، م. Mecocci ، P. ؛ سينين ، يو. باسفيكي ، ر. تشيروبيني ، أ. انخفاض ملحوظ في مضادات الأكسدة في البلازما لدى النساء المسنات المصابات بهشاشة العظام: نتائج دراسة مقطعية. J. كلين. إندوكرينول. متعب. 2003 ، 88 ، 1523-1527.
36. Morton، DJ؛ باريت كونور ، EL ؛ شنايدر ، استخدام مكمل فيتامين سي DL وكثافة المعادن في العظام لدى النساء بعد سن اليأس. J. بون مينر. الدقة. 2001 ، 16 ، 135-140.
37. Bird، RP؛ درابر ، HH تأثير مالونالديهيد وأسيتالديهيد على خلايا الثدييات المستزرعة: مورفولوجيا النمو ، وتخليق الجزيئات الكبيرة. J. البيئة. الصحة 1980 ، 6 ، 811-823.
38. عبد الحليم ، ماك التأثير المحتمل لارتفاع الكوليسترول الناتج عن النظام الغذائي للإجهاد التأكسدي على تكوين وخصائص خلايا الدم الحمراء في الأرانب. Afr. J. ميكروبيول. الدقة. 2010 ، 4 ، 836-843.
39. Chaudiere، J .؛ Ferrari-Illiou، R. مضادات الأكسدة داخل الخلايا من الآليات الكيميائية إلى الآليات الكيميائية الحيوية. الغذاء تشيم. توكسيكول. 1999 ، 37 ، 949-962.
