ما هي العلاقة بين مستخلص Cistanche Tubulosa ومستويات هرمون الجنس؟

Tian Wang1 و Chen Chen2 و Man Yang1 و 2 و Taiwan Deng2 و Gordon Michael Kirby3 و Xiaoying Zhang1

الملخص

السياق: نباتات الجنسسيستانشهوفمان. عادة ما يتم استخدام et Link (Orobanchaceae) كطب عرقي في شرق آسيا. وقد أظهرت دراسات علم الأدوية ذلكسيستانشيمتلك تأثيرًا شبيهًا بالأندروجين ؛ ومع ذلك ، فإن الآلية الدقيقة غير واضحة.

الهدف: تحدد الدراسة الحالية تأثير مستخلص الايثانولسيستانشتوبولوسا(Schenk) R. وايت الجذع (CTE) علىهرمونالمستوياتوالإنزيمات الستيرويدية للخصية في الفئران. المواد والطرق: تم الكشف عن محتوى جليكوسيد الفينيثانويد من CTE بواسطة القياس الطيفي للأشعة فوق البنفسجية. تم تغذية الفئران بجرعات مختلفة من CTE ({0}. 2 ، 0. 4 ، و 0.8 جم / كجم) عن طريق الإعطاء داخل المعدة لمدة 20 يومًا. تم قياس معاملات الحيوانات المنوية بطريقة التلوين والعد. تم قياس مستوى البروجسترون والتستوستيرون في مصل الدم عن طريق المقايسة المناعية الإشعاعية. تم تقييم مستويات التعبير عن إنزيم انشقاق السلسلة الجانبية للكوليسترول (CYP11A1) ، 17a-hydroxylase / 17 ، 20- لياز (CYP17A1) ، وإنزيم استقلاب الكبد (CYP3A4) في الميكروسوم بواسطة التلوين المناعي الكيميائي أو / و تحليل لطخة.

النتائج: توضح الدراسة أن إعطاء CTE ({0}. 4 و 0. 8 جم / كجم) زاد من عدد الحيوانات المنوية (2. 3- و 2. {{ 7}} طيات) وحركة الحيوانات المنوية (1. 3- و 1. 4- طيات) وانخفاض الحيوانات المنوية غير الطبيعية (0. 76- و 0. {{15} } طيات). كما تم زيادة مستوى هرمون البروجسترون والتستوستيرون في الدم في الفئران عن طريق تناول CTE (ص 50.05). أكدت نتائج الكيمياء المناعية وتحليل اللطخة الغربية أن التعبير عن CYP11A1 و CYP17A1 و CYP3A4 قد تم تعزيزه بواسطة CTE (ص 50.05). كما وجد أن الجرعات العالية من الاعتلال الدماغي الرضحي المزمن يمكن أن تسبب وذمة كبدية خفيفة.

الخلاصة: نتائجنا توحي بأن الزيادة في الجنسهرمون المستوياتيمكن التوسط عن طريق تحريض إنزيمات الخصية الستيرويدية.

اتصال:joanna.jia@wecistanche.com/ واتساب: 008618081934791

cistanche مفيد للوظيفة الجنسية ، انقر هنا للحصول على العينات

مقدمة

سيستانشهوفمان. et Link (Orobanchaceae) هو جنس من النباتات الطبية التي تم استخدامها في الصين ودول شرق آسيا الأخرى منذ القرن الخامس عشر لعلاج حالات المرض (في نظرية الطب الصيني التقليدي) مثل العجز الجنسي ، الانبعاث المنوي ، العقم ، الضعف العام مع ضعف الخاصرة والركبتين ، والإمساك المزمن (وانج وآخرون ، 2012). ج.الصحراءYC Ma وسيستانشتوبولوسا(Schenk) R. Wight لها مكونات كيميائية وأنشطة دوائية مماثلة ، وقد تم توثيقها في دستور الأدوية الصيني (لجنة تحرير دستور الأدوية الصيني ، 2010). تأثير C.الصحراءمن حيث زيادة مؤشرات أعضاء الجهاز التناسلي الذكري تم تقييمه في الفئران السليمة (He et al. ، 1996a ، b). الخصية هي النسيج الرئيسي المسؤول عن إفراز الأندروجين. تم تحسين الجهاز التناسلي للفئران المخصية جيدًا بواسطة C.الصحراءالإدارة (هي وآخرون ، 1996 أ ، ب). الإنزيمات (CYP11A1 و CYP17A1) والإنزيم الأيضي (CYP3A4) في ذكور الجرذان.

تشير النتائج المذكورة أعلاه إلى أن C.الصحراءقد يساهم في تطوير الجهاز التناسلي الذكري من خلال تأثير تنظيم هرمون الأندروجين أو الهرمون الجنسي (He et al.، 1996a، b). أشارت الدراسات السابقة أيضًا إلى أن C.الصحراءيمكن أن تسهم في تكوين العظام في بانيات العظم (لي وآخرون ، 2012). يشتهر الأندروجين بتأثيره المفيد على نمو الهيكل العظمي وصيانته لدى كل من النساء والرجال (Hofbauer & Khosla ، 1999).سيستانشتوبولوساكبديل لـ C.الصحراء، لأنها على وشك الانقراض بسبب الاستغلال المفرط لعقود. لذلك ، فإن تأثير C.توبولوساعلى مستويات هرمون الجنس وتقييم سلامته لا غنى عنه. تم تقييم اثنين من الإنزيمات الستيرويدية الرئيسية (CYP11A1 و CYP17A1) والإنزيم الأيضي (CYP3A4) (Hanukoglu ، 1992).

تبحث الدراسة الحالية في الآثار المباشرة لـ C.توبولوسامستخلص (CTE) على مستويات البروجسترون والتستوستيرون وكذلك على التعبير عن اثنين من الإنزيمات الستيرويدية (CYP11A1 و CYP17A1) والإنزيم الأيضي (CYP3A4) في ذكور الجرذان.

المواد والأساليب

الحيوانات

تم استخدام ما مجموعه 60 من ذكور جرذان سبراج-داولي بوزن 100-120 جم في الدراسة. تم الاحتفاظ بالحيوانات عند درجة حرارة ثابتة (23 ± 1 درجة مئوية) مع ركوب دراجات خفيف مظلمة لمدة 12 ساعة في أقفاص البولي بروبلين والسماح بالوصول المجاني إلى الماء والغذاء. تم إجراء جميع الإجراءات الخاصة بالحيوانات وفقًا لإرشادات الجامعة لرعاية واستخدام حيوانات المختبر.

تحضير مستخلص C. tubulosa

ينبع منC. tubulosaتم تقديمه وتأكيده من قبل الأستاذ المساعد جيان-جون هو (جامعة تاريم ، شينجيانغ ، الصين). الC. tubulosaتم جمعها خلال مضان (مايو) من المنطقة الصحراوية في جنوب منطقة شينجيانغ ذاتية الحكم. تم سحق السيقان المجففة إلى مسحوق وتم نخلها من خلال غربال شبكي {{0}. تم استخلاص مسحوق Cistanche tubulosa (50 جم) مرتين بمقدار 250 مل من الإيثانول بنسبة 70 بالمائة وتركيزه ، ثم تم تجميده عند 80 درجة مئوية وتجفيفه بالتجميد حتى الجفاف. تم تخزين المسحوق عند 4 درجات مئوية لحين استخدامه مرة أخرى.

جليكوسيدات فينيلثانويد (PhGs) هي المركبات النشطة الرئيسيةC. tubulosaوتم الكشف عن المحتوى بواسطة القياس الطيفي فوق البنفسجي (Wang et al.، 2 0 {{2 0}} 8). تم استخدام Echinacoside (111670-200503 ، المعاهد الوطنية للتحكم في الغذاء والدواء ، الصين) كمركب قياسي من PhGs في الكشف (لجنة تحرير دستور الأدوية الصيني ، 2 0 1 0). تمت إذابة مستخلص C. tubulosa (2 جم) في 100 مل من الماء المقطر وتعريضه لراتنج كبير D101 لإنتاج ماء مقطر (200 مل) ، 20٪ إيثانول (200 مل) ، و 70٪ إيثانول (200 مل). تم بعد ذلك تركيز جزء الإيثانول 70 في المائة إلى 50 مل وتم تجميده عند 80 درجة مئوية وتجفيفه إلى مسحوق عند 60 درجة مئوية. تمت إذابة المسحوق في 50 مل ميثانول حتى الاستخدام الإضافي (المحلول الأم). تم قياس المحلول في 40- التخفيف عند 330 نانومتر باستخدام مقياس الطيف الضوئي. تم تحضير المحاليل المعيارية بإضافة أحجام معروفة من إشنكوسايد (0.04 ، 0.08 ، 0.16 ، 0.32 ، و 0.64 مجم) إلى 5 مل من الميثانول.

علاج الحيوانات

تم تقسيم الجرذان بشكل عشوائي إلى أربع مجموعات: (1) مجموعة التحكم (عولجت بمحلول ملحي عادي) ، (2) CTE منخفضة ، (3) متوسطة ، و (4) مجموعات جرعة عالية (عولجت بـ 0 .2 و 0. 4 و 0. 8 جم / كجم من CTE ، على التوالي). تم تغذية المواد للفئران عن طريق الإعطاء داخل المعدة لمدة 20 د. في اليوم التالي للإدارة الأخيرة ، تم تخدير الفئران بالبنتوباربيتال ، وتم جمع الدم عن طريق ثقب في القلب. تمت إزالة ووزن الأعضاء والأنسجة والغدد ، بما في ذلك الكبد والخصيتين والبربخ والحويصلات المنوية وغدة البروستاتا والغدة القلفة. تم حساب مؤشرات الجهاز باستخدام المعادلة التالية:

مؤشر العضو (النسبة المئوية) ¼ 100 × (وزن العضو / وزن الجسم)

تم إصلاح الخصيتين من جانب واحد في مثبت بوين في درجة حرارة الغرفة من أجل H&E وتلطيخ المناعي الكيميائي ، وتم تخزين الخصيتين الأخرى عند 80 درجة مئوية لتحضير الجسيمات الدقيقة. تم إصلاح الكبد في الفورمالين لتلطيخ H&E.

تم جمع عينات الدم واحتضانها في وضع عمودي في درجة حرارة الغرفة لمدة 30 دقيقة للسماح بالتخثر ثم طردها بالطرد المركزي لمدة 15 دقيقة عند 2000 دورة في الدقيقة. تم تخزين المصل عند درجة حرارة -20 درجة مئوية لحين استخدامه مرة أخرى.

الكشف عن معاملات السائل المنوي

للحصول على تعليق الحيوانات المنوية ، تم جمع البربخ من الفئران وفرمها في محلول ملحي عادي ، ثم تم تربيتها لمدة 15 دقيقة عند 37 درجة مئوية. تم جمع الحيوانات المنوية المعلقة للكشف عن معاملات السائل المنوي.

لمقايسة عدد الحيوانات المنوية ، تمت إضافة ما مجموعه 450 مل من مثبت الفورمالين 10 بالمائة إلى 50 مل من معلق الحيوانات المنوية. ثم تمت إضافة 10 مل من المحلول إلى غرفة تعداد الدم ، وتم حساب رؤوس الحيوانات المنوية والتعبير عنها كمليون / مل من المعلق.

تم الكشف عن صلاحية الحيوانات المنوية بطريقة التلوين ، وأضيف 10 مل من تعليق الحيوانات المنوية على شريحة زجاجية. بعد ذلك ، تمت إضافة 10 مل من محلول التلوين (eosin Y و nigrosin) واحتضانها لمدة دقيقتين. تمت ملاحظة الشرائح بواسطة المجهر الضوئي (تكبير 400). لكل عينة ، تم تقييم ما مجموعه 200 حيوان منوي وتم حساب نسب الجدوى.

تمت إضافة ما مجموعه 10 مل من تعليق الحيوانات المنوية على الشريحة الزجاجية ، ولوحظت حركة الحيوانات المنوية بواسطة المجهر الضوئي (تكبير 400). تم اختيار عشرة مجالات بصرية من كل عينة وتم تقييم 200 حيوان منوي من حيث القدرة على الحركة. كان معيار التصنيف على النحو التالي: (1) الحركة التقدمية (PR) ، والقدرة الرياضية الجيدة ، وحركة الخط المستقيم أو المنحنى ، ويمكن تجاهل السرعة ؛ (2) الحركة غير التقدمية (NP) ، القدرة الرياضية السيئة ، الدوران أو التأرجح ؛ (3) عدم الحركة (IM) ، عدم الحركة.

تم تثبيت إجمالي 50 مل معلق للحيوانات المنوية على شريحة زجاجية وصبغها بمحلول يوزين بنسبة 1 بالمائة لمدة 10 دقائق. لوحظ شكل الحيوانات المنوية بواسطة المجهر الضوئي (تكبير 400). تم تقييم 200 حيوان منوي وحساب معدل تشوه الحيوانات المنوية.

الراديو المناعي

تم قياس مستويات البروجسترون والتستوستيرون مباشرة من المصل المحضر باستخدام مجموعات المقايسة المناعية الإشعاعية (RIA) (معهد بكين الصيني - المملكة المتحدة للتكنولوجيا البيولوجية ، بكين ، الصين) وفقًا لبروتوكول الشركة المصنعة.

تلطيخ المناعي

تم تقطيع الأنسجة الثابتة إلى أقسام بارافين (5 مم) وأجريت الكيمياء المناعية لتقييم التعبير عن CYP11A1 و CYP17A1 باستخدام مجموعة تجارية (Fuzhou Maixin Biotechnology Co.، Ltd. ، فوتشو ، الصين) وفقًا لتعليمات الشركة الصانعة. تم تخفيف الأجسام المضادة ضد CYP11A1 و CYP17A1 في PBS (1: 200) وكان الجسم المضاد الثاني متاحًا في المجموعة. تم اختيار أربعة أقسام من كل مجموعة ، وتم اختيار 10 مجالات بصرية من كل قسم وتم عد الخلايا الإيجابية نوعيا من قبل أخصائي علم الأمراض.

تحضير البروتين الميكروسومي للخصية والكبد

تم إجراء التحضير الميكروسومي بشكل أساسي كما هو موضح بواسطة Jiang et al. (2 0 12). تم فرم عينات الخصيتين أو الكبد وتجانسهما في أربعة مجلدات من المخزن المؤقت TMS المثلج (2 0 ملي مولار تريس- حمض الهيدروكلوريك ، 5 ملي مولار MgCl2 ، و 0.25 مولار سكروز ، درجة الحموضة 7.5). تم طرد المتجانسات عند 9000 جم لمدة 20 دقيقة عند 4 درجات مئوية. تمت إزالة المواد الطافية وخلطها مع 88 ملي مولار من محلول CaCl (10: 1 ، حجم / حجم) ، بالطرد المركزي عند 27 000 جم لمدة 20 دقيقة عند 4 درجات مئوية. تم تعليق الكريات المحتوية على كسور غشائية خام في محلول عازلة 0.1 مولار تريس مع 20 في المائة من الجلسرين. تم تخزين الميكروسومات عند 80 درجة مئوية حتى استخدامها مرة أخرى. تم تحديد تركيزات البروتين بواسطة تلطيخ كوماسي الأزرق اللامع باستخدام ألبومين مصل البقر كمعيار.

تحليل لطخة غربية

تم تقييم تعبيرات CYP11A1 و CYP17A1 و CYP3A4 من خلال تحليل اللطخة الغربية. تم فصل البروتينات الدقيقة الخاصة بالخصية أو الكبد بواسطة SDS-PAGE على هلام 12 بالمائة وتم نقلها إلى غشاء فلوريد البولي فينيلدين (PVDF). تم حظر الأغشية في 5 في المائة (وزن / حجم) من الحليب المجفف منزوع الدسم قليل الدسم في محلول ملحي مخزّن من تريس مع 0. 05 في المائة توين -20 (TBST) لمدة ساعتين ، واحتضانها مع الأرانب مضاد للفئران CYP11A1 و CYP17A1 (Boster Biological Technology ، ووهان ، الصين) و CYP3A4 (Beijing Biosynthesis Biotechnology Co. ، Ltd. ، بكين ، الصين) الأجسام المضادة متعددة النواقل (1: 200) في TBST عند 4 درجات مئوية لمدة 8 ساعات ، يليه الجسم المضاد الثانوي للماعز المضاد للأرانب (1: 3000) (Tianjin Sungene Biotech Co.، Ltd. ، تيانجين ، الصين) المخفف في TBST عند 37 درجة مئوية لمدة ساعة واحدة. تم إجراء الكشف عن الإشعاع الكيميائي باستخدام نظام التصوير Bio-Rad ChemiDocTM MP (مختبرات Bio-Rad ، Hercules ، CA). تم تحليل القيمة الرمادية للنطاقات بواسطة برنامج Image J2 (المعاهد الوطنية للصحة ، بيثيسدا ، ماساتشوستس).

فحوصات السمية الكبدية

للكشف عن السمية الكبدية للاعتلال الدماغي الرضحي المزمن في الفئران ، تم تقييم مؤشر الكبد وعلم الأنسجة الكبدية ومستويات ألانين أمينوترانسفيراز (ALT). تم تحضير مقاطع البارافين بموجب إجراء قياسي ولوحظت السمات النسيجية بواسطة المجهر الضوئي بعد تلطيخ H&E. تم فحص الأقسام من قبل أخصائي علم الأمراض الذي أعمى عن تحديد العينات. تم قياس مستويات ALT في المصل باستخدام مجموعة ALT / GPT (Biosino Biotechnology and Science Inc. Beijing ، الصين) وفقًا لبروتوكول الشركة المصنعة.

تحليل احصائي

تم التعبير عن جميع البيانات كوسائل ± SD وتم تحليلها باستخدام تحليل مقاييس متكررة أحادية الاتجاه (ANOVA). تم حساب جميع المعلمات الإحصائية باستخدام برنامج SPSS الإصدار 19. 0 (SPSS Inc.، Chicago، IL). تم اعتبار الفروق ذات القيمة الاحتمالية الأقل من 0. 05 ذات دلالة إحصائية.

نتائج

محتوى جليكوسيدات فينيلثانويد في مستخلص C. tubulosa

أظهر المنحنى القياسي علاقة خطية جيدة بين الامتصاصية وتركيز إشنكوسايد من {{0}}. 0 08 إلى 0.128 مجم / مل (Y 14.39 x زائد 0.08125 ، R 2 0. 9982 )

(الشكل 2). كان محتوى PhGs في CTE 41.52 في المائة عن طريق الحساب.

تأثير مستخلص C. tubulosa على مؤشرات الأعضاء

لم تكن الفروق في مؤشرات الجهاز التناسلي الذكري بين مجموعة التحكم وجميع مجموعات العلاج مختلفة بشكل كبير (الجدول 1). لوحظ وجود فرق كبير (p5 0. 05) في مؤشر الكبد بين مجموعة التحكم ومجموعات علاج الاعتلال الدماغي الرضحي المزمن بجرعات عالية (0.8 جم / كجم).

تأثير مستخلص C. tubulosa على معاملات السائل المنوي

كما هو موضح في الجدول 2 ، تمت زيادة عدد الحيوانات المنوية عند الجرذان بمعالجة 0. 4 و 0. 8 جم / كجم CTE (ص 50.05) ، بينما لم تظهر حيوية الحيوانات المنوية فرقًا كبيرًا بين كل مجموعة. كما أظهرت الإدارة مع CTE بشكل ملحوظ

السمية الكبدية لمستخلص C. tubulosa

انخفض مؤشر الكبد لمجموعة العلاج بجرعة عالية من الاعتلال الدماغي الرضحي المزمن وزاد ALT في المصل بالمقارنة مع مجموعة التحكم (الشكل 7). تسببت الجرعات العالية من الاعتلال الدماغي الرضحي المزمن في وذمة كبدية خفيفة (الشكل 8). كانت بنية الكبد للمجموعة الضابطة طبيعية ؛ حافظت خلايا الكبد على التشكل الخلوي وتم ترتيبها في الحبال الكبدية المرئية (الشكل 8 أ). على العكس من ذلك ، كانت خلايا الكبد في مجموعة CTE عالية الجرعة (الشكل 8 ب) مبعثرة وأظهر أكثر من 50 في المائة من خلايا الكبد درجات مختلفة من الوذمة. أظهر عدد قليل من خلايا الكبد تنكسًا دهنيًا. أظهرت بعض خلايا الكبد موت الخلايا مع نوى متخمرة وغيرها من الأدلة على نخر الخلية بما في ذلك انحلال النواة والحطام الخلوي المنتشر.

ثبت أن Cistanche tubulosa يمتلك تأثير نقص الكولسترول في الدم (Shimoda et al. ، 2009 ؛ Xiong et al. ، 2013). تم تنظيم مستوى mRNA لـ CYP11A1 بواسطة CTE (400 مجم / كجم) (Shimoda et al. ، 2009) ، بما يتوافق مع التقارير السابقة ؛ ومع ذلك ، كانت آلية تنظيم النسخ غير واضحة. كما هو الحال مع P450s الستيرويدية الأخرى ، فإن تنظيم CYP11A1 و CYP17A1 معقد نسبيًا ، ومن المعروف أن تحريضهما ناتج عن مسار إشارات cAMP (Guo et al. ، 2003 ؛ Kosˇir et al. ، 2012). تحتوي محفزات CYP11A1 و CYP17A1 على متواليات ترتبط بعامل الستيرويد المنشأ (SF -1) والذي يلعب بدوره دورًا مهمًا في التعبير عن الجينات الستيرويدية الخاصة بالنسيج والمنظم هرمونيًا (Ortiz de Montellano، 2005). العوامل الأخرى ، بما في ذلك ارتباط عنصر استجابة cAMP (CREB) ، بروتين المنشط 1 (AP -1) ، بروتين الخصوصية (SP -1 ، SP -3) ، تشارك أيضًا في تنشيط CYP11A1 و CYP17A1 النسخ. يبدو أن تجميع عوامل النسخ المختلفة التي تشكل مجمعات البروتين والحمض النووي هي خطوة أساسية في نسخ CYP11A1 و CYP17A1 (Ortiz de Montellano ، 2005). يحتاج البروتين المستهدف لـ CTE للتأثير على تعبير CYP11A1 و CYP17A1 إلى مزيد من التحقيق.

والمواد المسرطنة. أظهرت النتائج أن الإنزيم الاستقلابي للهرمون الرئيسي (CYP3A4) قد تم تحريضه أيضًا بواسطة CTE. في الجرذان السليمة ، هناك لائحة تغذية مرتدة للهرمونات. افترض المؤلفون أن تعبير CYP3A4 قد زاد في هذه الدراسة لاستقلاب الهرمونات المفرطة. قد يكون هذا هو السبب في أن الزيادة في مستويات هرمون البروجسترون والتستوستيرون لم تكن كبيرة. إذا تم إعطاء CTE للفئران التي لديها مستويات منخفضة من الهرمونات الجنسية ، فقد يكون التأثير أكثر وضوحًا.

لم يتم التحقيق بشكل كامل في السمية الجهازية وتقييمات السلامة للاعتلال الدماغي الرضحي المزمن ، وأظهرت دراستنا الحالية أن الجرعات العالية من الاعتلال الدماغي الرضحي المزمن تسبب في وذمة الكبد. كيم وآخرون. (2012) وجد أن Cistanche herba تسبب في تلف الخصية بما في ذلك تقليل عدد الحيوانات المنوية ومستويات هرمون التستوستيرون ، مما يؤدي إلى إتلاف البنية النسيجية للخصية ؛ ومع ذلك ، في عملنا ، كانت بنية الخصية طبيعية في الفحص النسيجي (البيانات غير معروضة). على الرغم من أن الجرعات المستخدمة في هذه الدراسة كانت مماثلة لتقرير Kim et al. (2012) ، كانت أنواع النباتات العشبية مختلفة. كانت ظروف النمو وموسم الحصاد وطريقة المعالجة غير واضحة مما قد يؤدي إلى اختلاف الجودة أو التأثيرات الدوائية السريرية (Wang et al. ، 2012).

استنتاج

أظهر علاج الاعتلال الدماغي الرضحي المزمن تحريضًا كبيرًا في مستوى الهرمونات الجنسية في ذكور الجرذان ، والذي من المحتمل أن يكون قد ساهم في إحداث تأثير تعبيرات CYP11A1 و CYP17A1. كدواء صيني تقليدي ومحفز غذائي ، يمكن تطوير C. tubulosa إلى عقاقير جديدة أو أغذية وظيفية أو مكملات غذائية في المستقبل ، ومع ذلك ، يجب تقييم التحقيق المنهجي لسلامة C. الاعتبار.

1 كلية الطب البيطري ، جامعة نورثويست إيه أند إف ، يانجلينج ، الصين ، 2 كلية العلوم والهندسة البيولوجية ، جامعة شنشي للتكنولوجيا ، هانتشونج ، الصين ، وقسم ثلاثي الأبعاد للعلوم الطبية الحيوية ، جامعة جيلف ، جيلف ، أونتاريو ، كندا

شكر وتقدير

يشكر المؤلفون البروفيسور جيان جون هو لمساعدته في جمع وتأكيد ساق Cistanche tubulosa.

إعلان المصلحة

تم دعم العمل من قبل برنامج المشروع المفتوح لمختبر الدولة الرئيسي للأدوية الطبيعية ، جامعة الصين الصيدلانية (رقم SKLNMKF201221) ، وزارة التعليم وإدارة الدولة لشؤون الخبراء الأجانب مشروع `` المعلم الخارجي '' (رقم MS2011XBNL057) ، الصين ، برنامج توظيف الخبراء الأجانب الراقي (GDW20146100228) ، الصين وبدعم من برنامج البناء الرئيسي لقاعدة التعاون الدولي في S&T ، مقاطعة شنشي (2015SD0018) ، الصين.

مراجع

Bosmann HB ، Hales KH ، Li X ، et al. (1996). التثبيط الحاد في الجسم الحي لهرمون التستوستيرون عن طريق الذيفان الداخلي يوازي فقدان البروتين التنظيمي الحاد الستيرويدي (StAR) في خلايا Leydig. طب الغدد الصماء 137: 4522-5.

لجنة تحرير دستور الأدوية الصيني. (2010). دستور الأدوية في جمهورية الصين الشعبية. بكين ، الصين: مطبعة العلوم والتكنولوجيا الطبية الصينية.

جنرال الكتريك RS ، النائب هاردي. (2007). تنظيم خلايا Leydig أثناء تطور البلوغ. في: Payne AH، Hardy MP، eds. خلية Leydig في الصحة والمرض. توتووا: مطبعة هيومانا ، 55-70.

Guo IC، Hu MC، Chung BC. (2003). تنظيم النسخ من CYP11A1. J Biomed Sci 10: 593–8.

هانوكوغلو ل. (1992). إنزيمات الستيرويد: التركيب والوظيفة والدور في تنظيم التخليق الحيوي لهرمون الستيرويد. J ستيرويد Biochem Mol Biol 43: 779-804.

هي W ، Shu XF ، Zong GZ ، وآخرون. (1996 أ). دراسات حول تقوية الكلى واليانغ التي تدعم عمل Cistanche deserticola YC Ma قبل وبعد التحضير. تشين جي تشين ماطر ميد 21: 534-7.

He W، Zong GZ، Wu GL، Chen MH. (1996 ب). دراسة أولية عن الوظيفة الشبيهة بهرمون الذكورة في Cistanche deserticola. تشين جي تشين ماطر ميد 21: 5.

Hofbauer LC، Khosla S. (1999). تأثيرات الأندروجين على استقلاب العظام: التقدم الحديث والخلافات. Eur J Endocrinol 140: 271 - 86.

Jiang B و Cai F و Gao SH وآخرون. (2012). تحريض السيتوكروم P 450 3 A بواسطة Shexiang Baoxin Pill ومكوناته الرئيسية. تفاعل كيم بيول 195: 105-13.

Kim SW و Yoo SH و Lee HJ وآخرون. (2012). يستحث Cistanches herba السمية الخلوية في ذكور الفئران. Bull Environ Contam Toxicol 88: 112–17.

Kosir R ، Zmrzljak UP ، Bele T ، وآخرون. (2012). التعبير اليومي عن

السيتوكرومات الستيرويدية P450 في تورط الغدة الكظرية للماوس في مغير عنصر مستجيب لـ cAMP في التنظيم اللاجيني لـ Cyp17a1. 279 فبراير 1584–93.

لي TM ، هوانغ HC ، سو سم ، وآخرون. (2012). يزيد مستخلص الكستانش الصحراوي من تكوين العظام في بانيات العظم. جي فارماكول 64: 897-907.

أورتيز دي مونتيلانو للمحترفين. (2005). هيكل السيتوكروم P450 وآلية وكيمياء حيوية. نيويورك: Kluwer Academic / Plenum Publishers.

باين آه ، O'Shaughnessy PJ. (1996). هيكل ووظيفة وتنظيم الإنزيمات الستيرويدية في خلية Leydig. في: Payne AH، Hardy MP، Russell LD، eds. خلية ليديج. فيينا: Cache River Press، 259 - 86.

شيمودا إتش ، تاناكا جي ، تاكاهارا واي وآخرون. (2009). آثار نقص الكولسترول في الدم لمستخلص Cistanche tubulosa ، وهو دواء خام صيني تقليدي ، في الفئران. Am J Chin Med 37: 1125-1138.

وانغ تي ، تشانغ إكس واي ، شيه واي. (2012). Cistanche deserticola YC Ma ، `` Desert Ginseng '': مراجعة. Am J Chin Med 40: 1123-1141.

Wang LN و Chen J و Yang MH وآخرون. (2008). التقدير الكمي لمجموع جليكوسيدات الفينيثانويد في Cistanche desertiola. شمال غرب فارم ي 23: 67-9.

Xiong WT ، Gu L ، Wang C ، وآخرون. (2013). التأثيرات المضادة لفرط سكر الدم ونقص شحميات الدم لـ Cistanche tubulosa في الفئران المصابة بداء السكري من النوع 2 ديسيبل / ديسيبل. J إثنوفارماكول 150: 935-45.

يامازاكي هـ ، شيمادا ت. (1997). هيدروكسيل البروجسترون والتستوستيرون بواسطة السيتوكرومات P 450 2 C19 و 2C9 و 3A4 في ميكروسومات الكبد البشرية. Arch Biochem Biophys 346: 161-9.