فحص قياس كثافة HPTLC وتحديد الكتلة لتلوث عوامل التبييض الفلورية في دقيق الحبوب

جهة الاتصال: Audrey Hu Whatsapp / hp: 0086 13880143964 البريد الإلكتروني:audrey.hu@wecistanche.com

Yisheng Chen1،2 & Caihong Huang1،2 & Xueming Xu

الملخص

في السنوات الأخيرة ، كانت هناك مخاوف متزايدة بشأن قضايا سلامة الأغذية المرتبطة بهاعوامل التبييض الفلوريةمن مواد التعبئة والتغليف. هنا ، أبلغنا عن تطوير طريقة سهلة وموثوقة مناسبة للتقدير الكمي عالي الإنتاجية وتحديد اثنين من عوامل التبييض الفلورية الشائعة (FWA 184 و FWA 367) في منتجات الحبوب (دقيق القمح والأرز) ، والتي تعتمد على أداء رفيع عالي الأداء. كروماتوغرافيا الطبقة. أولاً ، تم إنجاز تحضير العينة وتنظيفها بسرعة من خلال الاستخلاص الأمثل للسائل الصلبة. تم فصل المستخلصات والمعيار المرجعي بشكل متزامن على ألواح هلام السيليكا ، باستخدام خليط التولوين وخلات الإيثيل (1 0 / 0.3 ، ت / ت) كمرحلة متحركة. بعد ذلك ، تم إجراء القياس الكمي السريع باستخدام قياس الكثافة في وضع الفلورسنت (365HPTLCكمنصة تحليلية متعددة الاستخدامات يمكن أن تحقق توازنًا مثاليًا بين الإنتاجية والبساطة وقابلية الكشف ، وبالتالي فهي مناسبة بشكل خاص لتحليل الطعام الموجه بالشاشات.

الكلمات الدالة HPTLC. قياس الكثافة.عوامل التبييض الفلورية

Cistanche له تأثير تبييض على الجلد

مقدمة

شهدت السنوات الأخيرة ازدهارًا في مواد عبوات الأغذية. من ناحية أخرى ، اجتذبت قضايا سلامة الأغذية المرتبطة بمواد التغليف اهتمامًا عالميًا أيضًا.عوامل التبييض الفلورية(FWAs) اكتسبت اهتمامًا كبيرًا بشكل خاص. كانت جزيئات FWAs قادرة على امتصاص الإشعاع وانبعاث الأضواء المرئية في نفس الوقت ، ويمكن أن يؤدي هذا التحول إلى تعويض اللون الأصفر للمواد ، مما يؤدي إلى ظهور انطباع أبيض مكثف. على هذا النحو ، تم النظر بشكل مكثف في المواد المدمجة مع FWAs للعبوات الغذائية. خاصة بالنسبة لمنتجات الحبوب ، تم استخدام هذه العبوة بشكل مفضل لزيادة جاذبية المستهلك وقبوله. على سبيل المثال ، مستويات عالية بشكل غير طبيعي منFWAsتم العثور عليها في الورق المقوى للفشار والحلويات سريعة التحضير (Jiang et al. 2015). ونتيجة لذلك ، هاجرت FWAs إلى أغذية الحبوب وأدت إلى التلوث ، مما شكل تحديًا جديدًا للصحة العامة.

منذ عقود ، كان الاستقرار المرتفع بشكل ملحوظFWAsأثارت مخاوف شديدة بشأن سُميتها المحتملة. وعلى الرغم من أن التأثير الحقيقي لنماذج FWA على صحة الإنسان لم يكن قاطعًا بعد ، فقد تم إثبات السمية التنموية وتأثير التغيير في التعبير الجيني في الحيوانات النموذجية تجريبيًا (Belliveau et al. 1990؛ Jung et al. 2012) فيما يتعلق بهذه المخاطر المحتملة ، وضعت السلطات المعنية بسلامة الأغذية في جميع أنحاء العالم قيودًا وقيودًا على نفايات الغذاء المرنة القابلة للتهيئة في المواد الملامسة للأغذية.

بهدف تنفيذ هذه المعايير التشريعية ، تم اقتراح مجموعة كبيرة من الأساليب التحليلية ، وفحص التألق بالأشعة فوق البنفسجية أو كروماتوجرافيا العمود (HPLC و الرحلان الكهربي الشعري) ، للكشف عن FWAs (Jiang et al. 2015؛ Wu et al. 2018) . ولكن من وجهة نظر الممارسة ، لم يتم تكييف كل هذه الأساليب الحالية مع مبدأ الفحص الفعال من حيث التكلفة والموثوق به. على سبيل المثال ، عانت طريقة فحص التألق فوق البنفسجي بشكل كبير من الانتقائية الضعيفة. وفي الوقت نفسه ، أظهر التحليل القائم على أنظمة كروماتوغرافيا العمود نقصًا ملحوظًا في البساطة والفعالية من حيث التكلفة. على العكس من ذلك ، فإن كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة عالية الأداء (HPTLC) كانت تفتح أفقًا جديدًا لمنهجية فحص الطعام.HPTLCتم تطويره وتطبيقه في تحليل مكونات الطعام المختلفة ، مما يُظهر مرونة لا مثيل لها مع سد الفجوة بشكل مثالي بين جوانب البساطة والنوعية والموثوقية (Galarce-Bustos et al. 2019 ؛ Li et al. 2018 ؛ Mikropoulou et al. 2019 ؛ Pedan et al. 2018 ؛ Premarathneet al. 2018 ؛ Stanek et al. 2019 ؛ Sun et al. 2018). بهذه الطريقة ، يمكن تحليل العديد من العينات (حتى 40) في وقت واحد مع تحمل مصفوفة غير محدود تقريبًا ، لأن كل لوحة كان يمكن التخلص منها (Li et al. 2019). هذا يعني أنه يمكن توفير طلب تنظيف العينة وصيانة الأجهزة بشكل ملحوظ. كتطبيق للفحص البصري ، أتاح قياس الكثافة قياسًا دقيقًا ودقيقًا لنتائج الفصل على لوحة HPTLC (Lebot et al. 2020). مع التطور السريع لتقنيات الواصلة ، كانت الميزة الأكثر تميزًا لـ HPTLC هي أنه يمكن استخدامها كمنصة تجمع بكفاءة إمكانية استخدام الأدوات التحليلية القوية ، مثل مطيافية رامان المعززة بالسطح (Kang et al. 2019 ؛ Qu et al. 2018 ؛ Wang وآخرون. Liu 2021 ؛ Xu وآخرون 2019) ، واكتشاف الكتلة (Wang et al. 2018a ، b). على هذا النحو ، كان HPTLC عبارة عن صندوق أدوات متعدد الاستخدامات مناسب بشكل خاص لمهام الفحص.

في ظل هذه الخلفيات ، كان الهدف من هذا العمل هو تطوير طريقة فحص سهلة وحساسة لنظم المياه العذبة في عينات مختلفة من دقيق الحبوب ، بناءً على مزيج منHPTLC، وقياس كثافة الفلورسنت (FLD) ، وقياس الطيف الكتلي (MS). بعد تطوير الطريقة ، تم التحقق من أدائها من الناحيتين الكمية والنوعية ، مما يثبت بشكل كبير تفوقها الحقيقي كأداة سهلة للفحص.

المواد والأساليب

المواد

Standards of FWA184 (2,5-bis(5′-tert-butyl-2-benzoxazolyl) thiophene, CAS 7128-64-5, > 99% purity) and FWA367 (1,4-bis(2-benzoxazolyl) napthalene, CAS 5089-22-5, >98٪ نقاء) تم شراؤها من Aladdin (شنغهاي ، الصين). المذيبات العضوية والمواد الكيميائية التحليلية المتدرجة من سيجما الدريتش (شنغهاي ، الصين). ألواح هلام السيليكا 6 0 F254 (الدرجة التحليلية ، سماكة الطبقة 0.1 مم ، مقاس 10 × 20 سم ، الرقم التسلسلي 1.05729.0001) كانت من شركة ميرك (دارمشتات ، ألمانيا). تم شراء ست عينات حبوب فارغة بما في ذلك ثلاث عينات من دقيق القمح وثلاث عينات من دقيق الأرز في السوبر ماركت المحلي. بصرف النظر عن ذلك ، قدم مركز شينزين للأغذية عينات من دقيق القمح والأرز مع تأكيد تلوث FWA.

استخراج cistanche tubulosa

الحلول القياسية

تم تحضير محاليل المخزون ({0}. 01 مجم / مل) من FWA 184 و FWA 367 في أسيتات الإيثيل ، بشكل منفصل أو في الخليط ، وتم تخزينها في الثلاجة (4 درجات). تم تحضير حلول العمل لإنشاء منحنيات المعايرة عن طريق تخفيف المزيد من محاليل المواد إلى 0.0001 مجم / مل.

إعداد عينة

لاستخراج التحليلات من عينات الحبوب ، وخلات الإيثيل ، والأسيتون ، ومخاليطها (نسبة الخلط ، حجم / حجم ، 1 0 / 0 ، 6/4 ، 4/6 و 0 / 1 0) كمذيب للاستخلاص. باختصار ، تم خلط عينة دقيق من 5 جسيريل مع 20 مل من مذيب الاستخلاص ؛ إذا لزم الأمر ، تم دفع 100 أو 50 ميكرولتر من المحاليل (0.01 مجم / مل) من معايير FWA في خليط الاستخلاص للعينات الفارغة ، مما أدى إلى 200 أو 100 ميكروغرام / كجم اصطناعي تلوث اشعاعى. بعد العلاج بالحمام بالموجات فوق الصوتية 30 درجة لمدة 5 دقائق ، تم فصل المعلق بالطرد المركزي لمدة 5 دقائق عند 4 درجات. بعد ذلك ، تم ترشيح 1 مل من المادة الطافية بعناية في محقنة سعة 5 مل وتصفيتها من خلال غشاء ميكرومتر 0. 45- لإزالة الجسيمات الصلبة ، لتجنب انسداد الإبرة.

خطوات HPTLC

تم رش مقتطفات العينات والمعايير المرجعية على شكل نطاقات 6- ممHPTLCلوحات بواسطة Linomat 5 semiautomaticsampler (CAMAG ، سويسرا) مزودة بحقنة 100- ميكرولتر ، بسرعة توصيل تبلغ 1 0 {14}} nL / s و 0. 2 ميكرولتر الجرعة الأولية: كانت مجموعة الشريط في البداية 15 مم من الحافة اليسرى و 10 مم من الأسفل ، مع الفاصل الزمني المحسوب تلقائيًا من بعضها البعض. كانت أحجام التطبيق 10 ميكرولتر لخلاصة العينات الفارغة والمرتفعة ؛ لإنشاء منحنى المعايرة ، تم تطبيق محلول عمل 1 أو 5 أو 10 أو 15 أو 20 ميكرولتر (0.0001 مجم / مل) ، مما أدى إلى تركيزات متدرجة عند 100 و 500 و 1000 و 1500 و 2000 بيكوغرام / نطاق على التوالي. أخذ العينات ، تم شطف المحقنة يدويًا باستخدام أسيتات الإيثيل النقي مرتين بين كل تطبيق لمنع التلوث المتبادل. بعد التطبيق ، تم تسخين الطلاء بواسطة مسخن TLC III (CAMAG ، سويسرا) عند 60 درجة لمدة 2 دقيقة لإزالة بقايا المذيب في نطاقات التطبيق. تم إجراء الكروماتوغرافيا تلقائيًا باستخدام ADC -2 (CAMAG ، سويسرا) ، من أجل تحقيق فصل استنساخه. أولاً ، تم تعبئة كل من خنادق الغرفة النامية بمرحلة ثابتة تتكون من 10 مل من التولوين و 0.3 مل من أسيتات الإيثيل. قبل غمس قاع اللوحة في الطور المتحرك ، كان هناك تحكم في التجفيف لمدة 5 دقائق عن طريق الفقاعات من خلال محلول مائي مشبع MgCl2 إلى الرطوبة النسبية النهائية عند 33 في المائة ، وتشبع الخزان 10 دقائق ، وشرط مسبق للوحة 10 دقائق. تم تثبيت مسافة الانتقال للخط الأمامي للمذيب عند 50 مم.

توثيق اللوحة وقياس الكثافة

بعد التطوير ، تم توثيق الصور الرقمية للوحة المطورة بواسطة نظام تصوير DD7 0 (Biostep ، ألمانيا) مدمج مع كاميرا رقمية Sony EOS7 00 D مضاءة بمصابيح الأشعة فوق البنفسجية 366 نانومتر. بعد ذلك ، تم تقييم نتائج الفصل بطريقة حساسة بواسطة ماسح ضوئي TLC 3 (CAMAG ، سويسرا). لتحديد الطول الموجي العامل لقياس الكثافة ، تم تحديد أطياف الإثارة للتحليل المودعة على صفيحة هلام السيليكا باستمرار من 220 إلى 400 نانومتر باستخدام المصباح D2 & W ، باستخدام مرشح بصري K400. تم إجراء المسح الكمي باستخدام الإعدادات العامة: وضع الفلورسنت ، مصباح الزئبق ، الطول الموجي للإثارة 365 نانومتر ، K400 المرشح البصري ، 3.00 × 0.30 مم بعد الشق الصغير ، سرعة المسح 100 ميكرومتر / ثانية ، ودقة البيانات 100 ميكرون / خطوة. تم التحكم في التشغيل الآلي ومعالجة البيانات بواسطة الإصدار 1.4.4 من برنامج WinCATS.

الاستفادة مناستخراج cistanche tubulosa

HPTLC-MS

بعد قياسات FLD ، تم تحديد النطاقات الإيجابية بشكل أكبر من خلال بصمات أصابع MS ، بوساطة واجهة TLC-MS (CAMAG). مدفوعة بمضخة رباعية ، تمت إزالة النطاقات المستهدفة التي يتم تصورها تحت 366 نانومتر من الإضاءة بتدفق من الأسيتونتريل يحتوي على 0. 1٪ حمض الفورميك ، بمعدل 0. 2 مل / دقيقة لمدة 60 ثانية. مباشرة ، تم حقن eluent في مصدر بالرش الكهربائي وتم تحليله في وقت واحد بواسطة مطياف كتلة ثلاثي رباعي (Quattro Premier XE ، Waters). تم إجراء الحصول على بيانات MS كاملة المسح في وضع ESI plus بالإعدادات التالية: الفولتية الشعرية هي 3.5 كيلو فولت ، والجهد المخروطي 50 فولت ، ومصدر الأيونات درجة حرارة 100 درجة ، ودرجة حرارة الذوبان 400 درجة ، ومعدل تدفق الغاز المذاب 700 لتر / ساعة ، و تدفق غاز مخروطي 50 لتر / ساعة. تم تسجيل الأطياف في نطاقات 50-1000 م / ض.

النتائج والمناقشة

تحسين الكروماتوغرافيا

فيما يتعلق بالقطبية المنخفضة للمركبات المستهدفة ، فقد بدأ تحسين المرحلة المتحركة باختبارات تجريبية باستخدام مذيبات كارهة للماء مختلفة (بما في ذلك الأسيتون والتولوين والهكسان والإيثر البترولي) ومخاليطهم. من الفحص الأولي ، تم العثور على التولوين وحده لإعطاء دقة كافية للمركبات المستهدفة من نماذج عينات التداخل التي بقيت في الغالب في الجزء السفلي من المسار. لزيادة دقة التحليلات ، تمت إضافة كميات مختلفة (1-10 بالمائة) من أسيتات الإيثيل. من المقارنة ، يُعزى ذلك إلى التوازن الهش بين الطور المتحرك (السائل) ، والغلاف الجوي للغرفة (الغاز) ، والمرحلة الثابتة (الصلبة). بكلمة أخرى ، سيتم كسر توازن الطور بمجرد تحريك اللوحة يدويًا. هذا يدل بقوة على أهمية الأجهزة لتكرارHPTLCالتحليلات. بالإضافة إلى ذلك ، تم تقييم قابلية تطبيق شروط الفصل الأمثل من خلال تحليل عينات الحبوب الملوثة صناعياً ، من الشكل 1 أ ، يمكن الاستنتاج أن وجود مصفوفات العينة لم يؤد إلى تباين كبير في النتائج الكروماتوجرافية. لذلك ، تم إصلاح التولوين / أسيتات الإيثيل (1 0 / 0.3 ، ت / ت) كمرحلة متنقلة خلال هذا العمل.

الفحص البصري والكمي FLD

كان الحصول على صورة اللوحة بأكملها أحد المزايا المميزة لـHPTLC، والتي يمكن من خلالها الحصول على ملف تعريف شبه كمي للفصل بسهولة عن طريق الفحص البصري. هنا ، سمح التألق الأصلي المكثف للتحليلات بالقراءة المباشرة لنتائج الكروماتوغرافيا تحت إشعاع 366 نانومتر ، مع حساسية تصل إلى 100 بيكوغرام / نطاق. بعد ذلك ، فقط المقارنة الأفقية بين المسارات يمكن أن تؤدي إلى تقدير مباشر لدرجة تلوث العينة ، والتي كانت مفضلة للغاية في مهام الفحص. علاوة على ذلك ، تم استخدام قياس الكثافة في وضع التألق لأداء مسح المسارات. كانت هذه الخطوة أيضًا فعالة للغاية ، والتي يمكن الانتهاء منها في 2-3 دقائق. بهدف تحديد الطول الموجي المثلى للإثارة لقياس الكثافة ، تم فحص طيف الإثارة (220-400 نانومتر) من المادة التحليلية المترسبة على طبقة هلام السيليكا. كما هو معروض في الشكل. في الشكل 1 ب ، أظهرت ملامح أطياف التحليل في ظروف مختلفة تشابهًا كبيرًا ، حيث أظهرت الإنبعاث الأكثر كثافة عند إثارة 365 نانومتر. لذلك ، تم استخدام ضوء مصباح الزئبق عند 365 نانومتر مع مرشح nmedge 400- (K400). كما هو مبين في الشكل 1 د ، يتضح قابلية تطبيق هذه المعلمات الضوئية من خلال قمم إشارة واضحة لنطاقات التحليل حتى في وجود مصفوفات العينات المستخرجة بشكل مشترك.

التحسين والتحقق من صحة الكميات

الخطية والحساسية

تم التحقق من صحة السعة الكمية للكشف عن قياس الكثافة لأول مرة من حيث الخطية والحساسية. لذلك ، تم إنشاء رسم بياني للمعايرة على أساس 5 مستويات داخل التركيزات من 100 إلى 2000 بيكوغرام / نطاق. تلخيصها في الجدول 1 ، النتائج التي تم الحصول عليها منHPTLC- أظهر FLD خطيًا جيدًا مع معاملات ارتباط مرضية (R 2=0. 9999). بناءً على منحنى المعايرة ، تم حساب حساسية الطرق بما في ذلك حد الاكتشاف (LOD) والتقدير الكمي (LOQ) وفقًا لطريقة DIN 32645 بثقة إحصائية بنسبة 95 بالمائة (Deutsches Institut für Normung 2013). من الحساب ، كان LOD المعبر عنه هو 45 و 52 لـ FWA 184 و FWA 367 ، على التوالي. عند تثبيت حجم التطبيق عند 10 ميكرولتر ، كانت قابلية الاكتشاف هذه تساوي 18 و 21 ميكروغرام / كجم ، على التوالي ، والتي كانت 30- أقل من حد التسامح التشريعي (600 ميكروغرام / كجم) المنصوص عليه في الاتحاد الأوروبي (الاتحاد الأوروبي 2002).

الانتعاش والدقة

قبل تقييم دقة المطورينHPTLC-FLD من خلال تحديد معدلات استرداد المواد التحليلية في عينات الحبوب ، يجب تحسين طريقة الاستخراج المناسبة. استخراج ForFWA في دقيق الحبوب ، Wu et al. اقترح استخدام خليط من ثنائي كلورو ميثان والأسيتون (3/2، v / v) (Wu et al. 2018). فيما يتعلق بالسمية البيئية والسمية المسببة للسرطان لثاني كلورو ميثان ، تم اختبار خليط أسيتات الإيثيل والأسيتون بدلاً من ذلك كمذيب للاستخلاص هنا. كما تم تقديمه بشكل نموذجي في الشكل 2 ، كان من الواضح أن أسيتات الإيثيل النقي كان الخيار الأفضل لاستخراج المركب المستهدف من كلا العينات السيريالية ، مقارنةً بتلك التي تمت بواسطة طريقة Wu et al. (2018). لضمان قابليتها للتطبيق ، تم تمديد طريقة الاستخراج المحسّنة إلى 6 عينات من الحبوب بما في ذلك 3 دقيق قمح و 3 دقيق أرز تم اختبارها مرة أخرى لتجربة استرداد السنبلة. كما تم تلخيصه في الجدول 2 ، كانت معدلات الاسترداد المحسوبة في نطاق 88.7-108.4 في المائة. وفي الوقت نفسه ، وجد أن استنساخ التقدير الكمي من حيث الانحراف المعياري النسبي (النسبة المئوية RSD) لثلاث نسخ أقل من 10.5 في المائة. علاوة على ذلك ، تجدر الإشارة إلى أن البيانات التي تم الحصول عليها كانت تعتمد بشكل ضئيل على العينات المستخدمة ومستويات الارتفاع ، مما يدل على أن المتقدمة يمكن أن يكون التحليل الكمي أداة فحص فعالة لFWAsفي عينات الحبوب بدقة ودقة مقبولتين.

تحديد FWA في عينات الحبوب المعبأة

لمزيد من التقييم لمدى ملاءمة ظروف الاستخراج المحسّنة وHPTLC- الكشف عن الحقول الكُحلية (FLD) ، تم تطبيق الطريقة بشكل نموذجي لتحديد عينتين من الحبوب تحتوي العبوة على نطاقات FWA. ببساطة من الفحص البصري على صورة اللوحة الموضحة في الشكل 3 أ ، كان من السهل جدًا الوصول إلى الاستنتاج بأن كلا عينات الحبوب قد تلوثت بمخلفات FWA. بعد ذلك ، تم إجراء القياس الكمي بواسطة FLDscanning. كما هو معروض في الشكل 3 ب ، يمكن ملاحظة الانتقائية الجيدة للكشف في مخطط الأسنان الذي تم الحصول عليه. كما تم تلخيصه في الجدول 3 ، كانت بقايا التحليلات في كلا منتجي الحبوب ضمن مستوى ميكروغرام / كغ (بحد أقصى 262.8 ميكروغرام / كغ) ، والتي كانت أقل بكثير من حدود الانتقال المحددة (600 ميكروغرام / كغ). ومع ذلك ، فإن الآثار السلبية المحتملة لهذا التلوث لا تزال مقلقة أيضًا ، لأن الآثار الضارة الناجمة عن التعرض المزمن لم تكن كافية بعد.

الاستفادة مناستخراج cistanche tubulosa

التعرف الجزيئي عن طريق بصمات الأصابع

لتحقيق التعريف الكيميائي للعصابات الناتجة عنHPTLCتم دمج اكتشاف MS في الموقع في نهج الفرز كأداة مؤكدة ، تم تسهيله من خلال واجهة TLC-MS القائمة على الرأس. تم غسل المركبات الموجودة في النطاقات المعنية من طبقة هلام السيليكا وقياسها مباشرة بواسطة الرش الكهربائي MS. يلخص الجدول 4 إشارة التشخيص للتحليلات المسجلة من طبقة هلام السيليكا. كان من الواضح أن 363.1 م / ض كانت الإشارة الأيونية الأكثر وفرة لـ FWA 184 ، في حين أن 431.2 م / ض لـ FWA 367. بالتوافق جيدًا مع الأيونات الجزيئية النظرية في الشكل البروتوني ، كانت هذه الإشارات المحددة واضحة بذاتها بشكل مباشر وبالتالي يمكن استخدامها باعتبارها دليل البصمة للتأكيد. علاوة على ذلك ، تم التحقق من قابلية تطبيق هذه الطريقة بشكل مثالي مع وجود نتائج إيجابية في عينات حقيقية. كما هو مبين في الشكل 4 ، أظهرت الإشارات التي تم الحصول عليها تشابهًا جيدًا مع بصمة التحليل ، مما يدل على أنه يمكن تخصيص النطاقات المشتبه بها بشكل لا لبس فيه للمركبات المستهدفة.

الاستفادة مناستخراج cistanche tubulosa

الاستنتاجات

في هذا العمل،HPTLCتم توظيفه بنجاح كمنصة مرنة تجمع بكفاءة الفصل والتحليل الطيفي ، من أجل القياس الكمي السهل وتأكيد تلوث FWA في عينات الحبوب. باستخدام طريقة الاستخراج المحسّنة ، تم تحديد كمية التحليلات في عينات دقيق القمح والأرز بشكل انتقائي ودقيق بواسطة HPTLC-FLD ، مع خطية جيدة و LODs أقل بكثير من حد التسامح. بالإضافة إلى ذلك ، تم ربط النتائج المنفصلة التي تبقى على طبقة الطلاء بتحليل MS في الموقع ، مما يتيح التعرف السريع على الجزيئات للنطاقات الإيجابية في مسارات منفصلة ، وبالتالي ضمان موثوقية نتائج الفحص بشكل لا لبس فيه. تم الاعتراف بشكل متزايد بـ HPTLC. أظهر العمل أن HPTLC كمنصة متعددة الاستخدامات تدمج الكشف الكمي والنوعي بطريقة فعالة من حيث التكلفة يمكن أن تكون أداة قوية تغذي الكيمياء التحليلية.

الاستفادة منمكملات استخراج cistanche tubulosa